(19)
(11)EP 0 151 239 B1

(12)EUROPEAN PATENT SPECIFICATION

(45)Mention of the grant of the patent:
07.01.1993 Bulletin 1993/01

(21)Application number: 84113593.2

(22)Date of filing:  10.11.1984
(51)International Patent Classification (IPC)5C12P 21/08, C12N 5/00, G01N 33/86, A61M 1/36

(54)

Monoclonal antibodies specific to in vivo fragments derived from fibrinogen

Monoklonale Antikörper, spezifisch von in vivo von Fibrinogen abgeleiteten Derivatstücken

Anticorps monoclonaux spécifiques de fragments dérivés in vivo de fibrinogène


(84)Designated Contracting States:
AT BE CH DE FR GB IT LI NL SE

(30)Priority: 14.11.1983 US 550836
03.01.1984 US 567462

(43)Date of publication of application:
14.08.1985 Bulletin 1985/33

(73)Proprietor: New York Blood Center, Inc.
New York, New York 10021 (US)

(72)Inventors:
  • Kudryk, Bohdan J.
    Little Ferry New Jersey (US)
  • Wiebe, Michael E.
    Stamford Connecticut (US)

(74)Representative: Reitzner, Bruno, Dr. et al
Patentanwälte Dipl.-Ing. R. Splanemann Dr. B. Reitzner Tal 13
80331 München
80331 München (DE)


(56)References cited: : 
  
  • BIOLOGICAL ABSTRACTS, vol. 78, 1984, abstract no. 24799; B. KUDRYK et al.: "A monoclonal antibody with ability to distinguish between amino-terminal fragments derived from fibrinogen and fibrin", & MOL. IMMUNOL. 20(11): 1191-1200, 1983
  • BIOLOGICAL ABSTRACTS, vol. 78, 1984, abstract no. 8595; B. KUDRYK et al.: "Specifity of a monoclonal antibody for the amino terminal region of fibrin", & MOL. IMMUNOL. 21(1): 89-94, 1984
  • BIOLOGICAL ABSTRACTS, vol. 77, 1984, abstract no. 80886; D.B.RYLATT et al.: "An immunoassay for human D dimer using monoclonal antibodies", & THROMB. RES 31(6): 767-778, 1983
  • SCIENCE, vol. 222, 9th December 1983, pages 1129-1132; K.Y. HUI et al.: "Monoclonal antibodies to a synthetic fibrin-like peptide bind to human fibrin but not fibrinogen"
  • CHEMICAL ABSTRACTS, vol. 95, 1981, page 573, abstract no. 78340s, Columbus, Ohio, US; S.J. KENNEL et al.: "Monoclonal antibodies from rats immunized with fragment D of human fibrinogen" , & THROMB. RES. 1981, 22(3), 309-20
  • BIOLOGICAL ABSTRACTS, vol. 76, 1983, abstract no. 62261; B.P.R. SOLA et al.: "Isolation and characterization of a monoclonal antibody specific for fibrinogen and fibrin of human origin", & THROMB. RES. 29(6): 643-654, 1983
  • BIOLOGICAL ABSTRACTS, vol. 76, 1983, abstract no. 69855; S.J. KENNEL et al.: "Solid-phase radioimmunoassay of fragment D of human fibrinogen by use of a low-affinity monoclonal antibody", & CLIN. CHEM. 29(5): 778-781, 1983
  • BIOLOGICAL ABSTRACTS, vol. 77, 1984, abstract no. 40751; M.J.I.H. ELMS et al.: "Measurement of crosslinked fibrin degradation products: An immunoassay using monoclonal antibodies", & THROMB. HAEMOSTASIS. 50(2); 591-594, 1983
  • Molec. Immunol. 20 (11) 1983, pp. 1191-1200
  • Molec. Immunol. 21 (1), 1984, pp. 39-94
  • Thromb Research 22 (3), 1981, pp. 309-320
  
Note: Within nine months from the publication of the mention of the grant of the European patent, any person may give notice to the European Patent Office of opposition to the European patent granted. Notice of opposition shall be filed in a written reasoned statement. It shall not be deemed to have been filed until the opposition fee has been paid. (Art. 99(1) European Patent Convention).


Description

BACKGROUND OF THE INVENTION



[0001] This invention relates to monoclonal antibodies, hybridomas (hybrid cell lines) for producing such monoclonal antibodies, methods of preparing the same, processes for the detection and determination of peptide fragments and diagnostic methods and kits employing these antibodies.

[0002] Fibrinogen is a large (Mr340,000) dimeric molecule composed of three non-identical polypeptide chains. The fibrinogen-fibrin transition involves the sequential release of fibrinopeptides. In this two-stage thrombin-mediated process, fibrin I is the initial product and it is formed following the release of FPA [fibrinopeptide A (Aα 1-16)]. Fibrin II, a more compact structure, results upon the release of FPB [fibrinopeptide B (Bβ 1-14)] (Blombäck et al., Nature, Lond., 257, 501-505, 1978). Dissolution of fibrin -- be it fibrin I or II --deposits is required in order to restore vascular integrity. This is achieved principally via the plasmin pathway (see Kernoff and McNicol, Br. Med. Bull., 33, 239-244, 1977 and Collen, Thromb. Haemostas., 43, 77-89, 1980). One of the early plasmin degradation products of fibrinogen or fibrin is derived from the NH₂-terminal portion of the Bβ chain. The bond Bβ 42 Arg-43 Ala is particularly susceptible to plasmin (Mosesson et al., J. Biol. Chem., 247, 5210-5219, 1972; Takagi and Doolittle, Biochemistry, 14, 940-946, 1975). The nature of the Bβ chain peptide released by plasmin depends upon the available substrate. Cleavage of fibrinogen or fibrin, I will result in the FPB containing peptide Bβ 1-42. The latter, of course, cannot be generated in plasmin proteolysis of fibrin II, which results in the release of peptide Bβ 15-42.

[0003] Identification and quantitation of thrombin and plasmin degradation products of fibrinogen and fibrin may serve as valuable diagnostic tests. During the past decade, a number of immunoassays have been developed for this purpose. Antisera prepared by conventional immunization have been used in most of these assays. Since such antisera contain antibodies of varying titer, affinity and specificity, a number of problems have been encountered. For example, antibodies to cleavage-associated neo-antigens found on certain fragments of fibrinogen and fibrin have generally been present in extremely low titer (Plow and Edgington, J. Clin. Invest., 52, 273-282, 1973; J. Biol. Chem., 250, 3386-3392, 1975). Regarding cross-reactivity, most antisera react with intact fibrinogen and, therefore plasma samples require a processing step(s) in order to selectively remove it. Significant differences in immunoreactivity have been observed for antisera prepared to both FPA and FPB (Canfield et al., Biochemistry, 15, 1203-1208, 1976; Wilner et al., Biochemistry, 15, 1209-1213, 1976; Bilezikian et al., J. Clin. Invest., 56, 438-445, 1975). Some of these antisera show limited cross-reactivity with peptides that are only a few amino acid residues longer than free FPA or FPB.

[0004] The development of the hybridoma technique by Köhler and Milstein, Nature, 256, 495-497, 1975, may allow refinement of most of the immunoassays dealing with fibrinogen or fibrin degradation products.

[0005] The fusion of mouse myeloma cells to spleen cells from immunized mice by Köhler and Milstein demonstrated for the first time that it was possible to obtain a continuous cell line making monoclonal antibody. Subsequently, much effort has been directed to the production of various hybrid cells (hybridomas) and to the use of the antibody made by these hybridomas. See, for example, F. Melchers, M. Potter, and N. Warner, eds., Current Topics in Microbiology and Immunology, 81 -"Lymphocyte Hybridomas", Springer-Verlag, 1978, and the references contained therein; C.J. Barnstable, et al., Cell, 14, 9-20, May, 1978; P. Parham and W.F. Bodmer, Nature, 276, 397-399 November, 1978; D.M. Wier, ed., Handbook of Experimental Immunology, Third Edition, 2, Blackwell, 1978, Chapter 25; and Chemical and Engineering News., Jan. 1, 1979, 15-17. These references indicate the problems inherent in attempting to produce monoclonal antibodies from hybridomas. While the general technique is well understood, there are many difficulties and variations in each specific case.

[0006] In fact, there is no assurance, prior to attempting to prepare a given hybridoma, that the desired hybridoma will be obtained, that it will produce antibody if obtained, or that the antibody so produced will have the desired specificity. The degree of success is influenced principally by the type of antigen employed and the selection technique used for isolating the desired hybridoma.

[0007] Prior research had shown that cleavage of fibrinogen in vitro with CNBr results in the release of a major NH₂-terminal fragment, the so-called N-DSK (Blombäck et al., Nature, 218, 130-134, 1968). The N-DSK portion of fibrinogen contains binding or polymerization domains which are exposed as a consequence of enzyme activation and which are operative in the fibrinogen to fibrin transition (Kudryk et al., J. Biol. Chem., 249, 3322-3325, 1974). The enzyme thrombin can cleave FPA and FPB from fibrinogen, and release of both peptides results in the formation of fibrin II. In contrast to thrombin, the snake venom enzyme Batroxobin can release only FPA from fibrinogen (Laurent & Blombäck, Acta Chem. Scand., 12, 1875-1877, 1958), a process which leads to the formation of a type of fibrin which has been termed fibrin I. Since the NH₂-terminal ends of fibrinogen and N-DSK are identical, different N-DSK species can be obtained from thrombin and Batroxobin induced fibrin gels.

[0008] In hope of identifying neoepitopes, Qureshi et al., Thromb. Res., 6, 357-374, 1975, prepared rabbit antisera to human (T)N-DSK. Despite the fact that high titer sera were obtained, these investigators could not demonstrate any immunochemical differences between N-DSK and (T)N-DSK.

[0009] In 1982, Kudryk et al., developed a radioimmunoassay which could be used to measure the plasma levels of peptides containing the Bβ 15-42 sequence derived from fibrinogen or fibrin (Kudryk et al., Thromb. Res., 25, 277-291, 1982). Since these peptides arise as a consequence of in vivo plasmin digestion, it was proposed that the assay could give important information in clinical studies on disease states where thrombosis was imminent or manifest. However, the assay could not distinguish between peptides containing extensions at either the NH₂- or COOH-terminal end of Bβ 15-42 and, therefore, only the total Bβ 15-42 immunoreactivity could be measured.

[0010] Nossel et al., J. Clin. Invest., 64, 1371-1378, 1979, have identified Bβ 1-42 in clinical blood samples and suggested that it arises from plasmin proteolysis of the so-called fibrin I. A second type of fibrin is also formed in vivo. By definition, fibrin II lacks both FPA and FPB and, therefore, its dissolution by plasmin cannot generate Bβ 1-42 (See Fig. 8 herein). Nossel (Nature, Lond., 291, 165-167, 1981) has suggested that fibrin I is the pivotal substrate in fibrinogen proteolysis in vivo and that fibrin II is more likely to result in occlusive thrombosis (see Fig. 8 herein). Since occlusive thrombosis imperils a patient's life, the incipiency of thrombosis must be detected. The degradation of fibrinogen in vivo results in products which cause thrombosis, depending on the prevalent enzymatic reactions occurring during fibrinogen proteolysis. Problems have existed in that it has been difficult to determine in any reliable manner, whether the fibrin I polymer which results from thrombin activation of fibrinogen is, in turn, activated by thrombin or plasmin. If activated primarily by plasmin, split products, including a fragment of the Bβ chain of fibrin I containing amino acid residues 1-42, are produced. If the latter is the predominant pathway, occlusive thrombosis does not occur. If fibrin I polymer is, instead, further activated by thrombin, fibrin II is formed and this is often accompanied by thrombosis.

[0011] In light of the above it has become very desirable to determine which biochemical route the fibrin I molecule is taking. One approach for doing this is to identify the molecular nature of the Bβ chain peptides in clinical samples. For example, confirmation of the predominance of intact Bβ 1-42 in a patient's blood plasma, with a coupled negative indication of peptide fragments of the Bβ chain containing amino acid residues 1-14 and 15-42, would strongly suggest plasmin protolysis of fibrin I. On the other hand, the reverse finding would indicate that fibrin I had been further degraded to yield fibrin II. As mentioned above, plasmin degradation of fibrin II can never yield Bβ 1-42.

[0012] Matsueda et al., Science, 222, 1129-1132, 1983, developed three monoclonal antibodies that bind to human fibrin from hybridomas prepared from fusion of cells of a Sp 2/O myeloma cell line and spleen cells from a female BALB/c mouse immunized with a complex consisting of a synthetic heptapeptide of the amino terminus of the Bβ chain of human fibrin, a cysteine residue placed at the heptapeptide's carboxy terminus, and MB-KLH (maleimidobenzoylated keyhole limpet hemocyanin). One of the monoclonal antibodies cross-reacted with fibrin from species other than human, e.g., rabbit fibrin.

[0013] The synthetic peptide was purposefully constructed to mimic the beta chain in fibrin, not fibrinogen. The linkage to the carrier was to make the peptide more immunogenic. The authors immunized rabbits to get polyclonal antibodies and only then were monoclonal antibodies raised in mice.

[0014] The distinction between the known antigens being synthetic peptides and the antigens of the present invention being derived from natural sources is very important since synthetic peptides do not necessarily have the same secondary and tertiary structures of natural peptides having even the same amino acid sequence.

[0015] Kennel et al in Thrombosis Research, Vol. 22, No. 3, 1981, pages 309-320 disclose monoclonal antibodies which are directed against the fragment D of human fibrinogen and which can distinguish between fibrin and fibrinogen. However, the monocloanl antibodies are different from those of the present invention. The Kennel et al monoclonal antibody is directed to a different portion of fibrinogen and cannot distinguish the parent molecule from the fragment.

DEFINITIONS



[0016] 
FPA :
fibrinopeptide A (Aα 1-16)
FPB :
fibrinopeptide B (Bβ 1-14)
Fibrin I :
fibrin lacking FPA prepared by clotting fibrinogen with the snake venom enzyme Batroxobin
Fibrin II :
the fully formed fibrin (lacking FPA and FPB) resulting from thrombin digestion of fibrinogen
HPLC :
high-performance liquid chromatography
Hybridoma ATCC HB 8418 :
Mouse lymphocyte hybridoma given designation HB 8418 by the American Type Culture Collection, 12301 Parklawn Drive, Rockville, Maryland 20852 hereinafter, "ATCC", deposited on November 9, 1983 (Depositors's Reference: 1-8C6)
Hybridoma ATCC HB 8426 :
Mouse lymphocyte hybridoma given designation HB 8426 by ATCC, deposited on November 16, 1983 (Depositor's Reference: T2G1s)
Monospecific antibody :
an antibody that combines with a single antigen. A mono-specific antibody which is mono-specific to a single antigenic determinant combines only with that antigenic determinant (epitope).
Hetero-molecular antibody :
an antibody that contains multiple different molecular forms of the same antibody.
Homo-molecular antibody :
an antibody that contains only a single molecular form, i.e., each antibody molecule is the same as each other antibody molecule.
Monoclonal antibody :
an antibody derived from a single cell line genetically identical and producing a homo-molecular antibody.
MAb/1-8C6 :
Monoclonal Antibody 1-8C6, the IgG fraction from spent medium of mass culture of the hybridoma clone, designated ATCC HB 8418
MAb/T2G1s :
Monoclonal Antibody T2G1s, the IgG fraction from spent medium of mass culture of the hybridoma clone, designated ATCC HB 8426
N-DSK :
NH₂- terminal portion of human fibrinogen obtained by CNBr cleavage with molecular formula (Aα 1-51, Bβ 1-118, γ 1-78)₂ with mol. wt. 58,000 (mol. wt. determined by gel electrophoresis)
(B)N-DSK :
CNBr fragment obtained from human fibrin which had been prepared by clotting fibrinogen, with the snake venom enzyme Batroxobin. (B)N-DSK differs from N-DSK in that it lacks FPA and, therefore, its molecular formula is (Aα 17-51, Bβ 1-118, γ 1-78)₂ with mol. wt. 55,000 (mol. wt. determined by gel electrophoresis
(T)N-DSK :
CNBr fragment obtained from human fibrin which had been prepared by clotting fibrinogen with human thrombin or by activating N-DSK with the same enzyme. (T)N-DSK lacks both FPA and FPB and has molecular formula (Aα 17-51, Bβ 15-118, γ 1-78)₂ with mol. wt. 52,000 (mol. wt. determined by gel electrophoresis)
SDS :
sodium dodecyl sulfate
TPBS :
phosphate-saline buffer additionally containing 0.05% Tween 20
ELISA:
Enzyme linked immunosorbent assay
RIA:
Radioimmunoassay
A₄₉₀:
Absorbance at a wavelength of 490 nm
Sac-Cel:
donkey anti mouse cellulose suspension
Animal :
unless indicated otherwise, "animal" used herein means any warm blooded animal other than human

SUMMARY OF THE INVENTION



[0017] The present invention relates to monoclonal antibodies, produced by hybridomas, as claimed in anyone of claims 1 to 18; to hybridomas for producing such monoclomal antibodies, as claimed in anyone of claims 19 to 29; to a method of preparing monoclonal antibodies as claimed in anyone of claims 30 to 37; to methods of preparing hybridomas as claimed in anyone of claims 38 to 45; to a process for detecting the presence of a fragment of the β-chain of human fibrinogen or fibrin I, as claimed in anyone of claims 46 to 49; to a process for determining the amount of a peptide fragment of the β-chain of human fibrinogen or fibrin I, present in a plasma sample, as claimed in claims 50 or 51; to a process for detecting the presence of a fragment of the β-chain of human fibin II, as claimed in anyone of claims 52 to 57; to a process for detecting the potential for the onset of oclusive thrombosis, as claimed in claims 58 or 59; and to a kit for determining whether the plasma contained in a test sample includes particular amino acid sequences, as claimed in anyone of claims 60 to 65.

[0018] The method of producing the hybridomas and thus, the monoclonal antibodies, includes fusing an animal cell for example, a mouse myeloma cell, for example, mouse P3X63Ag8.653, with a spleen cell from an animal, for example, a mouse, for example, a BALB/cJ mouse.

[0019] In the case of MAb/1-8C6, a mouse is immunized with an NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I to form a novel hybridoma, i.e., 1-8C6. In the case of MAb/T2G1s, a mouse is immunized with the NH₂-terminal fragment of human fibrin II to form a novel hybridoma, i.e., T2G1s. The resultant hybridomas are separated and the hybridomas which produce the monospecific antibody to an NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I, in the case of MAb/1-8C6, and to an NH₂-terminal fragment of human fibrin II, in the case of MAb/T2G1s, are selected.

[0020] The fragment of human fibrinogen or fibrin I can be formed by cleavage of such human fibrinogen or fibrin I by CNBr. A fragment of human fibrinogen of such CNBr cleavage is N-DSK. Other fragments of human fibrinogen or fibrin I which can also be employed are BB 1-118 and BB 1-42. A fragment of fibrin I which may be employed in the present invention is (B)N-DSK.

[0021] The fragment of human fibrin II, can be formed by cleavage of fibrin II by CNBr. A fragment of human fibrin II is (T)N-DSK. Other fragments of human fibrin II which can also be employed are BB 15-118 and BB 15-42.

[0022] Hybridoma cell line ATCC HB 8418, expresses a monospecific antibody, MAb/1-8C6, which reacts with the peptide fragment of the BB chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42, but does not react with peptide fragments of the BB chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 15-42. As such, MAb/1-8C6 recognizes on epitope (antigenic determinant) in or around the BB 14 Arg-15 Gly bond and thus distinguishes between NH₂-terminal peptides derived from the Bβ chain of human fibrinogen, or fibrin I and fibrin II.

[0023] Hybridoma cell line ATCC HB 8426, expresses a monospecific antibody, MAb/T2G1s, which reacts with the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, but does not react with peptide fragments of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 or 1-14. As such, MAb/T2G1s recognizes an epitope on the Bβ chain of fibrin II, but not fibrinogen or fibrin I.

[0024] MAb/1-8C6 is monospecific for a single determinant on the Bβ chain of human fibrinogen, fibrin I or peptides derived from either, which contain amino acid residues 1-42. MAb/1-8C6 contains no other anti-human fibrinogen antibodies. This is in contrast to prior art antisera which are inherently contaminated and to prior art monoclonal antibodies which are not specific for an epitope in or around the Bβ 14 Arg-15 Gly bond.

[0025] MAb/T2G1s is monospecific for a single determinant on the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42. MAb/T2G1s contains essentially no other anti-human immune globulin, in contrast to prior art antisera which are inherently contaminated and in contrast to prior art monoclonal antibodies which are not specific for an epitope on the Bβ chain of fibrin II.

[0026] MAb/T2G1s is also specific to human peptide fragments of fibrin II containing amino acid residues 15-42, i.e., MAb/T2G1s reacts with the products produced by thrombin digestion of human fibrinogen but does not react with the products resulting from thrombin digestion of certain animal fibrinogens, e.g., rabbit fibrinogen.

[0027] The novel hybridomas of the present invention can be cultured to produce antibody without the necessity of immunizing and killing animals, followed by the tedious adsorption and purification steps necessary to obtain even the impure antisera of the prior art.

[0028] All immunoglobulin molecules consist of 2 identical light chains (MW 25,000) and 2 identical heavy chains (MW 50,000) held together as a tetramer by disulfide bonds. Each chain can be divided conceptually into specific domains or regions that have structural and functional significance. The half of the light chain toward the carboxy terminus is referred to as the constant region, while the amino-terminal half is the variable region of the light chain. Approximately one-quarter of the heavy chain at the amino terminus is referred to as its variable region, and the other three-quarters of the heavy chain are referred to as the constant regions of that heavy chain.

[0029] Four classes of heavy chains have been found in mice, and these classes con be distinguished by chemical differences. The type of heavy chain determines the class of immunoglobulin and thus its effector function. There are 5 immunoglobulin classes: IgG, IgA, IgM, IgD, and IgE. The four classes of mouse IgG are referred to as IgG₁, IgG2a, IgG2b and IgG₃.

[0030] MAb/1-8C6 is of the class IgG and the subclass IgG2a. MAb/T2G1s is of the class IgG and the subclass IgG₁.

[0031] Accordingly, in satisfaction of the foregoing advantages, this invention provides two hybridomas: one which produces antibodies to the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 and one which produces antibodies to the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42. This invention provides methods for preparing these hybridomas.

[0032] Still further, this invention provides a method for determination of the nature of the fibrinogen proteolysis pathway in vivo.

[0033] The present invention also provides methods for diagnosis of disease by employing the monoclonal antibodies of this invention.

[0034] In general, the hybridomas which express the monoclonal antibodies, according to the present invention, are prepared in accordance with the method of Köhler and Milstein. Following immunization of mice with a solution of N-DSK in the case of production of MAb/1-8C6 or (T)N-DSK in the case of production of MAb/T2G1s, the spleen cells of the immunized mice are fused with cells from a mouse myeloma line. The clone culture fluids from the resultant hybridomas are screened for those with supernatants containing antibody which give selective binding to the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 (in the case of production of MAb/1-8C6) or to the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 (in the case of production of MAb/T2G1s).

[0035] It should be emphasized that the unpredictable nature of hybrid cell preparation does not allow one to extrapolate from one antigen or cell system to another.

[0036] The monoclonal antibodies derived from the hybridomas produced by the methods of the invention are useful as diagnostic reagents in clinical studies to determine the nature of the fibrin molecule generated in the blood of any patient where thrombosis is imminent or manifest. Thrombosis is associated with a number of disease states but may also occur before, during or after surgery, as well as in other trauma states. The efficacy of heparin therapy for hemodialysis patients can also be checked by measuring the plasma concentration of fibrinogen or fibrin split products via the diagnostic reagent of the invention. The efficacy of thrombolytic therapy, using either streptokinase or tissue type plasminogen activator, may also be checked using the antibodies of the invention.

Brief Description of Drawings



[0037] Fig. 1 depicts electrophoretic patterns of N-DSK(1), (B)N-DSK(2), and (T)N-DSK (3) on 7% polyacrylamide gels in SDS. The mobility of each N-DSK species is indicated. (B)N-DSK was isolated from Batroxobin-induced fibrin and (T)N-DSK was prepared from N-DSK by digestion with human thrombin.

[0038] Fig. 2a and Fig. 2b are graphs depicting fractionation of thrombin-cleaved peptides from N-DSK (Fig. 2a) and (B)N-DSK (Fig. 2b) by high-performance liquid chromatography. The elution patterns were obtained by meauring absorbance at 206nm. The column and chromatography conditions were similar to those described by Koehn and Canfield, Analyt. Biochem., 116, 349-356, 1981.

[0039] Fig. 3 depicts an Ouchterlony analysis of MAb/1-8C6 using class-specific antisera. The antigens were normal mouse plasma (A) and MAb/1-8C6(B); the class specific antisera were: anti IgG₁ (1); anti IgG2a(2); anti IgG2b(3); anti IgG₃(4).

[0040] Fig. 4 is a graph depicting inhibition of binding of ¹²⁵I-Bβ 1-118 ligand by various "cold" competitors. A 1/40 dilution of MAb/1-8C6 was used and this bound about 40% of the ligand in absence of any competitor. Non-specific binding was less than 5%. Mean values of at least five different experiments are shown. No inhibition was observed with the other two chains of N-DSK (i.e. A α 1-51 and γ 1-78) in the concentration range shown here. Fibrinogen, N-DSK and (B)N-DSK are dimers with 2 mol of Bβ chain (for fibrinogen) or Bβ 1-118 (both N-DSK species). Therefore, the operational mol. wt. used in the calculations was one-half the actual mol. wt. of each.

[0041] Fig. 5 depicts electrophoretic patterns of Bβ 1-118 before (gel 1 and 3) and after (gel 2 and 4) digestion with thrombin. Gels 1 and 2 were 10% acrylamide while gels 3 and 4 were 7% acrylamide in SDS. The mobility of the Bβ chain of each gel is indicated.

[0042] Fig. 6 is a graph depicting inhibition of binding of ¹²⁵I-Bβ 1-118 ligand by standard amounts of "cold" Bβ 1-118 before and after thrombin digestion. Antibody dilution, specific and non-specific binding were as described in Fig. 4. The mean of eight (8) consecutive experiments is shown and the standard deviation is indicated by vertical bars.

[0043] Fig. 7a, Fig. 7b and Fig. 7c are graphs depicting immunoreactivity profiles on fractions obtained from a high-performance chromatography run using an extract made from pooled (5.7 ml) patient plasma. The column and conditions were similar to those described in Fig. 2. Following chromatography, acetonitrile was removed by evaporation and each fraction was dissolved in 1.0 ml 0.2M NH₄HCO₃ and used for immunoassay. Only fractions 5-8 were analyzed before and after thrombin digestion. FPA was measured on samples before thrombin digestion only. Top panel: immunoreactivity using the commercial Bβ 15-42 radioimmunoassay kit [IMCO Corporation, Ltd., Stockholm, Sweden]; middle panel: immunoreactivity measured with MAb/1-8C6; bottom panel: FPB immunoreactivity of fractions 5-8 after thrombin only. The FPB was found in fractions 5-8 and 17-19.

[0044] Fig. 8 depicts a scheme of in vivo fibrinogen proteolysis by thrombin and plasmin as postulated by Nossel and collaborators (adapted from Nossel et al., J. Clin. Invest., 64, 1371-1378, 1979).

[0045] Fig. 9 are graphs depicting HPLC elution patterns of the Bβ 1-42 peptide before (a) and after (b) digestion with human thrombin. The immunoreactivity profiles (shaded areas) of the fractions were obtained by a radioimmunoassay using ¹²⁵I Bβ15-42 ligand and rabbit antiserum to Bβ15-42 (Kudryk et al., supra, 1982). The amount of thrombin-digested peptide applied to the column in (b) was about 3 x that in (a). Studies have shown that better than 70% of the antigen can be recovered in the indicated fractions.

[0046] Fig. 10 is a graph depicting competition ELISA using a (T)N-DSK-coated plate (0.8 µg/ml) and MAb/T2G1s. The inhibitors were Bβ1-42 before and after digestion with thrombin. The A₄₉₀/5 min values in buffer control wells (no inhibitor added) was about 0.8.

[0047] Fig. 11 is a graph depicting inhibition of binding ¹²⁵I Bβ15-42 ligand to MAb/T2G1s by the indicated "cold" competitors. (T)N-DSK gave an inhibition curve which was identical to that shown with Bβ15-42 or thrombin digested Bβ1-42. Intact Bβ1-42, Bβ1-118, N-DSK and (B)N-DSK did not cross-react in the concentration range shown. Slight competition was observed using normal human plasma but only when added in very low dilution.

[0048] Fig. 12 is a graph depicting reactivity of two different monoclonal antibodies on fibrinogen-coated ELISA plates following thrombin digestion. The experiment was conducted on a single (96 well) plate to which thrombin was added. Digestion - at the indicated time - was terminated by addition of the thrombin inhibitor D-Phe-Pro-Arg-CH₂Cl. The A₄₉₀/5 min value for MAb/1-8C6 on control (non-digested) fibrinogen-coated plates was about 1.7. On identical plates, MAb/T2G1s only gave background color.

DETAILED DESCRIPTION OF THE INVENTION



[0049] The methods of preparing hybridomas and the antibodies expressed by such hybridomas, according to the present invention, can be conducted by fusing a transformed animal cell such as a myeloma cell with an animal spleen cell. It is preferred, however, to use mouse myeloma cells and mouse spleen cells and therefore, the present invention is hereinafter described using mouse myeloma cells and mouse spleen cells.

[0050] The method of preparing the hybridomas which express either MAb/1-8C6 (which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 but which does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 15-42) or MAb/T2G1s (which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 but which does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 1-42), according to the present invention, generally comprises the following steps:

A. Immunizing mice with either N-DSK, Bβ 1-118, Bβ 1-42 or (B)N-DSK, for production of MAb/1-8C6, or (T)N-DSK, Bβ 15-118 or Bβ 15-42, for production of MAb/T2G1s. N-DSK is prepared from fibrinogen and (T)N-DSK is prepared by thrombin digestion of N-DSK. While BALB/cJ mice are preferred, other mouse strains can be used. The immunization schedule and immunogen concentration should be such as to produce useful quantities of suitably primed splenocytes. To produce MAb/1-8C6, mice are immunized intraperitoneally (i.p.) with 0.1 ml of an emulsion of N-DSK solution (4 mg/ml) and an equal volume of complete Freund's adjuvant followed by four booster injections of the same dose using incomplete Freund's adjuvant at weekly intervals, followed by an intravenous (i.v.) boost using O.1mg N-DSK in Tris-saline 10 weeks later. To produce MAb/T2G1s, mice are immunized i.p. with 100 µg (T)N-DSK mixed with complete Freund's adjuvant, followed by four booster i.v. injections of the same dose using incomplete Freund's adjuvant, followed by an i.v. boost with 100 µg (T)N-DSK in Tris-saline.

B. Removing the spleen from each immunized mouse and making a suspension of the cells from each spleen in an appropriate medium, e.g., RPMI 1640.

C. Fusing the suspended spleen cells with mouse myeloma cells from a suitable cell line, e.g., by the use of suitable fusion promoter, e.g., PEG 1000. The preferred ratio is about four spleen cells per myeloma cell in the case of MAb/1-8C6 production and seven spleen cells per myeloma cell in the case of MAb/T2G1S. A total volume of about 0.5-1.0 ml of fusion medium is appropriate for about 10⁸ splenocytes. Many mouse myeloma cell lines are known and available, generally from members of the academic community or various deposit banks, such as the Salk Institute Cell Distribution Center, La Jolla, CA. The cell line used preferably is of the so-called "drug resistant" type, so that unfused myeloma cells do not survive in a selective medium, while hybrids survive. The most common class is 8-azaguanine resistant cell lines, which lack the enzyme hypoxanthine guanine phophoribosyl transferase and hence are not supported by HAT (hypoxanthine, aminopterin, and thymidine) medium. It is also generally preferred that the myeloma cell line used be of the so-called "non-secreting" type, in that it does not itself produce any antibody, although secreting types may be used. In certain cases, however, secreting myeloma lines may be preferred.
While the preferred fusion promoter is polyethylene glycol having an average molecular weight from about 1000 to about 4000 (commercially available as PEG 1000, etc.), other fusion promoters known in the art may be employed.

D. Diluting and culturing in separate containers, e.g., separate wells of a microtiter plate, the mixture of unfused spleen cells, unfused myeloma cells, and fused cells in a selective medium which do not support the unfused myeloma cells for a time sufficient to allow death of the unfused cells (about 14-16 days). The dilution may be a type of limiting one, in which the volume of diluent is statistically calculated to isolate a certain number of cells (e.g. 1-4) in each separate container (e.g., each well of a microtiter plate). The medium is one (e.g., HAT medium) which will not support the drug resistant (e.g., 8-azaguanine resistant) unfused myeloma cell line. Hence, these myeloma cells perish. Since the unfused spleen cells are non-malignant, they have only a finite number of generations. Thus, after a certain period of time (about 14-16 days) these unfused spleen cells fail to reproduce. The fused cells, on the other hand, continue to reproduce because they possess the malignant quality of the myeloma parent and the ability to survive in the selective medium.

E. Evaluating the supernatant in each container (well) containing a hybridoma for the presence of antibodies to (1) N-DSK and related structures [fibrinogen, N-DSK, or their fragments, for example, (B)N-DSK (Batroxobin digest of N-DSK) and Bβ 1-118] and not to the Aα 1-51 or γ 1-78 chains of N-DSK, thrombin digested Bβ 1-118, (T)N-DSK, free Bβ 1-1-4 (FPB) or Bβ 15-42, in the case of production of MAb/1-8C6, and (2) to (T)N-DSK and related structures (fibrin II, (T)N-DSK, thrombin-digested Bβ 1-42 and Bβ 15-42) and not to intact fibrinogen, N-DSK or (B)N-DSK or Bβ1-42 in the case of production of MAb/T2G1s.

F. Selecting (e.g., by limiting dilution) and cloning a hybridoma or hybridomas producing the desired antibody, e.g. antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42, but does not react with either of the peptide fragments of said Bβ chain containing only amino acid residues 1-14 or 15-42, in the case of MAb/1-8C6, or antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, but does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 1-42, in the case of MAb/T2G1s.



[0051] Once the desired hybridoma has been selected and cloned, the resultant antibody may be produced in one of two ways. The purest monoclonal antibody is produced by in vitro culturing of the desired hybridoma in a suitable medium for a suitable length of time, followed by recovery of the desired antibody from the supernatant of the clones. The suitable medium and suitable length of culturing time are known or are readily determined. This in vitro technique produces monoclonal antibody, free from other antihuman immune globulin. There is a small amount of other immune globulin present since the medium contains xenogeneic serum (e.g., fetal calf serum). However, this in vitro method may not produce a sufficient quantity or concentration of antibody for some purposes, since the concentration of monoclonal antibody is only about 50 µg/ml.

[0052] To produce a much greater concentration of slightly less pure monoclonal antibody, the desired hybridoma clones may be transferred, i.e., intraperitoneally injected into mice, preferably syngenic or semi-syngenic mice. The hybridoma forms antibody-producing tumors after a suitable incubation time, which results in a high concentration of the desired antibody (about 5-20 µg/ml) in the bloodstream and peritoneal exudate(ascites) of the host mouse. Although these host mice also have normal antibodies in their blood and ascites, the concentration of these normal antibodies is only about 5% of the monoclonal antibody concentration. Moreover, since these normal antibodies are not antihuman in their specificity, the monoclonal antibody obtained from the harvested malignant ascites or from the serum is essentially free of any contaminating antihuman immune globulin. This monoclonal antibody is high titer and high ratio of specific to non-specific immune globulin.

[0053] A process by means of which a technician can test a plasma sample to determine the amount of antigens (e.g., the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues, 1-42, in the case of MAb/1-8C6, or the amount of a peptide fragment of the BB chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, in the case of MAb/T2G1s) present for which the monoclonal antibodies of the invention are monospecific, is as follows:

[0054] Blood is collected from a patient at selected intervals and the plasma derived therefrom. The plasma sample is quickly "processed", i.e., treated with ice-chilled ethanol [50% final concentration] in order to isolate fibrinogen/fibrin peptides derived from the Bβ chain. The ethanol supernatant is generally freeze dried so as to concentrate the extract as well as to remove the solvent. The "processed" plasma sample can be split into two fractions, one which is used to detect the presence of Bβ 1-42 and one which is used to detect the presence of Bβ 15-42. The level of peptides present in the ethanol extract can be determined by either radioimmunoassay (RIA) or enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA). For example, different dilutions of the ethanol extract are mixed with fixed amounts of animal monoclonal antibody, for example, MAb/1-8C6, and the competitive radio-labeled antigen consisting of, for example, a radioactively labeled peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42, e.g., ¹²⁵I Bβ 1-42 ligand which competitive radio-labeled antigen can bind with the animal monoclonal antibody, e.g., MAb/1-8C6. Different dilutions of the ethanol extract are also mixed with fixed amounts of animal monoclonal antibody, for example, MAb/T2G1s and the competitive radio-labeled antigen consisting of a radioactively labeled peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, which competitive radio-labeled antigen e.g., ¹²⁵I Bβ15-42 ligand can bind with the animal monoclonal antibody, e.g. MAb/T2G1s. In both cases, after a suitable incubation period, a second antibody specific to animal monoclonal antibody, e.g., MAb/1-8C6 or MAb/T2G1s, as the case may be, (e.g., rabbit anti mouse whole antibody or Sac-Cel) is added. Following a second incubation period, antibody bound radio-labeled antigen (ligand) is separated and quantitated, i.e., the radioactivity of the bound radio-labeled antigen is counted. The more "cold" Bβ 1-42 (or 15-42) peptide is present in a sample, the less bound ligand will be observed for that sample. The precise amount (i.e., the concentration of the Bβ 1-42 or 15-42 peptide) in the unknown sample may be determined by comparing the inhibition value of the unknown with that obtained using a Bβ 1-42 or 15-42 standard, respectively, i.e., comparing the results of the RIA test using the plasma sample with that obtained using a standard amount of known antigen, e.g., a peptide fragment of the BB chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 or a peptide fragment of the Bβ chain of fibrin II containing amino acid residues 15-42.

[0055] Alternatively, the presence of the same antigens (i.e., Bβ 1-42 or 15-42) can be detected by ELISA. In this method, a solid support, e.g., microtiter plates, are coated overnight with competitive antigen consisting of, for example, a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing, e.g., either Bβ 1-42, N-DSK or intact fibrinogen. After a wash and "block" (minimizes non-specific binding) procedure, an appropriate dilution of MAb/1-8C6 and unknown peptide antigen in a plasma sample (or Bβ 1-42 standard) is added to the appropriate wells of the microtiter plate. If there is a large excess of Bβ 1-42 peptide in such a sample, MAb/1-8C6 will react with the peptide and little, if any, of this antibody will be available for binding to the same or related antigen which was initially coated on the surface of the microtiter plate (see above). The amount of antibody; for example, MAb/1-8C6, if any, bound to the antigen coated plate, is detected by determining the amount of enzyme-linked antibody bound to the plate, which antibody binds to, i.e., is specific to mouse immunoglobulin, for example, to MAb/1-8C6, by methods already described (Engvall, E., In Methods in Enzymology, 70, Part A, 419-439, 1980). The amount of, for example, BB 1-42, in the unknown sample is determined by comparing the inhibition value of the unknown with that obtained using, for example, a Bβ 1-42 standard (i.e., comparing the results of the ELISA test using the plasma sample with that obtained using a standard amount of known antigen, i.e., a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42. The same ELISA procedure is used to detect the presence of Bβ15-42 in a plasma sample. For example, the microtiter plates are coated with competitive antigen consisting of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, e.g. Bβ 15-42. MAb/T2G1s and the unknown peptide antigen in a plasma sample (or Bβ 15-42 standard) are added to the wells of the plate. The amount of MAb/T2G1s bound to the antigen coated plate is detected by determining the amount of enzyme-linked antibody bound to the plate, which antibody binds to, i.e., is specific to mouse immunoglobulin, for example, to MAb/T2G1s. The amount of Bβ 15-42 in the unknown sample is determined by comparing the inhibition value of the unknown with that obtained using a Bβ 15-42 standard (i.e., comparing the results of the ELISA test using the plasma sample with that obtained using a standard peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42.

[0056] A process by which a technician can detect the potential for the onset of occlusive thrombosis in a patient entails dividing the plasma sample into two fractions and determining (1) the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 in one fraction, and (2) the amount of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 in the other fraction. The technician can use either the ELISA or RIA tests as described above. The relative amounts of the peptide fragments in the plasma of a patient can then be compared. If Bβ 1-42 predominates over Bβ 15-42, this indicates that plasmin proteolysis of fibrinogen or fibrin I polymer is taking place. If Bβ 15-42 predominates over Bβ 1-42, this indicates that fibrin II has been formed, i.e., the potential for the onset of occlusive thrombosis in the patient.

[0057] The present invention also concerns test kits for determining the nature of in vivo generated peptides of fibrinogen and/or fibrin. One such test kit, i.e. a single peptide detection kit, for example, detects the presence of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42. An aliquot (e.g., 0.5 mg) of lyophilized animal monoclonal antibody for example, MAb/1-8C6, is provided. An aliquot, (e.g., 2-4 mg) of fibrinogen is also provided, which the technician uses to coat the microtiter plate to be used in ELISA testing. An aliquot (e.g., 20 µg) of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 is further provided. This is to be used by the technician to prepare a standard curve wherein the amount of MAb/1-8C6 which binds to the fibrinogen-coated ELISA plate, as shown by color intensity (as explained below), decreases as the amount of competing antigen (Bβ 1-42) in the test sample solution increases. The technician prepares dilutions of the Bβ 1-42 provided, to obtain known amounts of antigen to be used in solution in competitive ELISA testing, which technique is well known. An enzyme-linked (e.g., peroxidase-conjugated) immunoglobulin (e.g., rabbit) to animal, for example, mouse immunoglobulin is also provided to detect binding of the animal immunoglobulin, for example, MAb/1-8C6, to the fibrinogen-coated plate. Enzyme-linked IgG binding is detected using a H₂O₂ and o-dianisidine solution. Color intensity can be measured automatically using, for example, an MR 580 Microelisa Autoreader (Dynatech, Alexandria, VA).

[0058] Once the standard curve is prepared, the ELISA test can be performed using the plasma sample which is processed to remove fibrinogen (for example, as described below in Example 7) which plasma sample may contain an unknown amount of Bβ 1-42. The color intensity is measured and the amount of Bβ 1-42 in the plasma sample can be "read" from the standard curve.

[0059] Another test kit, i.e., a single peptide detection kit, in accordance with the present invention, operates as explained above, but measures the amount of Bβ 15-42 present in a plasma sample. An aliquot of lyophilized animal monoclonal antibody, for example, MAb/T2G1s (e.g., 0.5 mg), is provided. An aliquot (e.g., 2-4 mg) of fibrin is also provided which is used to coat the microtitre plate. An aliquot (e.g., 20 µg) of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15 to 42 is also provided, as is an enzyme-linked immunoglobulin, (e.g., rabbit) to animal, e.g., mouse immunoglobulin.

[0060] A third test kit, i.e., a peptide detection kit for detection of two different peptides, in accordance with the present invention, and which is the preferred test kit of the invention, can be used to determine both Bβ 1-42 and Bβ 15-42 in a plasma sample. The plasma sample is split into two fractions, one which is used to test for the presence of Bβ 1-42 and one which is used to test for the presence of Bβ 15-42. Animal monoclonal antibodies, for example, MAb/1-8C6, MAb/T2G1s, fibrinogen and fibrin (to coat the plates), Bβ 1-42 and Bβ 15-42 (to prepare standard curves) and enzyme-linked immunoglobulins, e.g., rabbit, to the animal, e.g., mouse immunoglobulin are all provided. The technician follows the procedures described above for each single peptide detection kit. In this way, the amounts of Bβ 1-42 and Bβ 15-42 can be measured and compared in each plasma sample.

[0061] The use of ELISA, as described above, is preferred. The technician can, however, use the components of the kit to perform RIA, instead, to determine the amounts of the peptide fragments.

[0062] As described above, the invention provides a means for quick analysis of the nature of the fibrin molecule being produced in vivo. If the Bβ 1-42 antigen is predominant over the Bβ 15-42 antigen in the plasma test specimen, this is an indication that plasmin proteolysis of fibrinogen or fibrin I polymer is taking place. On the other hand, if the Bβ 15-42 antigen is predominant over the Bβ 1-42 antigen, this is a signal to the clinician that fibrin II is in the circulation or may be depositing on the vessel walls, a process which may lead to occlusive thrombosis.

[0063] Although it is preferred to use spleen cells from immunized mice and mice myeloma cells for the present invention, it is also contemplated that cells from other animals, for example, rats, guinea pigs and rabbits can be used.

[0064] The procedures of the present invention can also be employed to generate antibodies to fibrinogen or fibrin I fragments from species other than human. Fragments from rabbit or dog fibrinogen, fibrin I or fibrin II can be used, for example, to generate antibodies to fibrinogen or fibrin I fragments for veterinary uses. Such antibodies can also be used in studies dealing with experimental thrombosis or thrombolytic therapy. It should be noted, however, that when treating a particular species of animal, the antibody should be derived from a different species of animal.

[0065] The assay of the present invention can be used to measure fibrinogen or fibrin degradation products in a number of trauma patient groups, for example, burn patients, patients suffering head and other bodily injuries, patients undergoing surgery (assays can be done before, during and after surgery), including open-heart and coronary bypass surgery, hemodialysis patients, cancer patients and patients with deep-vein thrombosis. Elderly patients undergoing hip surgery, for example, may develop acute deep-vein thrombosis. To alleviate this condition, two therapeutic procedures may be employed, i.e., surgery to remove thrombin (clots) or dissolution of thrombin by fibrinolytic agents such as streptokinase or tissue-type plasminogen activator (t - PA). The procedures of the present invention can be used to detect the earliest stages of clot dissolution as indicated by the aforementioned thrombolytic agents. The procedures of the present invention can be used for detection of fibrinogen or fibrin degradation products in any patients who may or potentially may suffer from occlusive thrombosis.

[0066] The MAb/T2G1s of the present invention can be used therapeutically, to remove fibrin II from the bloodstream of a patient who may be developing occlusive thrombi. For example, hemodialysis can be used to effect such removal. Using hemodialysis, the MAb/T2G1s is immobilized on a solid support, e.g., glass beads. The immobilized MAb/T2G1s-solid support complex is then placed within the hemo dialysis chamber at a location in the chamber before the blood is returned to the patient. Accordingly, during hemodialysis, the passing of the blood through the hemodialysis chamber such that the blood contacts the immobilized monoclonal antibody, essentially "cleanses" the blood of fibrin II before the blood is returned to the circulatory system of the patient.

[0067] The present invention is further described hereinbelow by reference to the following non-limiting examples.

Examples


Example 1:Preparation of N-DSK, (T)N-DSK & related fragments



[0068] Human fibrinogen was obtained from IMCO Corporation Ltd. (Stockholm, Sweden). N-DSK was prepared from the fibrinogen essentially following the technique of Blomback et al., J. Biol. Chem., 248, 5806-5820, 1973. Instead of using counter-current distribution, however, ion-exchange chromatography on Sephadex DEAE A50 (Pharmacia, Piscataway, New Jersey) was employed.

[0069] Partially pure N-DSK was applied to the ion-exchange resin in 0.1M Tris, pH 7.5. The N-DSK was eluted from the column with a linear salt gradient made with 0.1M Tris, pH 7.5 (start buffer) and 0.1M Tris, pH 7.5, additionally containing 0.3M NaCl (limit buffer). N-DSK or N-DSK - containing fractions from any stage of the purification procedure were never concentrated by freeze-drying.

[0070] (T)N-DSK and (B)N-DSK were prepared from thrombin [human thrombin, 3000 NIH units/mg protein (Sigma, St. Louis, MO)] and Batroxobin [insolubilized enzyme from venom of Bathrops atrox marajoensis, 20 Batroxobin units /ml suspension (Pentapharm Ltd., Basle, Switzerland)] digestion of fibrin gels, respectively. Fibrinogen solutions were made as described by Koehn and Canfield, Analyt. Biochem., 116,349-356,1981. Clotting was initiated by adding 5 units /ml (thrombin or Batroxobin) and digestion was continued for about 6 hours at 37°C. Cleavage with CNBr and all subsequent isolation procedures were identical to that described above for N-DSK. (T)N-DSK was also prepared directly from N-DSK. Solutions (0.5 - 1.0 mg/ml) of the latter were made in 0.1 M Tris containing 0.15M NaCl, pH 7.5 and these were later split in two equal fractions. Thrombin (10 NIH units/ml) was added to one aliquot and an equal volume of saline added to the other. Both samples were incubated at 37°C for 4 hours, after which time, an aliquot (10µl of a 0.9 x 10 ⁻⁴ M stock solution /ml digest) of the highly specific thrombin inhibitor D - Phe - Pro - Arg - CH₂ Cl (Calbiochem - Behring, San Diego, California) was added to both samples. Fibrinopeptide A (FPA) and Fibrinopeptide B (FPB) radioimmunoassays were used to measure the thrombin cleavage products. The FPA assay was made using the kit and procedure supplied by IMCO Corporation Ltd. (Stockholm, Sweden). The FPB assay was made in accordance with the procedure of Bilezikian et al., J. Clin. Invest, 56, 438-445, 1975. Chains of N-DSK as well as plasmin degradation products of fibrinogen were prepared as previously described (Blombäck et al., J. Biol. Chem., 241 1496-1512, 1972 and J. biol. Chem., 248, 5806-5820, 1973; Gardlund et al., Thromb. Res., 1, 371-388, 1972).

[0071] Various techniques were employed to determine the purity of N-DSK and its related fragments. Analytical and preparative chromatography were performed using the 1084B Hewlett-Packard liquid chromatography. The column and chromatography conditions were as described by Koehn and Canfield, Analyt. Biochem., 116, 349-356 1981. Electroimmunoassay for N-DSK and related structures was similar to that described previously (Kudryk et al., supra 1982). Gels were made by mixing N-DSK antisera (2416) with hot gel solutions to give an antisera concentration of about 0.4%. Gel electrophoresis and amino acid analysis were as described (Blombäck et al., J. Biol. Chem, 248, 5806-5820, 1973; Hessel et al., Eur. J. Biochem., 98, 521-534, 1979).

[0072] The disulfide-bonded N-DSK, (T)N-DSK and (B)N-DSK showed slight but detectable differences in mobility on 7% acrylamide gels in SDS as illustrated in Fig. 1. Following reduction, a characteristic band pattern for chains of each fragment was obtained on 10% acrylamide gels in SDS(not shown). That is, N-DSK and (B)N-DSK differed only in the mobility of the Aα chain. By comparison with N-DSK, reduced (T)N-DSK showed different mobility for both the Aα and Bβ chains. These observations were consistent with those reported by others (Hessel, Doctoral thesis, Chem. Dept. Karolinska Institutet, Stockholm, Sweden, 1975; Hessel et al., Eur. J. Biochem., 98, 521-534, 1979). In order to determine the the component fibrinopeptide content of each, the three N-DSK species were treated with thrombin. Following this, each digest was adjusted to 9% trichloracetic acid and the thrombin-cleaved peptides, if any, were isolated from the supernatant using adsorption on Sep-Pak C₁₈ cartridges as previously described (Koehn and Canfield, supra, 1981). The peptides were later identified by high-performance liquid chromatography (HPLC) as shown in Fig. 2. Both FPA and FPB were released from N-DSK(Fig. 2a). The major peptide recovered from a thrombin digest of (B)N-DSK was FPB (Fig. 2b). No peptides were released from gel filtered (T)N-DSK when it was digested with thrombin a second time.

[0073] The component chains of N-DSK exhibited single bands on 10% acrylamide gels and gave amino acid compositions which were consistent with those already described (Blombäck et al., supra, 1972, 1973; Hessel et al., supra, 1979).

[0074] The peptide Bβ1-42 was prepared by activating plasminogen-containing fibrinogen solutions as follows. IMCO fibrinogen (Lot F-171) was diluted to a concentration of about 4.0 mg/ml in 0.05M Tris, pH 7.4. After adding 100 U/ml streptokinase [Lot 112F-0373), 4500 U/mg solid, Sigma, St. Louis, MO], digestion was allowed to proceed at 37°C/60 min. Following this time, most of the non-digested fibrinogen was precipitated by heating at 60°C/30 min. After centrifugation, the supernatant was passed on a Sep-Pac C₁₈ cartridge (Waters Associates, Milford, MA). The adsorbed peptides, including Bβ1-42, were eluted using 50% acetonitrile. High performance liquid chromatography (HPLC) was later used in an effort to purify the Bβ1-42 peptide. The column and procedure were essentially those described by Koehn & Canfield, Analyt. Biochem. 116, 349-356, 1981.

[0075] The peptides released from fibrinogen as consequence of streptokinase activation gave a very complex HPLC pattern (not shown). By following the immunoreactivity of the HPLC fractions with the Bβ15-42 radioimmunoassay as previously described (Kudryk et al., supra, 1982), several reactive peaks were obtained. One of these was isolated in preparative HPLC runs. As shown in of Fig. 9a, the peak eluting at or near fraction 16 reacted with rabbit antiserum to Bβ15-42. These results were expected since this antiserum does not distinguish Bβ15-42 from Bβ1-42 (Kudryk et al., supra, 1982). When an aliquot of this same material, Bβ1-42, was digested with human thrombin and re-chromatographed under the same conditions, the pattern shown in Fig. 9b was observed. As a consequence of thrombin digestion, the peak shown in Fig. 9a disappeared and two new peaks appeared. One of these eluted at or near fractions 6-8 and reacted in the Bβ15-42 immunoassay. This material was identified as Bβ15-42 and resulted from thrombin cleavage of Bβ1-42 at the 14 Arg-15 Gly bond. The IMCO standard Bβ15-42 also eluted in this position when separated by HPLC under the same conditions (not shown). The second peak, eluting at or near fraction 21, was identified as FPB. This was established from the known elution position of the FPB standard in the HPLC system. In addition, the fraction 21 peak reacted in the FPB radioimmunoassay (not shown).

[0076] The peptide Bβ15-42 was obtained from IMCO or prepared directly from Bβ1-42 by digestion, as described above, with human thrombin [3000 NIH units/mg protein, Sigma, St.Louis, MO]. In the latter procedure, Bβ1-42 was dissolved in 0.2M NH₄HCO₃ (pH 8.0) and digestion was at 37°C/90 min. After this time, an aliquot (10 µl of a 0.9 x 10 ⁻⁴ M stock solution per ml digest) of the highly specific thrombin inhibitor D-Phe-Pro-Arg-CH₂Cl (Calbiochem-Behring, San Diego, CA) was added in order to stop digestion.

Example 2: Production of Monoclonal Antibodies



[0077] To produce MAb/1-8C6, BALB/cJ mice (Jackson Laboratories, Bar Harbor, ME.) were each immunized intraperitoneally (i.p.) with 0.1 ml of an emulsion of N-DSK solution (4 mg/ml) and an equal volume of complete Freund's adjuvant. To produce MAb/T2G1, BALB/cJ mice were each immunized i.p. with 100 µg (T)N-DSK mixed with complete Freund's adjuvant. In both cases, the mice were boosted 4 times with the same dose (using incomplete Freund's adjuvant) at weekly intervals. In the case of MAb/1-8C6 production, the animals were boosted intravenously (i.v.) after a 10-week pause, using 100 ug N-DSK in Tris-saline. In the case of MAb/T2G1 production, the animals were boosted five weeks after the initial injection, i.v., with 100 µg (T)N-DSK in Tris-saline. In both cases, spleens were removed from the mice three days later and a single cell suspension was made by pressing the tissue through a stainless steel mesh.

[0078] Cell fusion in both cases was performed according to the procedure developed by Köhler and Milstein, Eur. J. Immun.,6, 511-519, 1976. Spleen cells were fused with myeloma cells [P3X63Ag8.653] at a ratio of either 4:1 (MAb/1-8C6) or 7:1(MAb/T2G1s) in 35% polyethylene glycol-1000 (Koch-Light Labs, Colmbrook, U.K.) in RPMI 1640 medium (GIBCO Labs, Grand Island, N.Y.) at room temperature for 1 minute. Cells were pelleted, washed and resuspended in 215 ml RPMI 1640 containing 10% NCTC 109 (MA Bioproducts, Walkersville, MD) and 20% fetal calf serum (Sterile Systems, Logan, VT). Normal spleen cells (10⁸) were added as a feeder layer. Following overnight incubation in a humidified 5% CO₂ atmosphere at 37°C, hypoxanthine-aminopetrin - thymidine (HAT) medium (Littlefield, Science, 145, 709-710,1964) was added to start HAT selection. After overnight incubation at 37°C in 5% CO₂, cells in the same HAT medium were cloned by limiting dilution in 96 - well culture plates [Costar 3596 (Cambridge, MA.)] Hybridoma clones were cultured for 16 days and then media were assayed for antibody.

Example 3: Detection of anti N-DSK and anti (T)N-DSK antibodies produced by hybridomas



[0079] Initial testing of hybridoma culture media was by the ELISA method of Engvall, Methods in Enzymology, 70 (Part A), 419-439,1980,Acad. Press, N.Y. Clone culture fluids were screened on polyvinyl microtiter plates (Costar, Cambridge, MA.), each well containing one of six antigens: fibrinogen, N-DSK, (T)N-DSK, the Aα 1-51, Bβ1-118 or γ 1-78 chains of N-DSK, at a concentration of about 5-15 µg/ml in Na₂CO₃/NaHCo₃, pH 9.6. An aliquot of undiluted clone culture fluid was added to each of the six "antigen" wells. After an incubation and subsequent wash cycle, an appropriate dilution of peroxidase - conjugated rabbit immunoglobulin to mouse immunoglobulin [Accurate Chemicals, Westbury, N.Y.] reagent was added. Enzyme-linked IgG binding was detected using a H₂O₂ and o-dianisidine solution. Color intensity was measured automatically using the MR580 Microelisa Autoreader (Dynatech, Alexandria, VA.).

[0080] Of the 182 hybridoma clones tested for detectable anti - N-DSK antibodies, one (ATCC HB 8418) produced a very high concentration of antibody which reacted not only with the immunogen (N-DSK) but also with intact fibrinogen, (B)N-DSK, Bβ 1-118 and Bβ 1-42. A large quantity of MAb/1-8C6 was obtained by culturing the hybridoma in RPMI 1640 containing 10% NCTC 109 and 20% fetal calf serum.

[0081] Later, MAb/1-8C6 was purified by precipitation with half-saturated ammonium sulfate and the IgG obtained from the second precipitation was dissolved in 0.1 M Tris containing 0.02% NaN₃ (pH 7.5). The final solution was 1/10 the original volume of culture medium. Determination of IgG class was tested in Ouchterlony using rabbit anti-mouse immunoglobulin class-specific antisera (Litton Bionetics Inc., Charleston, SC). As shown in Fig. 3, MAb/1-8C6 reacted only with IgG2a antiserum. The light-chain class of the antibody was not determined.

[0082] Of the 1632 hybridoma clones tested for anti-(T)N-DSK antibodies, 247 clones produced a very high concentration of such antibodies. Most of these clone culture fluids also reacted with N-DSK and fibrinogen coated plates. However, clone T2G1 produced antibodies which, in addition to binding all the three coated plates mentioned above, also bound the ¹²⁵I Bβ15-42 ligand in solution. Due to its varied cross-reactivity, T2G1 was deemed to be a mixed clone and, therefore, was subcloned. From the latter procedure, one single clone (T2G1s) out of the 96 tested was shown to secrete an antibody which, on ELISA, reacted only with (T)N-DSK coated plates and was also capable of binding ¹²⁵I Bβ15-42 ligand in solution.

[0083] After subcloning, a mass culture of clone T2G1s was prepared in RPMI 1640 containing 10% NCTC 109 and 20% fetal calf serum. The antibody [MAb/T2G1s] which accumulated in the spent medium of this hybridoma was purified by precipitation with half-saturated ammonium sulfate and the IgG obtained from the second precipitation was dissolved in 0.1M Tris containing 0.02% NaN₃ (pH 7.5). The final solution was 1/10 the original volume of culture medium. As determined by Ouchterlony testing as described above, MAb/T2G1s reacted only with IgG₁ antiserum. The light chain class of MAb/T2G1s was not determined.

Example 4: Specificity of MAb/1-8C6 for N-DSK and related structures



[0084] As previously described, the original culture fluid from hybridoma clone 1-8C6 (ATCC HB8418) was tested by ELISA on plates coated with N-DSK or any of the related structures mentioned earlier. Strongly positive reactions were obtained on plates with either N-DSK, fibrinogen or Bβ 1-118. Plates coated with (T)N-DSK, Aα 1-51 or γ 1-78 did not react. The specificity of MAb/1-8C6 was further checked by competitive immunoassay using both the ELISA and radioimmunoassay methods. The ELISA was a two-step procedure. Microtiter plates were coated with BB 1-118 (5 ug/ml) at +4°C/16 hr. MAb/1-8C6 was diluted in TPBS (phosphate buffered saline containing a detergent, Tween-20) so as to give an A₄₉₀/10min value of 1.5-2.0. This dilution of antibody was mixed with the standard (Bβ 1-118) or any other desired competitor, and added to the plate. After washing, the amount of MAb/1-8C6 bound to the solid phase was detected using the enzyme anti-immunoglobulin conjugate, substrate and chromogen solutions described earlier (see Example 3). In these assays, Bβ 1-118, N-DSK and intact fibrinogen were found to react with MAb/1-8C6. (T)N-DSK, Aα 1-51 and γ 1-78 did not react despite the fact that solutions of each used for the assay were about 100 x molar excess in comparison to Bβ 1-118, N-DSK or intact fibrinogen. Identical results were obtained on ELISA using plates coated with either N-DSK or intact fibrinogen.

[0085] In the radioimmunoassay, the ligand was ¹²⁵I-Bβ 1-118. The latter was prepared using the procedure described for the iodination of the Bβ 15-42 peptide from human fibrinogen (Kudryk et al., supra, 1982). Bound ligand was separated using Sac-Cel (donkey anti-mouse cellulose suspensions) following the suggestions outlined by the manufacturer (Wellcome Diagnostics, Research Triangle Park, NC). The radioimmunoassay consisted of four compartments and included two separate incubation periods. The assay procedure was almost identical to that recently described (Kudryk et al., supra, 1982), the exceptions being the ligand and second antibody as indicated earlier.

[0086] Appropriate dilutions of MAb/1-8C6 and Sac-Cel could bind almost 90% of the ¹²⁵I-Bβ 1-118 ligand. In the radioimmunoassay, dilutions of these reagents were selected so as to give about 40% binding of ligand in absence of any cold competitor. In these experiments, non-specific binding of the ligand did not exceed 5% when buffer or IgG isolated from a control clone culture fluid was substituted for MAb/1-8C6. Specific binding of the ligand was progressively inhibited by increasing quantities of 'cold' Bβ 1-118. As shown in Fig. 4, 50% inhibition of ligand binding was obtained at a concentration of approximately 5 x 10⁻⁹M. Fibrinogen, N-DSK and (B)N-DSK all showed strong competition. In Fig. 4, N-DSK appears to be a somewhat weaker competitor by comparison with intact fibrinogen and (B)N-DSK. However, in subsequent experiments, using different lots of N-DSK, inhibition curves coincident with fibrinogen and (B)N-DSK were obtained (not shown). By contrast, (T)N-DSK, in the concentration range given in Fig. 4, did not compete and, therefore, was not bound by MAb/1-8C6. This was observed with every lot of (T)N-DSK tested. Slight competition with (T)N-DSK was detected, but only at a concentration greater than 10⁻⁶M.

[0087] Due to the known specificity of thrombin and the difference in reactivity between Bβ 1-118 and (T)N-DSK with MAb/1-8C6, Bβ 1-118 was digested with thrombin for use as a competitor in the radioimmunoassay. As shown in Fig. 5, a definite change in mobility was found for Bβ 1-118 after thrombin cleavage. This was observed both on 7 and 10% acrylamide gels in SDS. This change in mobility is consistent with the findings reported by Hessel et al., supra, 1979, and reflects the cleavage of the Bβ 14 Arg-15 Gly bond by thrombin. Figure 6 depicts the competition curves obtained with Bβ 1-118 before and after thrombin digestion. As can be seen, approximately 2000 molar excess of the digested chain was required to achieve the same inhibition obtained with non-digested Bβ 1-118. Pure FPB, Bβ 15-42 or mixtures of the two peptides did not compete in the radioimmunoassay in the concentration range shown in Fig. 6.

[0088] The difference in reactivity with Bβ 1-118 and that when it is part of a multi-chain structure may be due to the fact that the epitope to which MAb/1-8C6 is directed is fully reactive only when it is surface-oriented on fibrinogen and related disulfide-bonded fragments.

[0089] As shown in Fig. 6, most of the Bβ 1-118 reactivity was lost when the chain was digested with thrombin. This result, coupled with the fact that (T)N-DSK, free Bβ 1-14 (FPB) as well as Bβ 15-42 failed to react with MAb/1-8C6, clearly shows that this antibody is directed to an epitope in or around the thrombin susceptible Bβ 14 Arg-15 Gly bond. When the latter is completely cleaved with thrombin, all immunoreactivity by Bβ 1-118 and related structures is abolished.

Example 5: Specificity of MAb/T2G1s



[0090] The specificity of MAb/T2G1s was tested by the ELISA method. Microtiter plates were coated with (T)N-DSK (0.8 µg/ml) at +4°C/16 hours. MAb/T2G1s was diluted in TPBS so as to give an A₄₉₀/5 min value of about 1.6. This dilution of antibody was mixed with dilutions of the desired competitor and added to the plate. After washing, the antibody bound to the solid phase was detected as described above (see Example 3).

[0091] In ELISA, MAb/T2G1s reacted strongly with (T)N-DSK coated plates. Since this antibody also bound the ¹²⁵I Bβ15-42 ligand in solution, attempts were made to coat the peptide on plates and demonstrate that MAb/T2G1s would bind such plates. In these experiments, stock solutions [0.05-0.1 µg/ml] of the Bβ15-42 peptide were made in coupling buffer described above.Plates coated with these solutions were shown to specifically bind MAb/T2G1s. Similar results were obtained on plates coated with thrombin-digested Bβ1-42. MAb/T2G1s did not bind to plates coated with Bβ1-42. Fig. 10 shows the results of a competitive ELISA experiment using (T)N-DSK coated plates and MAb/T2G1s. The competitors used were Bβ1-42 before and after digestion with thrombin. The BB15-42 peptide gave a competition curve similar to that observed with thrombin-digested Bβ1-42.

[0092] A radioimmunoassay was also employed in order to check the specificity of MAb/T2G1s. The ligand utilized was ¹²⁵I Bβ15-42. The latter was prepared using the procedure already described (Kudryk et al., supra, 1982). Bound ligand was separated using Sac-Cel (donkey anti-mouse immunoglobulin cellulose suspensions) following the suggestions outlined by the manufacturer (Wellcome Diagnostics, Research Triangle Park, NC). The radioimmunoassay consisted of four compartments and included two separate incubation periods and was almost identical to that recently described (Kudryk et al., supra, 1982), the exception being the specific [MAb/T2G1s] and second antibody as indicated above.

[0093] Appropriate dilutions of the antibody and second antibody (Sac-Cel) were selected so as to give about 40% binding of the ¹²⁵I Bβ15-42 ligand in absence of a competitor. As shown in Fig. 11, binding of this ligand was inhibited by increasing quantities of "cold" Bβ15-42 standard. The 50% displacement level was obtained at a concentration of about 2 x 10⁻⁸M. Similar inhibition was observed with thrombin digested BB1-42 and (T)N-DSK (not shown). Intact Bβ1-42, N-DSK and (B)N-DSK showed little, if any, inhibition. Different lots of IMCO fibrinogen showed slight inhibition. However, the molar ratios comparing maximum displacement of ligand for Bβ15-42 against that of intact fibrinogen was on the order of 1:250.

[0094] Based on the data shown in Fig. 10 and Fig. 11, the above results are interpreted in the following manner. Since FPB is part of Bβ1-42 and is missing from both (T)N-DSK and Bβ15-42, it would appear that immunoreactivity between MAb/T2G1s and fibrinogen or its fragments requires a prior cleavage of the bond Bβ 14-Arg 15 Gly in all the antigens.

[0095] As shown in Fig. 11, a slight but measurable cross-reaction was detected with MAb/T2G1s and intact fibrinogen. As already mentioned, this was observed with several different lots of IMCO fibrinogen. One explanation for this is that such fibrinogen preparations contain some small quantity of fibrin which remain in solution as a fibrinogen-fibrin complex [Shainoff & Page, 1962]. In support of this is the fact that NH₂-terminal analyses on such preparations almost always show small amounts of glycine. This amino acid is the new NH₂-terminal residue when both FPA and FPB are released as consequence of thrombin action [Blombäck & Yamashina, 1958].

[0096] As described in Example 4, MAb/1-8C6 completely cross-reacted with intact fibrinogen. Because MAb/T2G1s reacted only slightly with different fibrinogen preparations, such reactions were probably due to trace contamination by fibrin. In order to compare the difference in reactivity of these two antibodies towards fibrinogen, a very simple experiment was designed using fibrinogen-coated ELISA plates. In preparation of fibrinogen and fibrin-coated ELISA plates, IMCO fibrinogen (Lot F-155, 4.3 mg/ml) was diluted 1/500 in Na₂CO3/NaHCO₃, pH 9.6 and coated onto polyvinyl microtiter plates at +4°C/16 hours. After washing, "blocking" with 5% BSA [RIA-grade BSA, Sigma, St. Louis, MO] and subsequent washing 100 µl of human thrombin [Sigman, St. Louis, MO] stock solution (1 NIH unit/ml in n-saline) was added to each well. At selected intervals, thrombin was inhibited by adding an equal volume of the D-Phe-Pro-Arg-CH₂Cl stock solution given above. Subsequent washings, reactions and detection of bound antibody were identical to that already described.

[0097] As shown in Fig. 12, significant A₄₉₀/5 min values were obtained with MAb/1-8C6 when it was added to fibrinogen-coated wells which had been treated with a thrombin solution for 90 seconds or less. When this antibody was added to wells treated with thrombin for periods longer than 90 seconds, a sharp decrease in color resulted which meant a decrease in antibody binding. The completely predictable reverse result was obtained with MAb/T2G1s. Only background color was observed when this antibody was added to non-treated wells. However, with increasing time of exposure to thrombin, highly significant A₄₉₀/5 min values were recorded. These results suggest that thrombin digestion progressively exposed a neoepitope on the surface of the ELISA plate and that MAb/T2G1s was able to react with and bind to this neoepitope.

Example 6 Clinical Applications of MAb/1-8C6



[0098] Once the specificity of MAb/1-8C6 was established, it was of interest to study its usefulness in clinical investigation. For this purpose, blood was collected from uremic patients at selected intervals during hemodialysis. The collection and processing were identical to that already described (Kudryk et al., Thromb. Res., 25, 277-291, 1982). In order to remove the last traces of fibrinogen, lyophilized ethanol extracts of patient plasma were further purified on disposable Sep-Pak C₁₈ cartridges (Waters Associates, Milford, MA) according to the method of Koehn and Canfield, Analyt. Biochem, 116, 349-456, 1981.

[0099] In previous experiments it was determined that such patients had very high levels of Bβ 15-42 immunoreactive material, as much as 40 or more times the 0.41 pmoles/ml found in normal subjects (Kudryk et al., supra, 1982). In the present study it was of interest to setermine what percent, if any, of the Bβ 15-42 immunoreactive material normally found in this patient group would cross-react with MAb/1-8C6.

[0100] Since fibrinogen reacts with MAb/1-8C6(Fig. 4), patient plasma extracts prepared by methods described previously (Kudryk et al., supra, 1982) were further purified on Sep-Pak C₁₈ cartridges. Later, the samples were split into two fractions and one of these was digested with thrombin (90 NIH units/ml at 37°C/60 min). Finally, appropriate dilutions of each sample were made and used in the radioimmunoassay as described in Example 4.

[0101] Table 1 shows the plasma concentration of fibrinogen, FPA and Bβ 15-42 immunoreactive material in three patients. Samples were taken prior to and at two different time points in the dialysis program. The latter two samples were from the venous (outlet side) blood line. The FPA concentration in the pre-dialysis sample from each patient gave slightly higher values than the 1.4 ± 0.6 pmoles/ml level found in normal subjects using the IMCO assay kit (Wilhelmsson et al., Clin. Nephrol., 15, 252-258,


1981). A drop in FPA was observed in sample 2 in two of the three patients. The last sample from all three patients gave higher values as compared to sample 2.

[0102] These results are consistent with previous findings which showed that FPA was normal or near normal during the early stages of dialysis when heparin levels were greater than 0.5IU/ml. When heparin fell below this value, increases in FPA concentration were generally observed (Wilhelmsson et al., supra, 1981). The efficiency of heparin therapy can be checked in this manner. For example, an elevation in plasma levels of FPA can be taken as an index of high thrombin activity which may result in intravascular fibrin deposition.

[0103] Regarding Bβ 15-42 immunoreactivity, the level detected with the rabbit antiserum was significantly higher than the 0.41 pmoles/ml found in normal plasma (Kudryk et al., supra, 1982). Patient 172 showed very similar concentration in all three samples. This was not the case for the other two patients, especially when the pre-dialysis and sample 3 levels were compared. The concentration of Bβ 15-42 immunoreactive material detected with MAb/1-8C6 was similar but not identical to that found using the rabbit antiserum. From the specificity of MAb/1-8C6 described earlier, these results suggested that most but not all the Bβ 15-42 immunoreactive material was present on a peptide or peptides which contain an intact Bβ 14 Arg-15 Gly bond. This was verified in part when each sample was digested with thrombin and reassayed using both systems. The concentration of Bβ 15-42 immunoreactive material detected with the rabbit antiserum was similar before and after thrombin digestion. On the other hand, very little, if any, immunoreactive material could be measured with MAb/1-8C6 in the thrombin digested samples (data not shown).

[0104] In order to further characterize the nature of the in vivo degradation products, an extract was prepared from pooled patient plasma. The plasma used was from several patients, excluding those listed in Table 1, and was collected at different times during dialysis. The extract was fractionated by high-performance liquid chromatography as described by Koehn and Canfield, Analyt. Biochem, 116, 349-356, 1981. The fractions were later assayed for FPA as well as Bβ 15-42 immunoreactivity. Those fractions showing high Bβ 15-42 activity were digested with thrombin and later reanalyzed using both Bβ 15-42 assays as well as the FPB immunoassay. As shown in Fig. 7, FPA was recovered in fractions 11-14. Bβ 15-42 immunoreactivity was detected in fractions 5-8 using both the rabbit antisera and MAb/1-8C6. When each fraction was digested with thrombin and reassayed, very little, if any, change in immunoreactivity was observed with the rabbit antibody. In contrast, major differences were obtained on the thrombin-digested fractions using the other two assays. Virtually all immunoreactivity with MAb/1-8C6 was lost. Significant levels of FPB immunoreactivity were obtained in fraction 5-8 only after thrombin digestion. It should also be pointed out that some FPB immunoreactivity was detected in fractions 5-8 and 17-19 prior to digestion with thrombin.

[0105] From the specificity of MAb/1-8C6 already discussed, these results suggest that most of the Bβ 15-42 immunoreactive material was present on peptides which contained FPB. The data shown in Fig. 7 also support this conclusion. That is, peptides eluting much earlier than free FPB specifically reacted with the FPB antiserum. Therefore, such peptides could only have originated from fibrinogen or fibrin I but not fibrin II. Several additional comments need be made concerning the data presented in Table 1 and Fig. 7. Regarding the level of immunoreactive material detected with the rabbit antiserum and MAb/1-8C6, sample 2 from patient 589 shows that a significantly higher amount was measured with the monoclonal antibody. One explanation for this is that some Bβ 15-42 immunoreactive material which could normally be detected by the rabbit antiserum was lost during sample preparation. It has already been shown that the Bβ 15-42 standard undergoes rapid decay when added to normal or patient serum (Kudryk et al., supra, 1982). A number of immunoreactivity profiles have been obtained on high-performance liquid chromatography fractions with the three Bβ chain related assays described in this study. The one shown in Fig. 7 was from an experiment using an extract from pooled patient plasma. Chromatography of other samples gave quite different results. In some, Bβ chain immunoreactivity was also located in fractions eluting near free FPA. From these results it is clear that such patients have a number of peptides which can cross-react with the antibodies described in this report. The identification of the precise molecular nature of these in vivo peptides is now being investigated. Finally, some comment on the very high level of Bβ 15-42 immunoreactive material in these patients must be made. Since FPA concentrations were normal or near normal in samples 1 and 2, it seems clear that fibrin formation was effectively controlled in all three patients by the heparin regimen which was employed. With this in mind, as well as the fact that even the pre-dialysis levels of Bβ 15-42 immunoreactive material were so significantly elevated, the question of impaired catabolism of these degradation products must be considered. In this regard, Sherman and collaborators studied turnover of much larger fibrinogen degradation products in several animal models. Their results suggested that loss of functioning renal tissue rather than uremia per se was responsible for decreased clearance of fibrinogen degradation products (Hayne and Sherman, Am. J. Path.,71, 219-236, 1973; Iio et al., J. Lab. Clin. Med., 87, 934-946, 1976). As seen in Table 1, some patients show a steady increase of these peptides during dialysis. This could result from fibrinogenolysis which, in its early stages, would not be accompanied by increases in FPA concentration (Bilezikian et al., J. Clin. Invest., 56 438-445, 1975).

[0106] On the basis of the above data, we conclude that MAb/1-8C6 serves as a useful reagent in clinical studies on disease states associated with fibrino(geno)lysis. Important information regarding the nature of in vivo generated fibrin and the kinetics of its dissolution may be obtained by using immunoassays which measure the Bβ chain marker discussed above.

Example 7: Determining the presence of Bβ 1-42 and Bβ 15-42 in clinical test specimens



[0107] Blood is collected from patients by flawless venipuncture with 1.4 mm needle. After discarding the first 2-3 ml, the subsequent 9 ml of blood is allowed to run directly into a 12 ml polystyrene tube with 1 ml 0.15 M NaCl containing 1000 IU heparin and 1000 KIU Trasylol. The tube is immediately inverted 3 times against a plastic film and centrifuged at 3000 - 3500 g, 4°C, 20 minutes. Each plasma sample is processed directly or is stored at -70°C. Frozen plasma samples are quickly thawed at 37°C and then processed immediately as described. The plasma processing is performed as follows. To 1.0 ml plasma in a 3 ml plastic tube 1.0 ml of chilled (ice-bath) ethanol is added. After mixing and incubation in an ice-bath for 30 minutes the sample is centrifuged as above. The supernatant is transferred to a new centrifuge tube and kept in an ice-bath for an additional 30 minutes and re-centrifuged. The second supernatant is the "processed plasma sample."

[0108] In order to remove the last traces of fibrinogen from the "processed plasma sample," the latter ace further purified on disposable Sep-Pak C₁₈ cartridges (Waters Associates, Milford, MA) according to the method of Koehn and Canfield, Analyt. Biochem., 116, 349-356 (1981).

[0109] Each "processed plasma sample" is tested by competitive immunoassays: enzyme linked immunoassay (ELISA) or radioimmunoassay (RIA). The "processed plasma sample" can be split into two fractions, one which is used to detect the presence of Bβ 1-42, and one which is used to detect the presence of Bβ 15-42. In order to test for the presence of Bβ 1-42 antigen using ELISA, microtiter plates are coated with, e.g., Bβ 1-42 or Bβ 1-118 (5 µg/ml) at +4°C/16 hours. MAb/1-8C6 is diluted in TPBS (phosphate buffered saline containing a detergent, Tween-20) to give an A₄₉₀/10 min. value of 1.5-2.0. This dilution is mixed with dilutions of the "processed plasma sample" and added to the plate. After incubation and washing, the antibody bound to the solid phase is detected as described earlier (see Example 3).

[0110] To test for the presence of Bβ 15-42 antigen using ELISA, microtiter plates are coated with Bβ 15-42 at 4°C/16 hr.. MAb/T2G1s is diluted in TPBS to give an A₄₉₀/5 min value of about 1.6. This dilution of antibody is mixed with dilutions of the "processed plasma sample" and added to the plate. After incubation and washing, the antibody bound to the solid phase is detected as described above (see Example 3).

[0111] To test the "processed plasma sample" for the presence of Bβ 1-42 antigen using RIA, the procedure described above (see Example 4) is followed. The ligand is ¹²⁵I - Bβ 1-42 or ¹²⁵I - Bβ 1-118, the antibody is MAb/1-8C6 and the second antibody is donkey antimouse antibody suspended in cellulose, i.e., Sac-Cel). (see Example 4).

[0112] To test for the presence of Bβ 15-42 antigen using RIA, the same procedure described above is followed. The ligand is ¹²⁵ I-Bβ 15-42, the antibody is MAb/T2G1s and the second antibody is Sac Cel.


Claims

Claims for the following Contracting State(s): BE, CH, LI, DE, FR, GB, IT, NL, SE

1. A monoclonal antibody produced by hybridomas, said hybridomas formed by fusion of cells from an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with a NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I, and thereafter separating the hybridomas and selecting the hybridoma which produces the monospecific antibody to a fragment of human fibrinogen or fibrin I: wherein said antibody:

a) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 of said Bβ chain;

b) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14; and

c) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 15-42.


 
2. A monoclonal antibody according to claim 1, wherein said fragment of human fibrinogen is formed by cleavage of said human fibrinogen or fibrin I with CNBr.
 
3. A monoclonal antibody according to claim 1, wherein said fragment of human fibrinogen is N-DSK and wherein said fragment of fibrin I is (B)N-DSK, respectively.
 
4. A monoclonal antibody according to claim 1, wherein said fragment of human fibrinogen or fibrin I is selected from the group consisting of Bβ 1-118 and Bβ 1-42.
 
5. A monoclonal antibody according to anyone of claims 1-4, wherein said antibody is of the class IgG, preferably of the subclass IgG2a.
 
6. A monoclonal antibody according to anyone of claims 1-5 wherein said antibody is prepared by a method, which comprises the steps of:

a) immunizing an animal, preferably a mouse, with a solution comprising N-DSK;

b) removing the spleen from each animal of step a) and making a suspension of the cells from each spleen;

c) fusing said cells of each spleen of step b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

d) diluting and culturing the fused cells from step c) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrinogen, N-DSK, or any related fragments thereof;

f) selecting and cloning a hybridoma which produces antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42, but does not react with either of the peptide fragments of said Bβ chain containing amino acid residues 1-14 or 15-42; and

g) recovering the antibody frown the supernatant of said clones.


 
7. A monoclonal antibody according to anyone of claims 1 to 6, wherein said antibody is prepared by the method of claim 6, steps (a) to (f), which method includes the additional steps of:

(g) transferring the clones obtained in step (f) intraperitoneally into animals; and

h) harvesting the malignant ascites or serum from said animals, which ascites or serum contains the desired antibody.


 
8. A monoclonal antibody produced by hybridoma ATCC HB 8418.
 
9. A monoclonal antibody produced by hybridomas, said hybridomas formed by fusion of cells from an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with a NH₂-terminal fragment of human fibrin II, and thereafter separating the hybridomas and selecting the hybridoma which produces the monospecific antibody to a fragment of human fibrin II; wherein said antibody:

a) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 of said BB chain;

b) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14.

c) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42.


 
10. A monoclonal antibody according to claim 9, wherein said fragment of human fibrin II is formed by cleavage of said human fibrin II with CNBr.
 
11. A monoclonal antibody according to claim 9, wherein said fragment of human fibrin II is (T)N-DSK.
 
12. A monoclonal antibody according to claim 9, wherein said fragment of human fibrin II is selected from the group consisting of Bβ 15-118 and Bβ 15-42.
 
13. A monoclonal antibody according to claim 9, wherein said antibody is of the class IgG, preferably of the sub-class IgG₁.
 
14. A monoclonal antibody according to anyone of claims 9-13 wherein said antibody is prepared by a method which comprises the steps of:

a) immunizing an animal, preferably a mouse, with a solution comprising (T)N-DSK;

b) removing the spleen from each animal of step a) and making a suspension of the cells from each spleen;

c) fusing said cells of each spleen of step b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

d) diluting and culturing the fused cells from step c) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrin II, (T)N-DSK, or any related fragments thereof;

f) selecting and cloning a hybridoma which produces antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, but does not react with either of the peptide fragments of the Bβ chain of fibrinogen or fibrin I containing only amino acid residues 1-14 or 1-42; and

g) recovering the antibody from the supernatant of said clones.


 
15. A monoclonal antibody according to anyone of claims 9 to 13, wherein said antibody is prepared by the method of claim 14, steps (a) to (f), which method includes the additional steps of:

(g) transferring the clones of step (f) intraperitoneally into mice; and

(h) harvesting the malignant ascites or serum from said mice which ascites or serum contains the desired antibody.


 
16. A monoclonal antibody produced by hybridoma ATCC HB 8426.
 
17. A monoclonal antibody according to anyone of claims 9-16 wherein the monoclonal antibody reacts with the products produced by thrombin digestion of human fibrinogen but does not react with the product resulting from thrombin digestion of rabbit fibrinogen.
 
18. A monoclonal antibody according to anyone of claims 1 to 17, wherein said myeloma line preferably comprises P3X63Ag8.653 myeloma cells, and wherein said spleen cells are preferably obtained from a BALB/cJ mouse.
 
19. A hybridoma for producing the monoclonal antibody according to anyone of claims 1 to 18, said hybridoma being formed by fusion of cells from an animal previously immunized with an NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I, wherein said animal is preferably a mouse, in particular a BALB/cJ mouse and wherein the myeloma cells preferably comprise P3X63Ag8.653 myeloma cells.
 
20. A hybridoma according to claim 19, wherein said fragment of human fibrinogen is formed by cleavage of said fibrinogen or fibrin I with CNBr.
 
21. A hybridoma according to claim 19, wherein said fragment of human fibrinogen is N-DSK, and wherein said fragment of fibrin I is (B)N-DSK, respectively.
 
22. A hybridoma according to claim 19, wherein said fragment of human fibrinogen or fibrin I is selected from the group consisting of Bβ 1-118 and Bβ 1-42.
 
23. A hybridoma according to claim 19, wherein Said NH₂-terminal fragment is a solution comprising N-DSK and said fusion is conducted in the presence of a fusion promoter.
 
24. A hybridoma designated as ATCC HB 8418.
 
25. A hybridoma for producing the monoclonal antibody according to anyone of claims 1 to 18, said hybridoma being formed by fusion of cells from an animal previously immunized with an NH₂-terminal fragment of human fibrin II, wherein said animal is preferably a mouse and wherein the spleen cells are preferably obtained from a BALB/cJ mouse.
 
26. A hybridoma according to claim 25, wherein said fragment of human fibrin II is formed by cleavage of said fibrin II with CNBr and wherein said fragment of human fibrin II is preferably (T)N-DSK.
 
27. A hybridoma according to claim 25, wherein said fragment of human fibrin II is selected from the group consisting of Bβ 15-118 and Bβ 15-42.
 
28. A hybridoma according to claim 25, wherein said NH₂-terminal fragment is a solution comprising (T)N-DSK and said fusion is conducted in the presence of a fusion promoter.
 
29. A hybridoma designated as ATCC HB 8426.
 
30. A method of preparing a monoclonal antibody comprising forming hybridomas by fusion of cells from an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with a NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I and thereafter separating the resultant hybridomas and selecting a hybridoma thereof which produces a monospecific antibody to a NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I;

wherein said antibody:

(i) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 of said Bβ chain;

(ii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14; and

(iii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 15-42, said method comprising the steps of:

(a) immunizing an animal with a solution comprising N-DSK;

(b) removing the spleen from each animal of step (a) and making a suspension of the cells from each spleen;

(c) fusing said cells of each spleen of step (b) with animal cells in the presence of a fusion promoter;

(d) diluting and culturing the fused cells from step (c) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

(e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrinogen, N-DSK, or any related fragments thereof,

f) selecting and cloning a hybridoma producing antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 but does not react with either of the peptide fragments of said Bβ chain containing only amino acid residues 1-14 or 15-42. g) transferring said clones intraperitoneally into animals; and

h) harvesting the malignant ascites or serum from said animals which ascites or serum contains the desired antibody.


 
31. A method of preparing a monoclonal antibody according to claim 30, wherein said fragment of human fibrinogen or fibrin I is formed by cleavage of said human fibrinogen or fibrin I with CNBr, wherein said fragment of human fibrinogen is preferably N-DSK and wherein said fragment of fibrin I is preferably (B)N-DSK.
 
32. A method of preparing a monoclonal antibody according to claim 30, wherein said fragment of human fibrinogen is selected from the group consisting of Bβ 1-118 and Bβ 1-42.
 
33. A method of preparing a monoclonal antibody, wherein said antibody:

(i) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 of said Bβ chain;

(ii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14; and

(iii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen of fibrin I containing amino acid residues 15-42, said method comprising the steps of:

a) immunizing an animal with a solution comprising N-DSK;

b) removing the spleen from each animal of step a) and making a suspension of the cells from each spleen;

c) fusing said cells of each spleen of step b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

d) diluting and culturing the fused cells from step b) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrinogen, N-DSK or any related fragments thereof;

f) selecting and cloning a hybridoma which produces antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 but does not react with either of the peptide fragments of said Bβ chain containing amino acid residues 1-14 or 15-42; and

g) recovering the antibody from the supernatant of said clones.


 
34. A method of preparing a monoclonal antibody comprising forming hybridoma by fusion of cells from an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with a NH₂-terminal fragment of human fibrin II and thereafter separating the hybridomas and selecting the hybridoma which produces the desired monospecific antibody;
wherein said antibody:

(i) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 of said Bβ chain;

(ii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14; and

(iii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42, said method comprising the steps of:

(a) immunizing an animal with a solution comprising (T)N-DSK;

(b) removing the spleen from each animal of step (a) and making a suspension of the cells from each spleen;

(c) fusing said cells of each spleen of step (b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

(d) diluting and culturing the fused cells from step (c) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

(e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrin II, (T)N-DSK, or any related fragments thereof,

(f) selecting and cloning a hybridoma producing antibody which reacts with the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, but does not react with either of the peptide fragments of the Bβ chain of fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 1-42.

(g) transferring said clones intraperitoneally into animals; and

(h) harvesting the malignant ascites or serum from said animals, which ascites or serum contains the desired antibody.


 
35. A method of preparing a monoclonal antibody according to claim 34, wherein said fragment of human fibrin II is formed by cleavage of said human fibrin II with CNBr and wherein said fragment of human fibrin II is preferably (T)N-DSK.
 
36. A method of preparig a monoclonal antibody according to claim 34, wherein said fragment of human fibrin II is selected from the group consisting of Bβ 15-118 and Bβ 15-42.
 
37. A method of preparing a monoclonal antibody wherein said antibody:

(i) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 of said Bβ chain;

(ii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14; and

(iii) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42, said method comprising the steps of:

a) immunizing an animal with a homogeneous solution consisting essentially of (T)N-DSK;

b) removing the spleen from each animal of step a) and making a suspension of the cells from each spleen;

c) fusing said cells of each spleen of step b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

d) diluting and culturing the fused cells from step b) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrin II or any related fragments thereof;

f) selecting and cloning a hybridoma which produces antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 but does not react with either of the peptide fragments of the Bβ chain of fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 1-42; and

g) recovering the antibody from the supernatant of said clones.


 
38. A method of preparing a hybridoma for producing the monoclonal antibody according to claim 1, said method comprising fusing an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I, wherein said animal is a mouse, wherein said myeloma line preferably comprises P3X63Ag8.653 myeloma cells and wherein said spleen cells are preferably obtained from a BALB/cJ mouse.
 
39. A method of preparing a hybridoma according to claim 38 wherein said fragment of human fibrinogen or fibrin I is formed by cleavage with CNBr or said human fibrinogen or fibrin I, wherein said fragment of human fibrinogen is preferably N-DSK, and wherein said fragment of fibrin I is preferably (B)N-DSK.
 
40. A method of preparing a hybridoma according to claim 38, wherein said fragment of human fibrinogen is selected from the group consisting of Bβ1-118 and Bβ1-42.
 
41. A method of preparing a hybridoma according to claim 38, wherein said NH₂-terminal fragment is a solution comprising N-DSK and said fusion is conducted in the presence of a fusion promoter.
 
42. A method of preparing a hybridoma for producing the monoclonal antibody according to claim 1, said method comprising fusing an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with NH₂-terminal fragment of human fibrin II, wherein said animal is a mouse, wherein said myeloma line preferably comprises P3X63Ag8.653 myeloma cells and wherein said spleen cells are preferably obtained from a BALB/cJ mouse.
 
43. A method of preparing a hybridoma according to claim 42, wherein said fragment of human fibrin II is formed by cleavage with CNBr of said human fibrin II and wherein said fragment of human fibrin II is preferably (T)N-DSK.
 
44. A method of preparing a hybridoma according to claim 42, wherein said fragment of human fibrin II is selected from the group consisting of Bβ 15-118 and Bβ 15-42.
 
45. A method preparing a hybridoma according to claim 42, wherein said NH₂-terminal fragment is a solution comprising (T)N-DSK and said fusion is conducted in the presence of a fusion promoter.
 
46. In a process for detecting the presence of a fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 in a plasma sample by enzyme linked immunosorbent assay or radioimmunoassay by contacting said sample with an antibody against said fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I, the improvement wherein said antibody is the antibody of claim 1.
 
47. A process according to claim 46, wherein said antibody is mixed with said sample in the presence of a radioactively labeled fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 and the radioactively labeled fragment bound to said antibody is separated using an antibody specific to said antibody.
 
48. A process according to claim 46, wherein said antibody is mixed with said sample, the mixture contacted with a polypeptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 and an antibody specific to said antibody is enzyme linked.
 
49. A process according to claim 46, wherein an enzyme linked immunosorbent assay or a radioimmunoassay is performed and wherein the results of said enzyme linked immunosorbent assay or said radioimmunoassay are preferably compared with a known standard to determine the relative concentration of antigen in the test specimen as compared to a normal sample.
 
50. A process for determining the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I present in a plasma sample; said fragment containing amino acid residues 1-42, which comprises:

a) contacting said sample with known amounts of MAb/1-8C6, a competitive antigen on a solid support which competitive antigen comprises a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin;

b) detecting the amount of MAb/1-8C6 bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

c) comparing the results of steps a) and b) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42.


 
51. A process for determining the amount of peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I, present in a plasma sample, said fragment containing amino acid residues 1-42, comprising:

a) contacting said sample with known amounts of each of MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, such that the competitive radio-labeled antigen can bind with the MAb/1-8C6;

b) contacting said sample, MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen of step a) with an antibody specific to mouse immunoglobulin;

c) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step b) using the antibody of step b);

d) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step c); and

e) comparing the results of steps a), b), c) and d) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42.


 
52. In a process for detecting the presence of a fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 in a plasma sample by enzyme linked immunosorbent assay or radioimmunoassay by contacting said sample with an antibody against said fragment of the Bβ chain of human fibrin II, the improvement wherein said antibody is the antibody of claim 10.
 
53. A process according to claim 52, wherein said antibody is contacted with said sample in the presence of a radioactively labeled fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 and the radioactively labeled fragment bound to said antibody is separated using antibody specific to said antibody.
 
54. A process according to claim 52, wherein said antibody is mixed with said sample, the mixture contacted with a polypeptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 and an antibody specific to said antibody is enzyme linked.
 
55. A process according to claim 52, wherein an enzyme linked immunosorbent assay or a radioimmunoassay is performed and wherein the results of said enzyme linked immunosorbent assay or said radioimmunoassay are preferably compared with a known standard to determine the relative concentration of antigen in the test specimen as compared to a normal sample.
 
56. A process for determining the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II present in a plasma sample, said fragment containing amino acid residues 15-42 comprising:

a) contacting said sample with known amounts of each of MAb/T2G1s, a competitive antigen on a solid support, comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin.

b) detecting the amount of MAb/T2G1s bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

c) comparing the results of steps (a) and (b) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42.


 
57. A process for determining the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II, present in a plasma sample, said fragment containing amino acid residues 15-42, comprising:

a) contacting said sample with known amounts of each of MAb/T2G1s, competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 such that the competitive radio-labeled antigen can bind with the MAb/T2G1s;

b) contacting said sample, MAb/T2G1s and competitive radio-labeled antigen of step a) with an antibody specific to mouse immunoglobulin;

c) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step b) using the antibody of step b);

d) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step (c); and

e) comparing the results of steps a), b), c) and d) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42.


 
58. A process for detecting the potential for the onset of occlusive thrombosis in a patient comprising dividing a plasma sample from said patient into a first fraction and a second fraction and

a) treating the first fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of each of MAb/1-8C6, a competitive antigen on a solid support which competitive antigen comprises a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin;

ii) detecting the amount of MAb/1-8C6 bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

iii) comparing the results of steps i) and ii) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, in the first fraction;

b) treating the second fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of each of MAb/T2G1s, competitive antigen on a solid support which competitive antigen comprises a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin

ii) detecting the amount of MAb/T2G1s bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

iii) comparing the results of steps i) and ii) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, in the second fraction;

c) comparing the amount of the peptide fragment of the BB chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 from step a) iii) with the amount of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 from step b) iii) thereby determining whether Bβ 15-42 predominates over Bβ 1-42, such predominance indicating the said potential for the onset of occlusive thrombosis in said patient.


 
59. A process for detecting the potential for the onset of occlusive thrombosis in a patient comprising dividing a plasma sample from said patient into a first fraction and a second fraction and

a) treating the first fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of each of MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, such that the competitive radio-labeled antigen can bind with the MAb/1-8C6,

ii) contacting said fraction, MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen of step i) with an antibody specific to mouse immunoglobulin;

iii) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step ii) using the antibody of step ii);

iv) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step iii); and

v) comparing the results of steps i), ii), iii) and iv) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 in the first fraction;

b) treating the second fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of MAb/T2G1s, competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, such that the competitive radio-labeled antigen can bind with the MAb/T2G1s;

ii) contacting said fraction, MAb/T2G1s and competitive radio-labeled antigen of step i) with an antibody specific to mouse immunoglobulin,

iii) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step ii) using the antibody of step ii);

iv) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step iii) and

v) comparing the results of steps i), ii), iii) and iv) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 in the second fraction and

c. comparing the amount of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 from step a) v) with the amount of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 from step b)v), thereby determining whether BB 15-42 predominates over Bβ 1-42, such predominance indicating the said potential for the onset of occlusive thrombosis in said patient.


 
60. A kit for determining whether the plasma contained in a test sample includes particular amino acid sequences, comprising

(i) the monoclonal antibody of claim 1

(ii) a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42,

(iii) human fibrinogen, and

(iv) an enzyme-linked immunoglobulin specific to animal immunoglobulin.


 
61. A kit according to claim 60, wherein said monoclonal antibody is the monoclonal antibody of claim 1, wherein said animal is a mouse, and wherein the animal immunoglobulin is mouse immunoglobulin.
 
62. A kit for determining whether the plasma contained in a test sample includes a particular amino acid sequence, comprising,

(i) the monoclonal antibody of claim 9,

(ii) a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42,

(iii) human fibrin II and

(iv) an enzyme-linked immunoglobulin specific to animal immunoglobulin.


 
63. A kit according to claim 62, wherein said monoclonal antibody is the monoclonal antibody of claim 9, wherein said animal is a mouse, and the animal immunoglobulin is mouse immunoglobulin.
 
64. A kit for determining whether the plasma contained in a test sample includes particular amino acid sequences, comprising

(i) a first monoclonal antibody, said first monoclonal antibody according to claim 1

(ii) a second monoclonal antibody, said second monoclonal antibody according to claim 9,

(iii) human fibrinogen,

(iv) human fibrin II and

(v) enzyme-linked immunoglobulins specific to animal immunoglobulin.


 
65. A kit according to claim 64, wherein said first monoclonal antibody is the monoclonal antibody of claim 7, said second monoclonal antibody is the monoclonal antibody of claim 9 and the animal immunoglobulin is mouse immunoglobulin.
 


Claims

Claims for the following Contracting State(s): AT

1. A method of preparing a monoclonal antibody comprising forming hybridomas by fusion of cells from an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I, and thereafter separating the hybridomas and selecting the hybridoma which produces the monospecific antibody to a fragment of human fibrinogen or fibrin I, wherein said antibody:

a) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 of said Bβ chain;

b) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14; and

c) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 15-42.


 
2. A method according to claim 1, comprising the steps of:

(a) immunizing an animal with a solution comprising N-DSK;

(b) removing the spleen from each animal of step (a) and making a suspension of the cells from each spleen;

(c) fusing said cells of each spleen of step (b) with animal cells in the presence of a fusion promoter;

(d) diluting and culturing the fused cells from step (c) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

(e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrinogen, N-DSK, or any related fragments thereof,

f) selecting and cloning a hybridoma producing antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 but does not react with either of the peptide fragments of said Bβ chain containing only amino acid residues 1-14 or 15-42.

g) transferring said clones intraperitoneally into animals; and

h) harvesting the malignant ascites or serum from said animals which ascites or serum contains the desired antibody.


 
3. A method according to claims 1 or 2, wherein said fragment of human fibrinogen or fibrin I is formed by cleavage of said human fibrinogen or fibrin I with CNBr, wherein said fragment of human fibrinogen is preferably N-DSK and wherein said fragment of fibrin I is preferably (B)N-DSK.
 
4. A method according to anyone of claims 1 to 3, wherein said fragment of human fibrinogen is selected from the group consisting of Bβ 1-118 and Bβ 1-42.
 
5. A method according to anyone of claims 1 to 4, wherein said antibody is of the class IgG, preferably of the subclass IgG2a.
 
6. A method according to anyone of claims 1 and 3 to 4, comprising the steps of:

a) immunizing an animal with a solution comprising N-DSK;

b) removing the spleen from each animal of step a) and making a suspension of the cells from each spleen;

c) fusing said cells of each spleen of step b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

d) diluting and culturing the fused cells from step b) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrinogen, N-DSK or any related fragments thereof;

f) selecting and cloning a hybridoma which produces antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 but does not react with either of the peptide fragments of said Bβ chain containing amino acid residues 1-14 or 15-42; and

g) recovering the antibody from the supernatant of said clones.


 
7. A method according to claim 6, which includes the additional steps of:

(g) transferring the clones obtained in step (f) intraperitoneally into animals; and

(h) harvesting the malignant ascites or serum from said animals, which ascites or serum contains the desired antibody.


 
8. A method of preparing a monoclonal antibody comprising forming hybridomas by fusion of cells from an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with an NH₂-terminal fragment of human fibrin II, and thereafter separating the hybridomas and selecting the hybridoma which produces the monospecific antibody to a fragment of human fibrin II; wherein said antibody:

a) reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 of said BB chain;

b) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14.

c) does not react with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42.


 
9. A method according to claim 8, wherein said fragment of human fibrin II is formed by cleavage of said human fibrin II with CNBr.
 
10. A method according to claim 8, wherein said fragment of human fibrin II is (T)N-DSK.
 
11. A method according to claim 8, wherein said fragment of human fibrin II is selected from the group consisting of Bβ 15-118 and Bβ 15-42.
 
12. A method according to claim 8, wherein said antibody is of the class IgG, preferably of the subclass IgG₁.
 
13. A method according to anyone of claims 8 to 12, comprising the steps of:

(a) immunizing an animal with a solution comprising (T)N-DSK;

(b) removing the spleen from each animal of step (a) and making a suspension of the cells from each spleen;

(c) fusing said cells of each spleen of step (b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

(d) diluting and culturing the fused cells from step (c) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

(e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrin II, (T)N-DSK, or any related fragments thereof,

(f) selecting and cloning a hybridoma producing antibody which reacts with the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42, but does not react with either of the peptide fragments of the Bβ chain of fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 1-42.

(g) transferring said clones intraperitoneally into animals; and

(h) harvesting the malignant ascites or serum from said animals, which ascites or serum contains the desired antibody.


 
14. A method according to anyone of claims 8 to 13, wherein the monoclonal antibody reacts with the products produced by thrombin digestion of human fibrinogen but does not react with the product resulting from thrombin digestion of rabbit fibrinogen.
 
15. A method according to anyone of claims 1 to 14, wherein said myeloma line preferably comprises P3x63Ag8.653 myeloma cells, and wherein the spleen cells are preferably obtained from a BALB/cJ mouse.
 
16. A method according to anyone of claims 8 to 12, 14 and 15, comprising the steps of:

a) immunizing an animal with a homogeneous solution consisting essentially of (T)N-DSK;

b) removing the spleen from each animal of step a) and making a suspension of the cells, from each spleen;

c) fusing said cells of each spleen of step b) with animal myeloma cells in the presence of a fusion promoter;

d) diluting and culturing the fused cells from step b) in separate wells in a medium which will not support the unfused myeloma cells;

e) evaluating the supernatant in each well containing a hybridoma for the presence of antibodies to fibrin II or any related fragments thereof;

f) selecting and cloning a hybridoma which produces antibody which reacts with a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 but does not react with either of the peptide fragments of the Bβ chain of fibrinogen of fibrin I containing amino acid residues 1-14 or 1-42; and

g) recovering the antibody from the supernatant of said clones.


 
17. A method of preparing a hybridoma for producing the monoclonal antibody according to anyone of claims 1 to 7, said method comprising fusing an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with NH₂-terminal fragment of human fibrinogen or fibrin I, wherein said animal is a preferably a mouse, wherein said myeloma line preferably comprises P3X63Ag8.653 myeloma cells and wherein said spleen cells are preferably obtained from a BALB/cJ mouse.
 
18. A method according to claim 17, wherein said fragment of human fibrinogen of fibrin, I i formed by cleavage with CNBr or said human fibrinogen or fibrin I, wherein said fragment of human fibrinogen is preferably N-DSK and wherein said fragment of fibrin I is preferably (B)N-DSK.
 
19. A method according to claims 17 or 18, wherein said fragment of human fibrinogen is selected from the group consisting of Bβ 1-118 and Bβ 1-42.
 
20. A method according to anyone of claims 17 to 19, wherein said NH₂-terminal fragment is a solution comprising N-DSK and said fusion is conducted in the presence of a fusion promoter.
 
21. A method of preparing a hybridoma for producing the monoclonal antibody according to anyone of claims 9 to 16, comprising fusing an animal myeloma line and spleen cells from an animal previously immunized with NH₂-terminal fragment of human fibrin II, wherein said animal is a preferably a mouse, wherein said myeloma line preferably comprises P3x63Ag8.653 myeloma cells and wherein said spleen cells are preferably obtained from a BALB/cJ mouse.
 
22. A method according to claim 21, wherein said fragment of human fibrin II i formed by cleavage with CNBr of said human fibrin II and wherein said fragment of human fibrin II is preferably (T)N-DSK.
 
23. A method according to claim 21, wherein said fragment of human fibrin II is selected from the group consisting of Bβ 15-118 and Bβ 15-42.
 
24. A method according to claim 21, wherein said NH₂-terminal fragment is a solution comprising (T)N-DSK and said fusion is conducted in the presence of a fusion promoter.
 
25. In a process for detecting the presence of a fragment of the BB chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 in a plasma sample by enzyme linked immunosorbent assay or radioimmunoassay by contacting said sample with an antibody against said fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I, the inprovement wherein said antibody is the antibody prepared according to anyone of claims 1 to 7.
 
26. A process according to claim 25, wherein said antibody is mixed with said sample in the presence of a radioactively labeled fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 and the radioactively labeled fragment bound to said antibody is separated using an antibody specific to said antibody.
 
27. A process according to claim 25, wherein said antibody is mixed with said sample, the mixture contacted with a polypeptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42 and an antibody specific to said antibody is enzyme linked
 
28. A process according to claim 25, wherein an enzyme linked immunosorbent assay or a radioimmunoassay is performed and wherein the results of said enzyme linked immunosorbent assay or said radioimmunoassay are preferably compared with a known standard to determine the relative concentration of antigen in the test specimen as compared to a normal sample.
 
29. A process for determining the amounts of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I present in a plasma sample; said fragment containing amino acid residues 1-42, which comprises:

a) contacting said sample with known amounts of MAb/1-8C6, a competitive antigen on a solid support which competitive antigen comprises a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin;

b) detecting the amount of MAb/1-8C6 bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

c) comparing the results of steps a) and b) with that obtained insing a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising, amino acid residues 1-42.


 
30. A process for determining the amount of peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I, present in a plasma sample, said fragment containing amino acid residues 1-42, comprising:

a) contacting said sample with known amounts of each of MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, such that the competitive radio-labeled antigen can bind with the MAb/1-8C6; -

b) contacting said sample, MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen of step a) with an antibody specific to mouse immunoglobulin;

c) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step b) using the antibody of step b);

d) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step c); and

e) comparing the results of steps a), b), c) and d) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment, of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42.


 
31. In a process for detecting the presence of a fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 in a plasma sample by enzyme linked immunosorbent assay or radioimmunoassay by contacting said sample with an antibody against said fragment of the Bβ chain of human fibrin II, the inprovement wherein said antibody is the antibody prepared according to anyone of claims 8 to 16.
 
32. A process according to claim 31, wherein said antibody is contacted with said sample in the presence of a radioactively labeled fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 and the radioactively labeled fragment bound to said antibody is separated using antibody specific to said antibody.
 
33. A process according to claim 31, wherein said antibody is mixed with said sample, the mixture contacted with a polypeptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42 and an antibody specific to said antibody is enzyme linked.
 
34. A process according to claim 31, wherein an enzyme linked immunosorbent assay or a radioimmunoassay is performed and wherein the results of said enzyme linked immunosorbent assay or said radioimmunoassay are preferably compared with a known standard to determine the relative concentration of antigen in the test specimen as compared to a normal sample.
 
35. A process for determining the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II present in a plasma sample, said fragment containing amino acid residues 15-42 comprising:

a) contacting said sample with known amounts of each of MAb/T2G1s, a competitive antigen on a solid support, comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin.

b) detecting the amount of MAb/T2G1s bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

c) comparing the results of steps (a) and (b) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42.


 
36. A process for determining the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II, present in a plasma sample, said fragment containing amino acid residues 15-42, comprising:

a) contacting said sample with known amounts of each of MAb/T2G1s, competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 such that the competitive radio-labeled antigen can bind with the MAb/T2G1s;

b) contacting said sample, MAb/T2G1s and competitive radio-labeled antigen of step a) with an antibody specific to mouse immunoglobulin;

c) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step b) using the antibody of step b);

d) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step (c); and

e) comparing the results of steps a), b), c) and d) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42.


 
37. A process for detecting the potential for the onset of occlusive thrombosis in a patient comprising dividing a plasma sample from said patient into a first fraction and a second fraction and

a) treating the first fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of each of MAb/1-8C6, a competitive antigen on a solid support which competitive antigen comprises a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin;

ii) detecting the amount of MAb/1-8C6 bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

iii) comparing the results of steps i) and ii) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, in the first fraction;

b) treating the second fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of each of MAb/T2G1s, competitive antigen on a solid support which competitive antigen comprises a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, and an enzyme-linked antibody which antibody binds to mouse immunoglobulin

ii) detecting the amount of MAb/T2G1s bound to the competitive antigen on the solid support by determining the amount of bound enzyme-linked antibody.

iii) comparing the results of steps i) and ii) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, in the second fraction;

c) comparing the amount of the peptide fragment of the BB chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 from step a) iii) with the amount of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 from step b) iii) thereby determining whether Bβ 15-42 predominates over Bβ 1-42, such predominance indicating the said potential for the onset of occlusive thrombosis in said patient.


 
38. A process for detecting the potential for the onset of occlusive thrombosis in a patient comprising dividing a plasma sample from said patient into a first fraction and a second fraction and

a) treating the first fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of each of MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42, such that the competitive radio-labeled antigen can bind with the MAb/1-8C6,

ii) contacting said fraction, MAb/1-8C6 and competitive radio-labeled antigen of step i) with an antibody specific to mouse immunoglobulin;

iii) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step ii) using the antibody of step ii);

iv) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step iii); and

v) comparing the results of steps i), ii), iii) and iv) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 in the first fraction;

b) treating the second fraction by:

i) contacting said fraction with known amounts of MAb/T2G1s, competitive radio-labeled antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42, such that the competitive radio-labeled antigen can binds with the MAb/T2G1s;

ii) contacting said fraction, MAb/T2G1s and competitive radio-labeled antigen of step i) with an antibody specific to mouse immunoglobulin,

iii) separating the antibody bound radio-labeled antigen of step ii) using the antibody of step ii);

iv) counting the radioactivity of the bound radio-labeled antigen of step iii) and

v) comparing the results of steps i), ii), iii) and iv) with that obtained using a standard amount of known antigen comprising a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acids residues 15-42 to determine the amount of a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 in the second fraction and

c. comparing the amount of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I comprising amino acid residues 1-42 from step a) v) with the amount of the peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II comprising amino acid residues 15-42 from step b)v), thereby determining whether BB 15-42 predominates over Bβ 1-42, such predominance indicating the said potential for the onset of occlusive thrombosis in said patient.


 
39. A kit for determining whether the plasma contained in a test sample includes particular amino acid sequences comprising

(i) the monoclonal antibody prepared according to anyone of claims 1 to 7,

(ii) a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrinogen or fibrin I containing amino acid residues 1-42,

(iii) human fibrinogen, and

(iv) an enzyme-linked immunoglobulin specific to animal immunoglobulin.


 
40. A kit according to claim 39, wherein said monoclonal antibody is the monoclonal antibody prepared according to anyone of claims 1 to 7 wherein said animal is a mouse and wherein the animal immunoglobulin is mouse immunoglobulin.
 
41. A kit for determining whether the plasma contained in a test sample includes a particular amino acid sequence comprising;

(i) the monoclonal antibody prepared according to anyone of claims 8 to 16,

(ii) a peptide fragment of the Bβ chain of human fibrin II containing amino acid residues 15-42,

(iii) human fibrin II and

(iv) an enzyme-linked immunoglobulin specific to animal immunoglobulin.


 
42. A kit according to claim 41, wherein said monoclonal antibody is the monoclonal antibody prepared according to anyone of claims 8 to 16 wherein said animal is a mouse and wherein the animal immunoglobulin is mouse immunoglobulin.
 
43. A kit for determining whether the plasma contained in a test sample includes particular amino acid sequences comprising

(i) a first monoclonal antibody, said first monoclonal antibody being prepared according to anyone of claims 1 to 7,

(ii) a second monoclonal antibody, said second monoclonal antibody being prepared according to anyone of claims 8 to 16,

(iii) human fibrinogen,

(iv) human fibrin II and

(v) enzyme-linked immunoglobulins specific to animal immunoglobulin.


 
44. A kit according to claim 43, wherein said first monoclonal antibody is the monoclonal antibody prepared according to anyone of claims 1 to 7, said second monoclonal antibody is the monoclonal antibody prepared according to anyone of claims 8 to 16 and the animal immunoglobulin is mouse immunoglobulin.
 


Ansprüche

Patentansprüche für folgende(n) Vertragsstaat(en): BE, CH, LI, DE, FR, GB, IT, NL, SE

1. Monoklonaler Antikörper, von Hybridomen erzeugt, wobei die genannten Hybridome durch Fusion von Zellen einer tierischen Myelom-Linie mit Milz-Zellen aus einem Tier, welches vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I immunisiert wurde, gebildet wurden, und wobei anschließend die Hybridomen abgetrennt und ein solches Hybridom ausgewählt wird, welches den monospezifischen Antikörper gegen ein Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I erzeugt,
   wobei der genannte Antikörper

a) mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42 der genannten Bβ-Kette, reagiert;

b) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert; und

c) nicht mit einem Peptidfragement der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert.


 
2. Monoklonaler Antikörper gemäß Anspruch 1, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen durch Spaltung des genannten Human-Fibrinogens oder Fibrins I mit CNBr gebildet wird.
 
3. Monoklonaler Antikörper gemäß Anspruch 1, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen N-DSK bzw. wobei das genannte Fragment von Fibrin I (B)N-DSK ist.
 
4. Monoklonaler Antikörper gemäß Anspruch 1, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 1-118 und Bβ 1-42.
 
5. Monoklonaler Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 1-4, wobei der genannte Antikörper zur Klasse IgG, vorzugsweise zur Unterklasse IgG2a gehört.
 
6. Monoklonaler Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 1-5, wobei der genannte Antikörper hergestellt wird nach einem Verfahren, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Ein Tier, vorzugsweise eine Maus, wird mit einer N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

b) die Milz wird aus jedem Tier von Schritt a) entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

c) die genannten Zellen aus jeder Milz von Schritt b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

d) die fusionierten Zellen von Schritt c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

e) der Überstand in jeder Vertiefung, die ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrinogen, N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

f) ein Hybridom, welches einen Antikörper erzeugt, der mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der genannten Bβ-Kette, enthaltend die Aminosäurereste 1-14 oder 15-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont; und

g) der Antikörper aus dem Überstand der genannten Klone wird gewonnen.


 
7. Monoklonaler Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 1-6, wobei der genannte Antikörper nach dem Verfahren von Anspruch 6, Schritte (a) bis (f), erzeugt wurde, wobei das Verfahren folgende zusätzliche Schritte einschließt:

g) Die in Schritt (f) erhaltenen Klone werden intraperitoneal auf Tiere übertragen; und

h) die bösartige Ascites oder das Serum der genannten Tiere werden gewonnen, wobei diese Ascites oder das Serum den gewünschten Antikörper enthalten.


 
8. Monoklonaler Antikörper, erzeugt durch das Hybridom ATCC HB 8418.
 
9. Monoklonaler Antikörper, von Hybridomen erzeugt, wobei die genannten Hybridome durch Fusion von Zellen aus einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen eines Tieres, welches vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrin II immunisiert worden war, gebildet wurden, und wobei anschließend die Hybridome abgetrennt und das den monospezifischen Antikörper gegen ein Fragment aus Human-Fibrin II erzeugende Hybridom ausgewählt wird; wobei der genannte Antikörper

a) mit einem Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42 der genannten Bβ-Kette, reagiert;

b) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen- oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert;

c) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert.


 
10. Monoklonaler Antikörper gemäß Anspruch 9, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II durch Spaltung des genannten Human-Fibrins II mit CNBr gebildet wird.
 
11. Monoklonaler Antikörper gemäß Anspruch 9, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II (T)N-DSK ist.
 
12. Monoklonaler Antikörper gemäß Anspruch 9, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 15-118 und Bβ 15-42.
 
13. Monoklonaler Antikörper gemäß Anspruch 9, wobei der genannte Antikörper zur Klasse IgG, vorzugsweise zur Unterklasse IgG₁ gehört.
 
14. Monoklonaler Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 9-13, wobei der genannte Antikörper nach einem Verfahren hergestellt wird, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Ein Tier, vorzugsweise eine Maus, wird mit einer (T)N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

b) die Milz aus jedem Tier von Schritt a) wird entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

c) die genannten Zellen aus jeder Milz von Schritt b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

d) die fusionierten Zellen von Schritt c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

e) der Überstand in jeder Vertiefung, welche ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrin II, (T)N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

f) ein Hybridom, welches einen Antikörper erzeugt, welcher mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der Bβ-Kette von Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend lediglich die Aminosäurereste 1-14 oder 1-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont; und

g) aus dem Überstand der genannten Klone wird der Antikörper gewonnen.


 
15. Monoklonaler Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 9-13, wobei der genannte Antikörper nach dem Verfahren von Anspruch 14, Schritte (a) bis (f) hergestellt wird, welches Verfahren folgende zusätzliche Schritte enthält:

(g) die Klone von Schritt (f) werden intraperitoneal auf Mäuse übertragen; und

(h) die bösartige Ascites oder das Serum aus den genannten Mäusen wird gewonnen, wobei die Ascites oder das Serum den gewünschten Antikörper enthalten.


 
16. Monoklonaler Antikörper, erzeugt durch das Hybridom ATCC HB 8426.
 
17. Monoklonaler Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 9-16, wobei der monoklonale Antikörper mit den Produkten reagiert, welche durch Thrombindigestion von Human-Fibrinogen erzeugt werden, jedoch nicht mit den Produkten, welche aus der Thrombindigestion von Kaninchen-Fibrinogen hervorgehen, reagiert.
 
18. Monoklonaler Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 1-17, wobei die genannte Myelomlinie vorzugsweise Myelomzellen vom Typ P3X63Ag8.653 enthält, und wobei die genannten Milzzellen vorzugsweise aus einer Maus vom Typ BALB/cJ erhalten werden.
 
19. Hybridom zur Erzeugung des monoklonalen Antikörpers gemäß jedem der Ansprüche 1-18, wobei die genannten Hybridome durch Fusion von Zellen aus einem vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I immunisierten Tier gebildet wurden, wobei das genannte Tier vorzugsweise eine Maus ist, insbesondere eine Maus vom Typ BALB/cJ, und worin die Myelomzellen vorzugsweise Myelomzellen vom Typ P3X63AG8.653 enthalten.
 
20. Hybridom gemäß Anspruch 19, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen durch Spaltung des genannten Fibrinogens oder Fibrins I mit CNBr gebildet wurde.
 
21. Hybridom gemäß Anspruch 19, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen N-DSK ist, bzw. wobei das genannte Fragment von Fibrin I (B)N-DSK ist.
 
22. Hybridom gemäß Anspruch 19, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 1-118 und Bβ 1-42.
 
23. Hybridom gemäß Anspruch 19, wobei das genannte NH₂-terminale Fragment eine N-DSK enthaltende Lösung ist und die genannte Fusion in Gegenwart eines Fusionspromotors erfolgt.
 
24. Hybridom mit der Bezeichnung ATCC HB 8418.
 
25. Hybridom zur Erzeugung des monoklonalen Antikörpers gemäß jedem der Ansprüche 1-18, wobei das genannte Hybridom durch Fusion von Zellen aus einem vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrin II immunisierten Tier gebildet wurde, wobei das genannte Tier vorzugsweise eine Maus ist und die Milzzellen vorzugsweise aus einer Maus vom Typ BALB/cJ gewonnen wurden.
 
26. Hybridom gemäß Anspruch 25, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II durch Spaltung des genannten Fibrins II mit CNBr gebildet wurde und wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II vorzugsweise (T)N-DSK ist.
 
27. Hybridom gemäß Anspruch 25, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 15-118 und Bβ 15-42.
 
28. Hybridom gemäß Anspruch 25, wobei das genannte NH₂-terminale Fragment eine (T)N-DSK enthaltende Lösung ist und die genannte Fusion in Gegenwart eines Fusionspromotors erfolgt.
 
29. Hybridom mit der Bezeichnung ATCC HB 8426.
 
30. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers, umfassend die Bildung von Hybridomen durch Fusion von Zellen aus einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen aus einem vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I immunisierten Tier und die anschließende Abtrennung der daraus hervorgegangenen Hybridome und hieraus die Auswahl eines Hybridoms, welches einen monospezifischen Antikörper gegen ein NH₂-terminales Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I erzeugt, wobei der genannte Antikörper

(i) mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42 der genannten Bβ-Kette, reagiert;

(ii) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert; und

(iii) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert, wobei das genannte Verfahren folgende Schritte umfaßt:

(a) Ein Tier wird mit einer N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

(b) aus jedem Tier von Schritt (a) wird die Milz entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

(c) die genannten Zellen jeder Milz von Schritt (b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Zellen fusioniert;

(d) die fusionierten Zellen von Schritt (c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

(g) der Überstand in jeder Vertiefung, welche ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrinogen, N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

(f) ein Hybridom, welches einen Antikörper erzeugt, der mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der Bβ-Kette, enthaltend lediglich die Aminosäurereste 1-14 oder 15-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont.

(g) die genannten Klone werden intraperitoneal auf Tiere übertragen; und

(h) die bösartige Ascites oder das Serum der genannten Tiere wird gewonnen, wobei diese Ascites oder das Serum den gewünschten Antikörper enthalten.


 
31. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers gemäß Anspruch 30, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I durch Spaltung des genannten Human-Fibrinogens oder Fibrins I mit CNBr gebildet wird, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen vorzugsweise N-DSK und wobei das genannte Fragment von Fibrin I vorzugsweise (B)N-DSK ist.
 
32. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers gemäß Anspruch 30, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ -1-118 und Bβ 1-42.
 
33. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers, in welchem der genannte Antikörper

(i) mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42 der genannten Bβ-Kette, reagiert;

(ii) nicht mit einem Peptidfragement der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert; und

(iii) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin, I enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert, wobei das genannte Verfahren folgende Schritte umfaßt:

(a) Ein Tier wird mit einer N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

(b) aus jedem Tier von Schritt (a) wird die Milz entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

(c) die genannten Zellen aus jeder Milz von Schritt (b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

(d) die fusionierten Zellen von Schritt (c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

(e) der Überstand in jeder Vertiefung, welche ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrinogen, N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

(f) ein Hybridom, welches einen Antikörper erzeugt, der mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der beiden Peptidfragmente der genannten Bβ-Kette, enthaltend die Aminosäurereste 1-14 oder 15-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont; und

(g) der Antikörper aus dem Überstand der genannten Klone wird gewonnen.


 
34. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers umfassend die Bildung von Hybridomen durch Fusion von Zellen aus einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen eines vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrin II immunisierten Tieres und die anschließende Abtrennung der Hybridome und die Auswahl des Hybridoms, welches den erwünschten monospezifischen Antikörper erzeugt, wobei der genannte Antikörper

(i) mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42 der genannten Bβ-Kette, reagiert;

(ii) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert; und

(iii) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert, wobei das genannte Verfahren folgende Schritte umfaßt:

a) Ein Tier wird mit einer (T)N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

b) aus jedem Tier vom Schritt (a) wird die Milz entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

c) die genannten Zellen jeder Milz von Schritt (b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

d) die fusionierten Zellen von Schritt (c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

e) der Überstand aus jeder Vertiefung, die ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrin II, (T)N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

(f) ein einen Antikörper erzeugendes Hybridom, welches mit dem Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente aus der Bβ-Kette von Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14 oder 1-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont.

(g) die genannten Klone werden intraperitoneal auf Tiere übertragen; und

(h) die bösartige Ascites oder das Serum der genannten Tiere werden gewonnen, wobei die Ascites oder das Serum den erwünschten Antikörper enthalten.


 
35. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers gemäß Anspruch 34, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrin II durch Spaltung des genannten Human-Fibrins II mit CNBr gebildet wird und wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II vorzugsweise (T)N-DSK ist.
 
36. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers gemäß Anspruch 34, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrin II ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 15-118 und Bβ 15-42.
 
37. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers, in welchem der genannte Antikörper

(i) mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42 der genannten Bβ-Kette, reagiert;

(ii) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert; und

(iii) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen- oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert; wobei das genannte Verfahren folgende Schritte umfaßt:

(a) Ein Tier wird mit einer im wesentlichen aus (T)N-DSK bestehenden homogenen Lösung immunisiert;

(b) aus jedem Tier von Schritt (a) wird die Milz entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

(c) die genannten Zellen aus jeder Milz von Schritt (b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

(d) die fusionierten Zellen von Schritt (c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

(e) der Überstand in jeder Vertiefung, die ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrin II oder jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

(f) ein Hybridom, das einen Antikörper erzeugt, der mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der Bβ-Kette von Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14 oder 1-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont; und

(g) der Antikörper wird aus dem Überstand der genannten Klone gewonnen.


 
38. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms für die Erzeugung des monoklonalen Antikörpers gemäß Anspruch I, in welchem das genannte Verfahren die Fusionierung einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen aus einem vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I immunisierten Tier umfaßt, wobei das genannte Tier eine Maus ist, und wobei die genannte Myelomlinie vorzugsweise Myelomzellen des Typs P3X63Ag8.653 umfaßt und wobei die genannten Milzzellen vorzugsweise aus einer Maus vom Typ BALB-cJ erhalten werden.
 
39. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms gemäß Anspruch 38, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I durch Spaltung des genannten Human-Fibrinogens oder des Fibrins I mit CNBr gebildet wird, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen vorzugsweise N-DSK ist, und wobei das genannte Fragment von Fibrin I vorzugsweise (B)N-DSK ist.
 
40. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms gemäß Anspruch 38, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen aus der Gruppe von Bβ 1-118 und Bβ 1-42 ausgewählt ist.
 
41. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms gemäß Anspruch 38, in welchem das genannte NH₂-terminale Fragment aus einer N-DSK umfassenden Lösung besteht und die genannte Fusion in Gegenwart eines Fusionspromotors erfolgt.
 
42. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms zur Erzeugung des monoklonalen Antikörpers gemäß Anspruch 1, in welchem die genannte Methode die Fusion einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen eines vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrin II immunisierten Tieres umfaßt, wobei das genannte Tier eine Maus ist, wobei die genannte Myelomlinie vorzugsweise Myelomzellen des Typs P3X63Ag8.653 umfaßt und wobei die genannten Milzzellen vorzugsweise aus einer Maus vom Typ BALB/cJ erhalten werden.
 
43. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms gemäß Anspruch 42, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrin II durch Spaltung des genannten Human-Fibrins II mit CNBr gebildet wird und wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II vorzugsweise (T)N DSK ist.
 
44. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms gemäß Anspruch 42, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrin II ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 15-118 und Bβ 15-42.
 
45. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms gemäß Anspruch 42, in welchem das genannte NH₂-terminale Fragment eine (T)N-DSK umfassende Lösung ist und die genannte Fusionierung in Gegenwart eines Fusionspromotors erfolgt.
 
46. Verfahren zum Nachweis des Vorliegens eines die Aminosäurereste 1-42 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I in einer Plasmaprobe auf dem Wege des enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des Radioimmun-Assays durch In-Berührung-Bringen der genannten Probe mit einem Antikörper gegen das genannte Fragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, dessen Verbesserung darin besteht, daß der genannte Antikörper aus dem Antikörper von Anspruch I besteht.
 
47. Verfahren gemäß Anspruch 46, in welchem der genannte Antikörper in Gegenwart eines radioaktiv markierten die Aminosäurereste 1-42 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit der genannten Probe vermischt wird und das an den genannten Antikörper gebundene radioaktiv markierte Fragment unter Verwendung eines gegenüber dem genannten Antikörper spezifischen Antikörpers abgetrennt wird.
 
48. Verfahren gemäß Anspruch 46, in welchem der genannte Antikörper mit der genannten Probe vermischt wird, das Gemisch mit einem die Aminosäurereste 1-42 enthaltenden Polypeptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I in Berührung gebracht, und in welchem ein für den genannten Antikörper spezifischer Antikörper an ein Enzym gekoppelt wird.
 
49. Verfahren gemäß Anspruch 46, in welchem ein enzymgekoppelter Immunsorptions-Assay oder ein Radioimmun-Assay durchgeführt wird und in welchem die Ergebnisse des genannten enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des genannten Radioimmun -Assays vorzugsweise mit einem bekannten Standard zur Bestimmung der an einer Normalprobe gemessenen relativen Konzentration eines Antigens in der Testprobe verglichen wird.
 
50. Verfahren zur Bestimmung der Menge einer in einer Plasmaprobe vorliegenden Menge eines Peptidfragments der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, in welchem das genannte Fragment die Aminosäurereste 1-42 enthält, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Die genannte Probe wird mit genannten Mengen von MAb/1-8C6, einem kompetitiven Antigen auf einem festen Träger, wobei das kompetitive Antigen ein die Aminosäurereste 1-42 enthaltendes Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I umfaßt, sowie mit einem enzymgekoppelten Antikörper in Berührung gebracht, wobei der Antikörper sich an Mäuse-Immunoglobulin bindet;

b) man weist die Menge des an das kompetitive Antigen auf dem festen Träger gebundenen MAb/1-8C6 nach, indem man die Menge an gebundenem enzymgekoppelten Antikörper bestimmt.

c) Die Ergebnisse aus den Schritten a) und b) werden mit denen verglichen, welche man unter Verwendung einer standardisierten Menge an bekanntem Antigen, umfassend ein die Aminosäurereste 1-42 enthaltendes Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, erhält.


 
51. Verfahren zur Bestimmung der Menge an in einer Plasmaprobe vorliegendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, wobei das genannte Fragment die Aminosäurereste 1-42 enthält, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Man bringt die genannte Probe mit bekannten Mengen sowohl von MAb/1-8C6 als auch von kompetitivem radiomarkiertem Antigen, umfassend ein die Aminosäurereste 1-42 enthaltendes Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich an das MAb/1-8C6 binden kann;

b) man bringt die genannte Probe, MAb/1-8C6 und das kompetitive radiomarkierte Antigen aus Schritt a) mit einem auf Mäuse-Immunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

c) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt b) unter Verwendung des Antikörpers aus Schritt b) ab;

d) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt c) durch Zählung; und

e) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten a), b), c) und d) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem Antigen, enthaltend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42, erhalten hat.


 
52. Verfahren zum Nachweis des Vorliegens eines die Aminosäurereste 15-42 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in einer Plasmaprobe auf dem Wege des enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des Radioimmun-Assays, in welchem man die genannte Probe mit einem Antikörper gegen das genannte Fragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in Berührung bringt, dessen Verbesserung darin besteht, daß der Antikörper der Antikörper aus Anspruch 10 ist.
 
53. Verfahren gemäß Anspruch 52, in welchem der genannte Antikörper mit der genannten Probe in Gegenwart eines radioaktiv markierten die Aminosäurereste 15-42 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in Berührung gebracht wird, und in welchem das an den genannten Antikörper gebundene radioaktiv markierte Fragment unter Verwendung des für den genannten Antikörper spezifischen Antikörpers abgetrennt wird.
 
54. Verfahren gemäß Anspruch 52, in welchem der genannte Antikörper mit der genannten Probe vermischt, das Gemisch mit einem die Aminosäurereste 15-42 enthaltenden Polypeptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in Berührung gebracht wird, und in welchem ein für den genannten Antikörper spezifischer Antikörper an ein Enzym gekoppelt wird.
 
55. Verfahren gemäß Anspruch 52, in welchem ein enzymgekoppelter Immunsorptions-Assay oder ein Radioimmun-Assay durchgeführt wird und in welchem die Ergebnisse des genannten enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des genannten Radioimmun-Assays vorzugsweise mit einem bekannten Standard zur Bestimmung der in Bezug auf eine Normalprobe relativen Konzentration von Antigen in der Testprobe verglichen wird.
 
56. Verfahren zur Bestimmung der Menge eines in einer Plasmaprobe vorliegenden Peptidfragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, wobei das genannte Fragment die Aminosäurereste 15-42 enthält und welches folgende Schritte umfaßt:

a) Man bringt die genannte Probe mit bekannten Mengen von jeweils MAb/T2G1s, einem kompetitiven Antigen auf Feststoffträger, umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42, und einem enzymgekoppelten Antikörper zusammen, wobei dieser Antikörper sich an Mäuse-Immunglobulin bindet.

b) Man weist die Menge des an das kompetitive Antigen auf Feststoffträger gebundenen MAb/T2G1s durch Bestimmung der Menge an gebundenem enzymgekoppeltem Antikörper nach.

c) Man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten (a) und (b) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem Antigen, umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42, erhalten hat.


 
57. Verfahren zur Bestimmung der Menge eines in einer Plasmaprobe vorliegenden Peptidfragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, wobei das genannte Fragment die Aminosäurereste 15-42 enthält, und welches folgende Schritte umfaßt:

a) Man bringt die genannte Probe mit bekannten Mengen von jeweils MAb/T2G1s, kompetitivem radiomarkierten Antigen, enthaltend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42, solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich mit dem MAb/T2G1s verbinden kann;

b) man bringt die genannte Probe, MAb/T2G1s und kompetitives radioaktives Antigen aus Schritt a) mit einem für Mäuse-Immunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

c) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt b) unter Verwendung des Antikörpers von Schritt b) ab;

d) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt (c) durch Zählung; und

e) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten a), b), c) und d) mit denen, die man unter Verwendung einer bekannten Menge von ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfassendem Antigen erhalten hat.


 
58. Verfahren zum Nachweis der Möglichkeit des Einsetzens von occlusiver Thrombose bei einem Patienten, umfassend die Aufteilung einer Plasmaprobe des genannten Patienten in eine erste Fraktion und in eine zweite Fraktion und

a) Behandlung der ersten Fraktion auf folgendem Wege:

i) Man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen von jeweils MAb/1-8C6, einem kompetitiven Antigen auf Feststoffträger, wobei das kompetitive Antigen ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 umfaßt, sowie einem an Enzym gekoppelten Antikörper, wobei der Antikörper sich mit Mäuse-Immunglobulin verbindet, zusammen;

ii) man weist die Menge von an das kompetitive Antigen auf Feststoffträger gebundenem MAb/1-8C6 durch Ermittlung der Menge an gebundenem enzymgekoppeltem Antikörper nach.

iii) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i) und ii) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 umfassenden Antigen erhalten hat, um die Menge an Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 in der ersten Fraktion zu bestimmen;

b) man behandelt die zweite Fraktion folgendermaßen:

i) man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen von jeweils MAb/T2G1s, kompetitivem Antigen auf Feststoffträger, wobei das kompetitive Antigen ein Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfaßt, sowie einem an Enzym gekoppelten Antikörper zusammen, wobei der Antikörper sich mit Mäuse-Immunglobulin verbindet.

ii) man weist die Menge von an das kompetitive Antigen auf Feststoffträger gebundenem MAb/T2G1s durch Bestimmung der Menge an gebundenem enzymgekoppeltem Antikörper nach.

iii) Man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i) und ii) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfassenden Antigen erhält, um die Menge an Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 in der zweiten Fraktion zu bestimmen;

c) man vergleicht die Menge an die Aminosäurereste 1-42 umfassendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I aus Schritt a), iii) mit der Menge an die Aminosäurereste 15-42 umfassendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II aus Schritt b), iii) und bestimmt damit, ob Bβ 15-42 gegenüber Bβ 1-42 überwiegt, wobei solches Überwiegen einen Hinweis auf die genannte Möglichkeit für das Einsetzen von occlusiver Thrombose bei dem genannten Patienten ergibt.


 
59. Verfahren zum Nachweis der Möglichkeit für das Einsetzen von occlusiver Thrombose bei einem Patienten, umfassend die Auftrennung einer Plasmaprobe des genannten Patienten in eine erste Fraktion und in eine zweite Fraktion und

a) Behandlung der ersten Fraktion auf folgendem Wege:

i) man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen von jeweils MAb/1-8C6 und kompetitivem radioaktiven ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 umfassendem Antigen solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich mit dem MAb/1-8C6 verbinden kann.

ii) Man bringt die genannte Fraktion, MAb/1-8C6 und das kompetitive radiomarkierte Antigen aus Schritt i) mit einem für Mäuseimmunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

iii) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt ii) unter Verwendung des Antikörpers aus Schritt ii) ab;

iv) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt iii) durch Zählung; und

v) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i), ii), iii) und iv) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem Antigen, umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42, erhalten hat, um die Menge an Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 in der ersten Fraktion zu bestimmen;

b) Behandlung der zweiten Fraktion auf folgendem Wege:

i) Man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen an MAb/T2G1s, kompetitivem radiomarkiertem ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfassenden Antigen solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich an das MAb/T2G1s binden kann;

ii) man bringt die genannte Fraktion, MAb/T2G1s und das kompetitive radiomarkierte Antigen aus Schritt i) mit einem für Mäuse-Immunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

iii) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt ii) unter Verwendung des Antikörpers aus Schritt ii) ab;

iv) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt iii) durch Zählung, und

v) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i), ii), iii) und iv) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge an bekanntem Antigen, umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäurerersten 15-42, erhalten hat, um die Menge an Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 in der zweiten Fraktion zu bestimmen, und

c) man vergleicht die Menge an die Aminosäurereste 1-42 enthaltendem Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I aus Schritt a), v) mit der Menge an die Aminosäurereste 15-42 enthaltendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II aus Schritt b), v), womit man ermittelt, ob Bβ 15-42 gegenüber Bβ 1-42 überwiegt, wobei solches Überwiegen einen Hinweis auf die genannte Möglichkeit für das Einsetzen occlusiver Thrombose bei dem genannten Patienten ergibt.


 
60. Testpackung für die Ermittlung, ob das in einer Testprobe enthaltene Plasma bestimmte Aminosäuresequenzen einschließt, umfassend

(i) den monoklonalen Antikörper von Anspruch 1

(ii) ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42,

(iii) Human-Fibrinogen, und

(iv) ein enzmygekoppeltes Immunglobulin, das auf tierisches Immunglobulin spezifisch ist.


 
61. Testpackung gemäß Anspruch 60, in welcher der genannte monoklonale Antikörper der monoklonale Antikörper aus Anspruch 1 ist, wobei das genannte Tier eine Maus ist und wobei das tierische Immunglobulin Mäuse-Immunglobulin ist.
 
62. Testpackung zur Ermittlung, ob das in einer Testprobe enthaltene Plasma eine bestimmte Aminosäuresequenz einschließt, umfassend

(i) den monoklonalen Antikörper von Anspruch 9

(ii) ein Peptidfragement der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42

(iii) Human-Fibrin II und

(iv) ein enzymgekoppeltes Immunglobulin, das auf tierisches Immunglobulin spezifisch ist.


 
63. Testpackung gemäß Anspruch 62, in welcher der genannte monoklonale Antikörper der monoklonale Antikörper von Anspruch 9 ist, wobei das genannte Tier eine Maus ist und das tierische Immunglobulin Mäuse-Immunglobulin ist.
 
64. Testpackung zur Ermittlung, ob das in einer Testprobe enthaltene Plasma bestimmte Aminosäuresequenzen einschließt umfassend

(i) einen ersten monoklonalen Antikörper, wobei der genannte monoklonale Antikörper Anspruch 1 entspricht

(ii) einen zweiten monoklonalen Antikörper, wobei der genannte zweite monoklonale Antikörper Anspruch 9 entspricht,

(iii) Human-Fibrinogen

(iv) Human-Fibrin II und

(v) ein enzymgebundenes Immunglobulin, das auf tierisches Immunoglobulin spezifisch ist.


 
65. Testpackung gemäß Anspruch 64, in welcher der erste monoklonale Antikörper der monoklonale Antikörper von Anspruch 1 ist, der zweite monoklonale Antikörper der monoklonale Antikörper von Anspruch 9 ist und das tierische Immunglobulin Mäuse-Immunglobulin ist.
 


Ansprüche

Patentansprüche für folgende(n) Vertragsstaat(en): AT

1. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers, umfassend die Bildung von Hybridomen durch Fusion von Zellen aus einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen aus einem vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I immunisierten Tier und die anschließende Abtrennung der daraus hervorgegangenen Hybridome und die Auswahl eines Hybridoms, welches den monospezifischen Antikörper gegen ein Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I erzeugt, wobei der genannte Antikörper

a) mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42 der genannten B -Kette, reagiert;

b) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert; und

c) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert.


 
2. Verfahren gemäß Anspruch 1, welches die folgenden Schritte umfaßt:

(a) Ein Tier wird mit einer N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

(b) aus jedem Tier von Schritt (a) wird die Milz entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

(c) die genannten Zellen jeder Milz von Schritt (b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Zellen fusioniert;

(d) die fusionierten Zellen von Schritt (c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

(e) der Überstand in jeder Vertiefung, welche ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrinogen, N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

(f) ein Hybridom, welches einen Antikörper erzeugt, der mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der Bβ-Kette, enthaltend lediglich die Aminosäurereste 1-14 oder 15-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont.

(g) die genannten Klone werden intraperitoneal auf Tiere übertragen; und

(h) die bösartige Ascites oder das Serum der genannten Tiere werden gewonnen, wobei die Ascites oder das Serum den gewünschten Antikörper enthalten.


 
3. Verfahren gemäß den Ansprüchen 1 oder 2, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I durch Spaltung des genannten Human-Fibrinogens oder Fibrins I mit CNBr gebildet wird, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen vorzugsweise N-DSK und wobei das genannte Fragment von Fibrin I vorzugsweise (B)N-DSK ist.
 
4. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 3, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen ausgewählt ist aus der Gruppe von B -1-118 und B 1-42.
 
5. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 4, bei welchem der genannte Antikörper zur Klasse IgG, vorzugsweise zur Unterklasse IgG2a gehört.
 
6. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 1 und 3 bis 4, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Ein Tier wird mit einer N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

b) die Milz wird aus jedem Tier von Schritt a) entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

c) die genannten Zellen aus jeder Milz von Schritt b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

d) die fusionierten Zellen von Schritt c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

e) der Überstand in jeder Vertiefung, die ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrinogen, N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

f) ein Hybridom, welches einen Antikörper erzeugt, der mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der genannten Bβ-Kette, enthaltend die Aminosäurereste 1-14 oder 15-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont; und

g) der Antikörper aus dem Überstand der genannten Klone wird gewonnen.


 
7. Verfahren gemäß Anspruch 6, welches folgende zusätzliche Schritte einschließt:

(g) Die in Schritt (f) erhaltenen Klone werden intraperitoneal auf Tiere übertragen; und

h) die bösartige Ascites oder das Serum der genannten Tiere werden gewonnen, wobei diese Ascites oder das Serum den gewünschten Antikörper enthalten.


 
8. Verfahren zur Herstellung eines monoklonalen Antikörpers, umfassend die Bildung von Hybridomen durch Fusion von Zellen aus einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen eines Tieres, welches vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrin II immunisiert worden war, und anschließend die Abtrennung der Hybridome und die Auswahl des den monospezifischen Antikörper gegen ein Fragment aus Human-Fibrin II erzeugenden Hybridoms; wobei der genannte Antikörper

a) mit einem Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42 der genannten Bβ-Kette, reagiert;

b) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14, reagiert;

c) nicht mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42, reagiert.


 
9. Verfahren gemäß Anspruch 8, bei dem das genannte Fragment von Human-Fibrin II durch Spaltung des genannten Human-Fibrins II mit CNBr gebildet wird.
 
10. Verfahren gemäß Anspruch 8, bei dem das genannte Fragment von Human-Fibrin II (T)N-DSK ist.
 
11. Verfahren gemäß Anspruch 8, bei dem das genannte Fragment von Human-Fibrin II ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 15-118 und Bβ 15-42.
 
12. Verfahren gemäß Anspruch 8, bei dem der genannte Antikörper zur Klasse IgG, vorzugsweise zur Unterklasse IgG₁ gehört.
 
13. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 8-12, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Ein Tier wird mit einer (T)N-DSK enthaltenden Lösung immunisiert;

b) die Milz aus jedem Tier von Schritt a) wird entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

c) die genannten Zellen aus jeder Milz von Schritt b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

d) die fusionierten Zellen von Schritt c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

e) der Überstand in jeder Vertiefung, welche ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrin II, (T)N-DSK oder gegen jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

f) ein Hybridom, welches einen Antikörper erzeugt, welcher mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der Bβ-Kette von Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend lediglich die Aminosäurereste 1-14 oder 1-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont; und

g) die genannten Klone werden intraperitoneal auf Tiere übertragen; und

h) die bösartige Ascites oder das Serum der genannten Tiere wird gewonnen, wobei diese Ascites oder das Serum den erwünschten Antikörper enthalten.


 
14. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 8 bis 13, bei dem der monoklonale Antikörper mit den Produkten reagiert, welche durch Thrombindigestion von Human-Fibrinogen erzeugt werden, jedoch nicht mit den Produkten, welche aus der Thrombindigestion von Kaninchen-Fibrinogen hervorgehen, reagiert.
 
15. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 14, bei dem die genannte Myelomlinie vorzugsweise Myelomzellen vom Typ P3X63Ag8.653 enthält, und wobei die Milzzellen vorzugsweise aus einer Maus vom Typ BALB/cJ erhalten werden.
 
16. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 8 bis 12, 14 und 15, welches folgende Schritte umfaßt:

(a) Ein Tier wird mit einer im wesentlichen aus (T)N-DSK bestehenden homogenen Lösung immunisiert;

(b) aus jedem Tier von Schritt (a) wird die Milz entfernt und aus den Zellen jeder Milz eine Suspension bereitet;

(c) die genannten Zellen aus jeder Milz von Schritt (b) werden in Gegenwart eines Fusionspromotors mit tierischen Myelomzellen fusioniert;

(d) die fusionierten Zellen von Schritt (c) werden in voneinander getrennten Vertiefungen in einem Medium, welches die nicht-fusionierten Myelomzellen nicht fördert, verdünnt und kultiviert;

(e) der Überstand in jeder Vertiefung, die ein Hybridom für das Vorliegen von Antikörpern gegen Fibrin II oder jegliche damit verwandte Fragmente enthält, wird ausgewertet;

(f) ein Hybridom, das einen Antikörper erzeugt, welcher mit einem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42, reagiert, jedoch nicht mit irgendeinem der Peptidfragmente der Bβ-Kette von Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-14 oder 1-42, reagiert, wird ausgewählt und geklont; und

(g) der Antikörper wird aus dem Überstand der genannten Klone gewonnen.


 
17. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms für die Erzeugung des monoklonalen Antikörpers gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 7, in welchem das genannte Verfahren die Fusionierung einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen aus einem vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I immunisierten Tier umfaßt, wobei das genannte Tier vorzugsweise eine Maus ist, und wobei die genannte Myelomlinie vorzugsweise Myelomzellen des Typs P3X63Ag8.653 umfaßt und wobei die genannten Milzzellen vorzugsweise aus einer Maus vom Typ BALB/cJ erhalten werden.
 
18. Verfahren gemäß Anspruch 17, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen oder Fibrin I durch Spaltung des genannten Human-Fibrinogens oder des Fibrins I mit CNBr gebildet wird, wobei das genannte Fragment von Human-Fibrinogen vorzugsweise N-DSK ist, und wobei das genannte Fragment von Fibrin I vorzugsweise (B)N-DSK ist.
 
19. Verfahren gemäß den Ansprüchen 17 oder 18, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrinogen aus der Gruppe von Bβ 1-118 und Bβ 1-42 ausgewählt ist.
 
20. Verfahren gemäß jedem der Ansprüche 17 bis 19, in welchem das genannte NH₂-terminale Fragment aus einer N-DSK umfassenden Lösung besteht und die genannte Fusion in Gegenwart eines Fusionspromotors erfolgt.
 
21. Verfahren zur Herstellung eines Hybridoms zur Erzeugung des monoklonalen Antikörpers gemäß jedem der Ansprüche 9 bis 16, umfassend die Fusion einer tierischen Myelomlinie mit Milzzellen eines vorher mit einem NH₂-terminalen Fragment von Human-Fibrin II immunisierten Tieres, wobei das genannte Tier vorzugsweise eine Maus ist, wobei die genannte Myelomlinie vorzugsweise Myelomzellen des Typs P3X63Ag8.653 umfaßt und wobei die genannten Milzzellen vorzugsweise aus einer Maus vom Typ BALB/cJ erhalten werden.
 
22. Verfahren gemäß Anspruch 21, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrin II durch Spaltung des genannten Human-Fibrins II mit CNBr gebildet wird und wobei das genannte Fragment von Human-Fibrin II vorzugsweise (T)N-DSK ist.
 
23. Verfahren gemäß Anspruch 21, in welchem das genannte Fragment von Human-Fibrin II ausgewählt ist aus der Gruppe von Bβ 15-118 und Bβ 15-42.
 
24. Verfahren gemäß Anspruch 21, in welchem das genannte NH₂-terminale Fragment eine (T)N-DSK umfassende Lösung ist und die genannte Fusionierung in Gegenwart eines Fusionspromotors erfolgt.
 
25. Verfahren zum Nachweis des Vorliegens eines die Aminosäurereste 1-42 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I in einer Plasmaprobe auf dem Wege des enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des Radioimmun-Assays durch In-Berührung-Bringen der genannten Probe mit einem Antikörper gegen das genannte Fragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, dessen Verbesserung darin besteht, daß der genannte Antikörper der gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 7 hergestellte Antikörper ist.
 
26. Verfahren gemäß Anspruch 25, in welchem der genannte Antikörper in Gegenwart eines radioaktiv markierten die Aminosäurereste 1-42 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit der genannten Probe vermischt wird und das an den genannten Antikörper gebundene radioaktiv markierte Fragment unter Verwendung eines gegenüber dem genannten Antikörper spezifischen Antikörpers abgetrennt wird.
 
27. Verfahren gemäß Anspruch 25, in welchem der genannte Antikörper mit der genannten Probe vermischt wird, das Gemisch mit einem die Aminosäurereste 1-42 enthaltenden Polypeptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I in Berührung gebracht, und in welchem ein für den genannten Antikörper spezifischer Antikörper an ein Enzym gekoppelt wird.
 
28. Verfahren gemäß Anspruch 25, in welchem ein enzymgekoppelter Immunsorptions-Assay oder ein Radioimmun-Assay durchgeführt wird und in welchem die Ergebnisse des genannten enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des genannten Radioimmun -Assays vorzugsweise mit einem bekannten Standard zur Bestimmung der an einer Normalprobe gemessenen relativen Konzentration eines Antigens in der Testprobe verglichen wird.
 
29. Verfahren zur Bestimmung der Menge eines in einer Plasmaprobe vorliegenden Peptidfragments der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, in welchem das genannte Fragment die Aminosäurereste 1-42 enthält, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Die genannte Probe wird mit bekannten Mengen von MAb/1-8C6, einem kompetitiven Antigen auf einem festen Träger, wobei das kompetitive Antigen ein die Aminosäurereste 1-42 enthaltendes Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I umfaßt, sowie mit einem enzymgekoppelten Antikörper in Berührung gebracht, wobei der Antikörper sich mit Mäuse-Immunoglobulin verbindet;

b) man weist die Menge des an das kompetitive Antigen auf dem festen Träger gebundenen MAb/1-8C6 nach, indem man die Menge an gebundenem enzymgekoppelten Antikörper bestimmt.

c) Die Ergebnisse aus den Schritten a) und b) werden mit denen verglichen, welche man unter Verwendung einer standardisierten Menge an bekanntem Antigen, umfassend ein die Aminosäurereste 1-42 enthaltendes Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, erhält.


 
30. Verfahren zur Bestimmung der Menge an in einer Plasmaprobe vorliegendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, wobei das genannte Fragment die Aminosäurereste 1-42 enthält, welches folgende Schritte umfaßt:

a) Man bringt die genannte Probe mit bekannten Mengen sowohl von MAb/1-8C6 als auch von kompetitivem radiomarkiertem Antigen, umfassend ein die Aminosäurereste 1-42 enthaltendes Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich an das MAb/1-8C6 binden kann;

b) man bringt die genannte Probe, MAb/1-8C6 und das kompetitive radiomarkierte Antigen aus Schritt a) mit einem auf Mäuse-Immunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

c) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt b) unter Verwendung des Antikörpers aus Schritt b) ab;

d) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt c) durch Zählung; und

e) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten a), b), c) und d) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem Antigen, enthaltend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42, erhalten hat.


 
31. Verfahren zum Nachweis des Vorliegens eines die Aminosäurereste 15-42 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in einer Plasmaprobe auf dem Wege des enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des Radioimmun-Assays, in welchem man die genannte Probe mit einem Antikörper gegen das genannte Fragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in Berührung bringt, dessen Verbesserung darin besteht, daß der Antikörper der gemäß jedem der Ansprüche 8 bis 16 hergestellte Antikörper ist.
 
32. Verfahren gemäß Anspruch 31, in welchem der genannte Antikörper mit der genannten Probe in Gegenwart eines radioaktiv markierten die Aminosäurereste 15-52 enthaltenden Fragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in Berührung gebracht wird, und in welchem das an den genannten Antikörper gebundene radioaktiv markierte Fragment unter Verwendung des für den genannten Antikörper spezifischen Antikörpers abgetrennt wird.
 
33. Verfahren gemäß Anspruch 31, in welchem der genannte Antikörper mit der genannten Probe vermischt, das Gemisch mit einem die Aminosäurereste 15-42 enthaltenden Polypeptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II in Berührung gebracht wird, und in welchem ein für den genannten Antikörper spezifischer Antikörper an ein Enzym gekoppelt wird.
 
34. Verfahren gemäß Anspruch 31, in welchem ein enzymgekoppelter Immunsorptions-Assay oder ein Radioimmun-Assay durchgeführt wird und in welchem die Ergebnisse des genannten enzymgekoppelten Immunsorptions-Assays oder des genannten Radioimmun-Assays vorzugsweise mit einem bekannten Standard zur Bestimmung der in Bezug auf eine Normalprobe relativen Konzentration von Antigen in der Testprobe verglichen wird.
 
35. Verfahren zur Bestimmung der Menge eines in einer Plasmaprobe vorliegenden Peptidfragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, wobei das genannte Fragment die Aminosäurereste 15-42 enthält und welches folgende Schritte umfaßt:

a) Man bringt die genannte Probe mit bekannten Mengen von jeweils MAb/T2G1s, einem kompetitiven Antigen auf Feststoffträger umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42, und einem enzymgekoppelten Antikörper zusammen, wobei dieser Antikörper sich mit Mäuse-Immunglobulin verbindet.

b) Man weist die Menge des an das kompetitive Antigen auf Feststoffträger gebundenen MAb/T2G1s durch Bestimmung der Menge an gebundenem enzymgekoppeltem Antikörper nach.

c) Man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten (a) und (b) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem Antigen, umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42, erhalten hat.


 
36. Verfahren zur Bestimmung der Menge eines in einer Plasmaprobe vorliegenden Peptidfragments der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, wobei das genannte Fragment die Aminosäurereste 15-42 enthält, und welches folgende Schritte umfaßt:

a) Man bringt die genannte Probe mit bekannten Mengen von jeweils MAb/T2G1s, kompetitivem radiomarkierten Antigen, enthaltend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42, solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich mit dem MAb/T2G1s verbinden kann;

b) man bringt die genannte Probe, MAb/T2G1s und kompetitives radioaktives Antigen aus Schritt a) mit einem für Mäuse-Immunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

c) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt b) unter Verwendung des Antikörpers von Schritt b) ab;

d) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt (c) durch Zählung; und

e) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten a), b), c) und d) mit denen, die man unter Verwendung einer bekannten Menge von ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfassendem Antigen erhalten hat.


 
37. Verfahren zum Nachweis der Möglichkeit des Einsetzens von occlusiver Thrombose bei einem Patienten, umfassend die Aufteilung einer Plasmaprobe des genannten Patienten in eine erste Fraktion und in eine zweite Fraktion und

a) Behandlung der ersten Fraktion auf folgendem Wege:

i) Man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen von jeweils MAb/1-8C6, einem kompetitiven Antigen auf Feststoffträger, wobei das kompetitive Antigen ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 umfaßt, sowie einem an Enzym gekoppelten Antikörper, wobei der Antikörper sich mit Mäuse-Immunglobulin verbindet, zusammen;

ii) man weist die Menge von an das kompetitive Antigen auf Feststoffträger gebundenem MAb/1-8C6 durch Ermittlung der Menge an gebundenem enzymgekoppeltem Antikörper nach.

iii) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i) und ii) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem ein Peptidfragment der B -Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 umfassenden Antigen erhalten hat, um die Menge an Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 in der ersten Fraktion zu bestimmen;

b) man behandelt die zweite Fraktion folgendermaßen:

i) man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen von jeweils MAb/T2G1s, kompetitivem Antigen auf Feststoffträger, wobei das kompetitive Antigen ein Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfaßt, sowie einem an Enzym gekoppelten Antikörper zusammen, wobei der Antikörper sich mit Mäuse-Immunglobulin verbindet.

ii) man weist die Menge von an das kompetitive Antigen auf Feststoffträger gebundenem MAb/T2G1s durch Bestimmung der Menge an gebundenem enzymgekoppeltem Antikörper nach.

iii) Man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i) und ii) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfassenden Antigen erhält, um die Menge an Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 in der zweiten Fraktion zu bestimmen;

c) man vergleicht die Menge an die Aminosäurereste 1-42 umfassendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I aus Schritt a), iii) mit der Menge an die Aminosäurereste 15-42 umfassendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II aus Schritt b), iii) und bestimmt damit, ob Bβ 15-42 gegenüber Bβ 1-42 überwiegt, wobei solches Überwiegen einen Hinweis auf die genannte Möglichkeit für das Einsetzen von occlusiver Thrombose bei dem genannten Patienten ergibt.


 
38. Verfahren zum Nachweis der Möglichkeit für das Einsetzen von occlusiver Thrombose bei einem Patienten, umfassend die Auftrennung einer Plasmaprobe des genannten Patienten in eine erste Fraktion und in eine zweite Fraktion und

a) Behandlung der ersten Fraktion auf folgendem Wege:

i) man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen von jeweils MAb/1-8C6 und kompetitivem radiomarkiertem ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 umfassendem Antigen solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich mit dem MAb/1-8C6 verbinden kann.

ii) Man bringt die genannte Fraktion, MAb/1-8C6 und das kompetitive radiomarkierte Antigen aus Schritt i) mit einem für Mäuse-Immunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

iii) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt ii) unter Verwendung des Antikörpers aus Schritt ii) ab;

iv) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt iii) durch Zählung; und

v) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i), ii), iii) und iv) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge von bekanntem Antigen, umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42, erhalten hat, um die Menge an Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I mit den Aminosäureresten 1-42 in der ersten Fraktion zu bestimmen;

b) Behandlung der zweiten Fraktion auf folgendem Wege:

i) Man bringt die genannte Fraktion mit bekannten Mengen an MAb/T2G1s, kompetitivem radiomarkiertem ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 umfassenden Antigen solchermaßen zusammen, daß das kompetitive radiomarkierte Antigen sich an das MAb/T2G1s binden kann;

ii) man bringt die genannte Fraktion, MAb/T2G1s und das kompetitive radiomarkierte Antigen aus Schritt i) mit einem für Mäuse-Immunglobulin spezifischen Antikörper zusammen;

iii) man trennt das an den Antikörper gebundene radiomarkierte Antigen aus Schritt ii) unter Verwendung des Antikörpers aus Schritt ii) ab;

iv) man ermittelt die Radioaktivität des gebundenen radiomarkierten Antigens aus Schritt iii) durch Zählung, und

v) man vergleicht die Ergebnisse aus den Schritten i), ii), iii) und iv) mit denen, die man unter Verwendung einer standardisierten Menge an bekanntem Antigen, umfassend ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäurerersten 15-42, erhalten hat, um die Menge an Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II mit den Aminosäureresten 15-42 in der zweiten Fraktion zu bestimmen, und

c) man vergleicht die Menge an die Aminosäurereste 1-42 enthaltendem Peptidfragment aus der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I aus Schritt a), v) mit der Menge an die Aminosäurereste 15-42 enthaltendem Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrin II aus Schritt b), v), womit man ermittelt, ob Bβ 15-42 gegenüber Bβ 1-42 überwiegt, wobei solches Überwiegen einen Hinweis auf die genannte Möglichkeit für das Einsetzen occlusiver Thrombose bei dem genannten Patienten ergibt.


 
39. Testpackung für die Ermittlung, ob das in einer Testprobe enthaltene Plasma bestimmte Aminosäuresequenzen einschließt, umfassend

(i) den monoklonalen gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 7 hergestellten Antikörper,

(ii) ein Peptidfragment der Bβ-Kette von Human-Fibrinogen oder Fibrin I, enthaltend die Aminosäurereste 1-42,

(iii) Human-Fibrinogen, und

(iv) ein enzmygekoppeltes Immunglobulin, das auf tierisches Immunglobulin spezifisch ist.


 
40. Testpackung gemäß Anspruch 39, in welcher der genannte monoklonale Antikörper der gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 7 hergestellte monoklonale Antikörper ist, wobei das genannte Tier eine Maus ist und wobei das tierische Immunglobulin Mäuse-Immunglobulin ist.
 
41. Testpackung zur Ermittlung, ob das in einer Testprobe enthaltene Plasma eine bestimmte Aminosäuresequenz einschließt, umfassend

(i) den gemäß jedem der Ansprüche 8 bis 16 hergestellten monoklonalen Antikörper,

(ii) ein Peptidfragement der Bβ-Kette von Human-Fibrin II, enthaltend die Aminosäurereste 15-42

(iii) Human-Fibrin II und

(iv) ein enzymgekoppeltes Immunglobulin, das auf tierisches Immunglobulin spezifisch ist.


 
42. Testpackung gemäß Anspruch 41, in welcher der genannte monoklonale Antikörper der gemäß jedem der Ansprüche 8 bis 16 hergestellte monoklonale Antikörper ist, wobei das genannte Tier eine Maus ist und das tierische Immunglobulin Mäuse-Immunglobulin ist.
 
43. Testpackung zur Ermittlung, ob das in einer Testprobe enthaltene Plasma bestimmte Aminosäuresequenzen einschließt, umfassend

(i) einen ersten monoklonalen Antikörper, wobei der genannte monoklonale Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 7 hergestellt wurde,

(ii) einen zweiten monoklonalen Antikörper, wobei der genannte zweite monoklonale Antikörper gemäß jedem der Ansprüche 8 bis 16 hergestellt wurde,

(iii) Human-Fibrinogen

(iv) Human-Fibrin II und

(v) ein enzymgebundenes Immunglobulin, das auf tierisches Immunoglobulin spezifisch ist.


 
44. Testpackung gemäß Anspruch 43, in welcher der erste monoklonale Antikörper der gemäß jedem der Ansprüche 1 bis 7 hergestellte monoklonale Antikörper und der zweite monoklonale Antikörper der gemäß jedem der Ansprüche 8 bis 16 hergestellte monoklonale Antikörper ist und wobei das tierische Immunglobulin Mäuse-Immunglobulin ist.
 


Revendications

Revendications pour l'(les) Etat(s) contractant(s) suivant(s): BE, CH, LI, DE, FR, GB, IT, NL, SE

1. Anticorps monoclonal produit par des hybridomes, lesdits hybridomes étant formés par fusion de cellules provenant d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, puis séparation des hybridomes et sélection de l'hybridome qui produit l'anticorps monospécifique dirigé contre un fragment de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, dans lequel ledit anticorps :

(a) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 de ladite chaîne Bβ ;

(b) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ; et

(c) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42.


 
2. Anticorps monoclonal selon la revendication 1, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est formé par clivage dudit fibrinogène humain ou de ladite fibrine I humaine par le CNBr.
 
3. Anticorps monoclonal selon la revendication 1, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain et ledit fragment de fibrine I sont respectivement le N-DSK et le (B)N-DSK.
 
4. Anticorps monoclonal selon la revendication 1, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 1-118 et Bβ 1-42.
 
5. Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, dans lequel ledit anticorps est de la classe des IgG, de préférence, de la sous-classe des IgG2a.
 
6. Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 5, dans lequel ledit anticorps est préparé par un procédé qui comprend les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal, de préférence une souris, avec une solution comprenant du N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (c) dans des puits séparés dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre le fibrinogène, le N-DSK, ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome qui produit un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre des fragments peptidiques de ladite chaîne Bβ contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ou 15-42 ; et

(g) récupérer l'anticorps à partir du surnageant desdits clones.


 
7. Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 6, dans lequel ledit anticorps est préparé par le procédé de la revendication 6, étapes (a) à (f), lequel procédé comprend les étapes additionnelles consistant à :

(g) transférer les clones obtenus à l'étape (f) par voie intrapéritonéale, dans des animaux ; et

(h) récolter les ascites malins ou le sérum malin desdits animaux, lesquels ascites ou lequel sérum contiennent ou contient l'anticorps souhaité.


 
8. Anticorps monoclonal produit par l'hybridome ATCC HB 8418.
 
9. Anticorps monoclonal produit par des hybridomes, lesdits hybridomes étant formés par fusion de cellules provenant d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrine II humaine, puis séparation des hybridomes et sélection de l'hybridome qui produit l'anticorps monospécifique dirigé contre un fragment de fibrine II humaine, dans lequel ledit anticorps :

(a) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 de ladite chaîne Bβ ;

(b) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ;

(c) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus des acides aminés 1-42.


 
10. Anticorps monoclonal selon la revendication 9, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est formé par clivage de ladite fibrine II humaine par le CNBr.
 
11. Anticorps monoclonal selon la revendication 9, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est le (T)N-DSK.
 
12. Anticorps monoclonal selon la revendication 9, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 15-118 et Bβ 15-42.
 
13. Anticorps monoclonal selon la revendication 9, dans lequel ledit anticorps est de la classe des IgG, de préférence, de la sous-classe des IgG₁.
 
14. Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 9 à 13, dans lequel ledit anticorps est préparé par un procédé qui comprend les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal, de préférence une souris, avec une solution comprenant du (T)N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (c) dans des puits séparés dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre la fibrine II, le (T)N-DSK, ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome qui produit un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre des fragments peptidiques de la chaîne Bβ de fibrinogène ou de fibrine I contenant uniquement les résidus d'acides aminés 1-14 ou 1-42 ; et

(g) récupérer l'anticorps à partir du surnageant desdits clones.


 
15. Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 9 à 13, dans lequel ledit anticorps est préparé par le procédé de la revendication 14, étapes (a) à (f), lequel procédé comprend les étapes additionnelles consistant à :

(g) transférer les clones de l'étape (f) par voie intrapéritonéale dans des souris ; et

(h) récolter les ascites malins ou le sérum malin desdites souris, lesquels ascites ou lequel sérum contiennent ou contient l'anticorps souhaité.


 
16. Anticorps monoclonal produit par l'hybridome ATCC HB 8426.
 
17. Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 9 à 16, dans lequel l'anticorps monoclonal réagit avec les produits obtenus par une digestion par la thrombine du fibrinogène humain, mais ne réagit pas avec le produit résultant de la digestion par la thrombine du fibrinogène de lapin.
 
18. Anticorps monoclonal selon l'une quelconque des revendications 1 à 17, dans lequel ladite lignée de myélome comprend, de préférence, des cellules de myélome p3X63Ag8.653, et dans lequel lesdites cellules de rate sont, de préférence, obtenues à partir d'une souris BALB/cJ.
 
19. Hybridome pour la production de l'anticorps monoclonal tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 18, ledit hybridome étant formé par fusion de cellules provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, dans lequel ledit animal est, de préférence, une souris, en particulier, une souris BALB/cJ, et dans lequel les cellules de myélome comprennent, de préférence, des cellules de myélome p3X63Ag8.653.
 
20. Hybridome selon la revendication 19, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est formé par clivage dudit fibrinogène ou de ladite fibrine I par le CNBr.
 
21. Hybridome selon la revendication 19, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain et ledit fragment de fibrine I sont respectivement le N-DSK et le (B)N-DSK.
 
22. Hybridome selon la revendication 19, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain ou de fibrine (I) humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 1-118 et Bβ 1-42.
 
23. Hybridome selon la revendication 19, dans lequel ledit fragment NH₂-terminal est une solution comprenant du N-DSK, et ladite fusion est conduite en présence d'un promoteur de fusion.
 
24. Hybridome désigné comme étant ATCC HB 8418.
 
25. Hybridome pour la production de l'anticorps monoclonal tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 18, ledit hybridome étant formé par fusion de cellules provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrine II humaine, dans lequel ledit animal est, de préférence, une souris, et dans lequel les cellules de rate sont de préférence, obtenues à partir d'une souris BALB/cJ.
 
26. Hybridome selon la revendication 25, dans lequel ledit fragment de fibrine IL humaine est formé par clivage de ladite fibrine II par le CNBr, et dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est, de préférence, le (T)N-DSK.
 
27. Hybridome selon la revendication 25, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 15-118 et Bβ 15-42.
 
28. Hybridome selon la revendication 25, dans lequel ledit fragment NH₂-terminal est une solution comprenant le (T)N-DSK, et ladite fusion est conduite en présence d'un promoteur de fusion.
 
29. Hybridome désigné comme étant ATCC HB 8426.
 
30. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal comprenant la formation d'hybridomes par fusion de cellules provenant d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, puis séparation des hybridomes résultants et sélection d'un hybridome parmi ceux-ci, lequel produit un anticorps monospécifique dirigés contre un fragment NH₂-terminal de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine ;
dans lequel ledit anticorps :

(i) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 de ladite chaîne Bβ ;

(ii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ; et

(iii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 ,

ledit procédé comprenant les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution comprenant du N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et faire une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules animales en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (c) dans des puits séparés dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre le fibrinogène, le N-DSK, ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome produisant un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre parmi les fragments peptidiques de ladite chaîne Bβ contenant uniquement les résidus d'acides aminés 1-14 ou 15-42 ;

(g) transférer lesdits clones par voie intrapéritonéale dans des animaux ; et

(h) récolter les ascites malins ou le sérum malin à partir desdits animaux, lesquels ascites ou lequel sérum contiennent ou contient l'anticorps souhaité.


 
31. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal selon la revendication 30, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine est formé par clivage dudit fibrinogène humain ou de ladite fibrine I humaine par le CNBr, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est, de préférence, le N-DSK, et dans lequel ledit fragment de fibrine I est, de préférence, le (B)N-DSK.
 
32. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal selon la revendication 30, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est choisi dans le groupe constitué par Bβ 1-118 et Bβ 1-42.
 
33. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal, dans lequel ledit anticorps :

(i) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 de ladite chaîne Bβ ;

(ii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ; et

(iii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42,

ledit procédé consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution comprenant du N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant, de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (b) dans des puits séparés, dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre le fibrinogène, le N-DSK ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome qui produit un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre parmi les fragments peptidiques de ladite chaîne Bβ contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ou 15-42 ;

(g) récupérer l'anticorps à partir du surnageant desdits clones.


 
34. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal comprenant la formation d'un hybridome par fusion de cellules provenant d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrine II humaine, puis séparation des hybridomes et sélection de l'hybridome qui produit l'anticorps monospécifique souhaité ; dans lequel ledit anticorps :

(i) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 de ladite chaîne Bβ ;

(ii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ; et

(iii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, ledit procédé comprenant les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution comprenant du (T)N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (c) dans des puits séparés dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre la fibrine II, le (T)N-DSK, ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome produisant un anticorps qui réagit avec le fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre parmi les fragments peptidiques de la chaîne Bβ de fibrinogène ou de fibrine I contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ou 1-42 ;

(g) transférer lesdits clones par voie intrapéritonéale dans des animaux ;

(h) récolter les ascites malins ou le sérum malin desdits animaux, lesquels ascites ou lequel sérum contiennent ou contient l'anticorps souhaité.


 
35. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal selon la revendication 34, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est formé par clivage de ladite fibrine II humaine par le CNBr, et dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est, de préférence, le (T)N-DSK.
 
36. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal selon la revendication 34, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 15-118 et Bβ 15-42.
 
37. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal, dans lequel ledit anticorps :

(i) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 de ladite chaîne Bβ ;

(ii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ; et

(iii) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42,

ledit procédé comprenant les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution homogène consistant essentiellement en (T)N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (b) dans des puits séparés, dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre la fibrine II ou n'importe quels fragments apparentés à celle-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome qui produit un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant des résidus d'acides aminés 15-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre parmi les fragments peptidiques de la chaîne Bβ de fibrinogène ou de fibrine I contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ou 1-42 ; et

(g) récupérer l'anticorps à partir du surnageant desdits clones.


 
38. Procédé de préparation d'un hybridome pour la production de l'anticorps monoclonal tel que défini à la revendication 1, ledit procédé comprenant la fusion d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, dans lequel ledit animal est une souris, dans lequel ladite lignée de myélome comprend, de préférence, des cellules de myélome p3X63Agg8.653, et dans lequel lesdites cellules de rate sont, de préférence, obtenues à partir d'une souris BALB/cJ.
 
39. Procédé de préparation d'un hybridome selon la revendication 38, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine est formé par clivage par CNBr dudit fibrinogène humain ou de ladite fibrine I humaine, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est, de préférence, le N-DSK, et dans lequel ledit fragment de fibrine I est, de préférence, le (B)N-DSK.
 
40. Procédé de préparation d'un hybridome selon la revendication 38, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est choisi dans le groupe constitué par Bβ 1-118 et Bβ 1-42.
 
41. Procédé de préparation d'un hybridome selon la revendication 38, dans lequel ledit fragment NH₂-terminal est une solution comprenant du N-DSK, et ladite fusion est conduite en présence d'un promoteur de fusion.
 
42. Procédé de préparation d'un hybridome pour la fabrication d'un anticorps monoclonal tel que défini à la revendication 1, ledit procédé comprenant la fusion d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par le fragment NH₂-terminal de la fibrine II humaine, dans lequel ledit animal est une souris, dans lequel ladite lignée de myélome comprend, de préférence, des cellules de myélome p3X63Ag8.653, et dans lequel lesdites cellules de rate sont, de préférence, obtenues à partir d'une souris BALB/cJ.
 
43. Procédé de préparation d'un hybridome selon la revendication 42, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est formé par clivage par CNBr de ladite fibrine II humaine, et dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est, de préférence, le (T)N-DSK.
 
44. Procédé de préparation d'un hybridome selon la revendication 42, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 15-118 et Bβ 15-42.
 
45. Procédé de préparation d'un hybridome selon la revendication 42, dans lequel ledit fragment NH₂-terminal est une solution comprenant du (T)N-DSK, et ladite fusion est conduite en présence d'un promoteur de fusion.
 
46. Dans un procédé pour la détection de la présence d'un fragment de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 dans un échantillon de plasma par un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou par un essai radio-immunologique par mise en contact dudit échantillon avec un anticorps dirigé contre ledit fragment de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, le perfectionnement suivant lequel ledit anticorps est l'anticorps de la revendication 1.
 
47. Procédé selon la revendication 46, dans lequel ledit anticorps est mélangé avec ledit échantillon en présence d'un fragment radioactivement marqué de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, et le fragment radioactivement marqué, lié audit anticorps, est séparé à l'aide d'un anticorps spécifique dudit anticorps.
 
48. Procédé selon la revendication 46, dans lequel ledit anticorps est mélangé avec ledit échantillon, le mélange est mis en contact avec un fragment polypeptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 et un anticorps spécifique dudit anticorps est relié avec une enzyme.
 
49. Procédé selon la revendication 46, dans lequel un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou un essai radio-immunologique est effectué, et dans lequel les résultats dudit essai par immunosorbant lié à une enzyme ou dudit essai radio-immunologique sont, de préférence, comparés à un standard connu pour déterminer la concentration relative de l'antigène dans l'échantillon d'essai par comparaison avec un échantillon normal.
 
50. Procédé pour la détermination de la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment contenant les résidus d'acides aminés 1-42, qui comprend les étapes consistant à :

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de MAb/1-8C6, un antigène compétitif sur un support solide, lequel antigène compétitif comprend un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(b) détecter la quantité de MAb/1-8C6 liée à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(c) comparer les résultats des étapes (a) et (b) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42.


 
51. Procédé pour la détermination de la quantité de fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, comprenant les étapes consistant à

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/1-8C6 et un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ defibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif puisse se lier avec le MAb/1-8C6 ;

(b) mettre en contact ledit échantillon, le MAb/1-8C6 et l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (a) avec un anticorps spécifique des immunoglobulines de souris ;

(c) séparer l'antigène radio-marqué lié à l'anticorps, de l'étape (b) à l'aide de l'anticorps de l'étape (b) ;

(d) compter la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (c) ; et

(e) comparer les résultats des étapes (a), (b), (c) et (d) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42.


 
52. Dans un procédé pour la détection de la présence d'un fragment de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 dans un échantillon de plasma par un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou par un essai radio-immunologique par mise en contact dudit échantillon avec un anticorps dirigé contre ledit fragment de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, le perfectionnement suivant lequel ledit anticorps est l'anticorps de la revendication 10.
 
53. Procédé selon la revendication 52, dans lequel ledit anticorps est mis en contact avec ledit échantillon en présence d'un fragment radioactivement marqué de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 et le fragment radioactivement marqué, lié audit anticorps, est séparé à l'aide d'un anticorps spécifique dudit anticorps.
 
54. Procédé selon la revendication 52, dans lequel ledit anticorps est mélangé avec ledit échantillon, le mélange est mis en contact avec un fragment polypeptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 et un anticorps spécifique dudit anticorps est lié à une enzyme.
 
55. Procédé selon la revendication 52, dans lequel un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou un essai radio-immunologique est effectué, et dans lequel les résultats dudit essai par immunosorbant lié à une enzyme ou dudit essai radio-immunologique sont, de préférence, comparés avec un standard connu pour déterminer la concentration relative de l'antigène dans l'échantillon d'essai par comparaison avec un échantillon normal.
 
56. Procédé pour la détermination de la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment contenant les résidus d'acides aminés 15-42, comprenant les étapes consistant à :

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/T2G1s, un antigène compétitif sur un support solide, comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(b) détecter la quantité de MAb/T2G1s liée à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(c) comparer les résultats des étapes (a) et (b) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42.


 
57. Procédé pour la détermination de la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment contenant les résidus d'acides aminés 15-42, comprenant les étapes consistant à :

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/T2G1s, un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif peut se lier avec le MAb/T2G1s ;

(b) mettre en contact ledit échantillon, le MAb/T2G1s et l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (a) avec un anticorps spécifique des immunoglobulines de souris ;

(c) séparer l'antigène radio-marqué lié à l'anticorps, de l'étape (b), à l'aide de l'anticorps de l'étape (b) ;

(d) compter la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (c) ; et

(e) comparer les résultats des étapes (a), (b), (c) et (d) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42.


 
58. Procédé pour la détection du potentiel de survenue d'une thrombose occlusive chez un patient, comprenant la division d'un échantillon de plasma provenant dudit patient en une première fraction et une deuxième fraction, et les opérations consistant à :

(a) traiter la première fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/1-8C6, un antigène compétitif sur un support solide, lequel antigène compétitif comprend un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(ii) détection de la quantité de MAb/1-8C6 liée à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(iii) comparaison des résultats des étapes (i) et (ii) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, dans la première fraction ;

(b) traiter la seconde fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/T2G1s, un antigène compétitif sur un support solide, lequel antigène compétitif comprend un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(ii) détection de la quantité de MAb/T2G1s lié à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(iii) comparaison des résultats des étapes (i) et (ii) avec celui obtenu à l'aidé d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, dans la seconde fraction ;

(c) comparer la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 provenant de l'étape (a) (iii) avec la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42 provenant de l'étape (b) (iii), ce qui permet de déterminer si le Bβ 15-42 prédomine par rapport au Bβ 1-42, une telle prédominance indiquant ledit potentiel de survenue de la thrombose occlusive chez ledit patient.


 
59. Procédé de détection du potentiel de survenue d'une thrombose occlusive chez un patient, comprenant la division d'un échantillon de plasma provenant dudit patient en une première fraction et en une seconde fraction, et les opérations consistant à :

(a) traiter la première fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/1-8C6 et un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif puisse se lier avec le MAb/1-8C6 ;

(ii) mise en contact de ladite fraction, du MAb/1-8C6 et de l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (i) avec un anticorps spécifique de l'immunoglobuline de souris ;

(iii) séparation de l'antigène radio-marqué lié à un anticorps, de l'étape (ii) à l'aide de l'anticorps de l'étape (ii) ;

(iv) comptage de la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (iii) ; et

(v) comparaison des résultats des étapes (i), (ii), (iii) et (iv) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 dans la première fraction ;

(b) traiter la seconde fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues du MAb/T2G1s, d'un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif puisse se lier avec le MAb/T2G1s ;

(ii) mise en contact de ladite fraction, du MAb/T2G1s et de l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (i) avec un anticorps spécifique de l'immunoglobuline de souris ;

(iii) séparation de l'antigène radio-marqué lié à un anticorps, de l'étape (ii), à l'aide de l'anticorps de l'étape (ii) ;

(iv) comptage de la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (iii) ; et

(v) comparaison des résultats des étapes (i), (ii), (iii) et (iv) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, dans la seconde fraction ; et

(c) comparer la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 provenant de l'étape (a) (v) avec la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42 provenant de l'étape (b) (v), ce qui permet de déterminer si le Bβ 15-42 prédomine par rapport au Bβ 1-42, une telle prédominance indiquant ledit potentiel de survenue d'une thrombose occlusive chez ledit patient.


 
60. Kit pour déterminer si le plasma contenu dans un échantillon d'essai comprend des séquences particulières d'acides aminés, comprenant :

(i) l'anticorps monoclonal de la revendication 1 ;

(ii) un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de la fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 ;

(iii) du fibrinogène humain ; et

(iv) une immunoglobuline liée à une enzyme, spécifique d'une immunoglobuline animale.


 
61. Kit selon la revendication 60, dans lequel ledit anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal de la revendication 1, dans lequel ledit animal est une souris, et dans lequel l'immunoglobuline animale est l'immunoglobuline de souris.
 
62. Kit pour déterminer si le plasma contenu dans un échantillon d'essai comprend une séquence particulière d'acides aminés, comprenant :

(i) l'anticorps monoclonal de la revendication 9 ;

(ii) un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 ;

(iii) la fibrine II humaine ; et

(iv) une immunoglobuline liée à une enzyme spécifique d'une immunoglobuline animale.


 
63. Kit selon la revendication 62, dans lequel ledit anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal de la revendication 9, dans lequel ledit animal est une souris, et l'immunoglobuline animale est l'immunoglobuline de souris.
 
64. Kit pour déterminer si le plasma contenu dans un échantillon d'essai comprend des séquences particulières d'acides aminés, comprenant :

(i) un premier anticorps monoclonal, ledit premier anticorps monoclonal étant tel que défini à la revendication 1 ;

(ii) un second anticorps monoclonal, ledit second anticorps monoclonal étant tel que défini à la revendication 9 ;

(iii) du fibrinogène humain ;

(iv) de la fibrine II humaine ; et

(v) des immunoglobulines liées à une enzyme, spécifiques de l'immunoglobuline animale.


 
65. Kit selon la revendication 64, dans lequel ledit premier anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal tel que défini à la revendication 1, ledit second anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal tel que défini à la revendication 9 et l'immunoglobuline animale est l'immunoglobuline de souris.
 


Revendications

Revendications pour l'(les) Etat(s) contractant(s) suivant(s): AT

1. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal comprenant la formation d'hybridomes par fusion de cellules de rate provenant d'une lignée de myélome animal et de splénocytes provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, puis séparation des hybridomes et sélection de l'hybridome qui produit un anticorps monospécifique dirigés contre un fragment de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine ; dans lequel ledit anticorps :

(a) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 de ladite chaîne Bβ ;

(b) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ; et

(c) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42.


 
2. Procédé selon la revendication 1, comprenant les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution comprenant du N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et faire une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules animales en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (c) dans des puits séparés dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre le fibrinogène, le N-DSK, ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome produisant un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre parmi les fragments peptidiques de ladite chaîne Bβ contenant uniquement les résidus d'acides aminés 1-14 ou 15-42 ;

(g) transférer lesdits clones par voie intrapéritonéale dans des animaux ; et

(h) récolter les ascites malins ou le sérum malin à partir desdits animaux, lesquels ascites ou lequel sérum contiennent ou contient l'anticorps souhaité.


 
3. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 et 2, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine est formé par clivage dudit fibrinogène humain ou de ladite fibrine I humaine par le CNBr, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est, de préférence, le N-DSK, et dans lequel ledit fragment de fibrine I est, de préférence, le (B)N-DSK.
 
4. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 3, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est choisi dans le groupe constitué par Bβ 1-118 et Bβ 1-42.
 
5. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 4, dans lequel ledit anticorps est de la classe des IgG, de préférence, de la sous-classe des IgG2a.
 
6. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 et 3 à 4, comprenant les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution comprenant du N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (c) dans des puits séparés dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre le fibrinogène, le N-DSK, ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome qui produit un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre des fragments peptidiques de ladite chaîne Bβ contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ou 15-42 ; et

(g) récupérer l'anticorps à partir du surnageant desdits clones.


 
7. Procédé selon la revendication 6, qui comprend les étapes additionnelles consistant à :

(g) transférer les clones obtenus à l'étape (f) par voie intrapéritonéale, dans des animaux ; et

(h) récolter les ascites malins ou le sérum malin desdits animaux, lesquels ascites ou lequel sérum contiennent ou contient l'anticorps souhaité.


 
8. Procédé de préparation d'un anticorps monoclonal comprenant la formation d'hybridomes par fusion de cellules provenant d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrine II humaine, puis séparation des hybridomes et sélection de l'hybridome qui produit l'anticorps monospécifique dirigé contre un fragment de fibrine II humaine, dans lequel ledit anticorps :

(a) réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 de ladite chaîne Bβ ;

(b) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ;

(c) ne réagit pas avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus des acides aminés 1-42.


 
9. Procédé selon la revendication 8, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est formé par clivage de ladite fibrine II humaine par le CNBr.
 
10. Procédé selon la revendication 8, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est le (T)N-DSK.
 
11. Procédé selon la revendication 8, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 15-118 et Bβ 15-42.
 
12. Procédé selon la revendication 8, dans lequel ledit anticorps est de la classe des IgG, de préférence, de la sous-classe des IgG₁.
 
13. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 12, comprenant les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution comprenant du (T)N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (c) dans des puits séparés dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre la fibrine II, le (T)N-DSK, ou n'importe quels fragments apparentés à ceux-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome produisant un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre des fragments peptidiques de la chaîne Bβ de fibrinogène ou de fibrine I contenant uniquement les résidus d'acides aminés 1-14 ou 1-42 ;

(g) transférer lesdits clones par voie intrapéritonéale dans des animaux ; et

(h) récolter les ascites malins ou le sérum malin desdits animaux, lesquels ascites ou lequel sérum contiennent ou contient l'anticorps souhaité.


 
14. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 13, dans lequel l'anticorps monoclonal réagit avec les produits obtenus par une digestion par la thrombine du fibrinogène humain, mais ne réagit pas avec le produit résultant de la digestion par la thrombine du fibrinogène de lapin.
 
15. Procédé selon l'une quelconque des revendications 1 à 14, dans lequel ladite lignée de myélome comprend, de préférence, des cellules de myélome p3X63Ag8.653, et dans lequel les cellules de rate sont, de préférence, obtenues à partir d'une souris BALB/cJ.
 
16. Procédé selon l'une quelconque des revendications 8 à 12, 14 et 15, comprenant les étapes consistant à :

(a) immuniser un animal avec une solution homogène consistant essentiellement en (T)N-DSK ;

(b) retirer la rate de chaque animal de l'étape (a) et former une suspension des cellules provenant de chaque rate ;

(c) fusionner lesdites cellules de chaque rate de l'étape (b) avec des cellules de myélome animal en présence d'un promoteur de fusion ;

(d) diluer et cultiver les cellules fusionnées provenant de l'étape (b) dans des puits séparés, dans un milieu qui ne supportera pas les cellules de myélome non fusionnées ;

(e) évaluer le surnageant dans chaque puits contenant un hybridome pour la présence d'anticorps dirigés contre la fibrine II ou n'importe quels fragments apparentés à celle-ci ;

(f) sélectionner et cloner un hybridome qui produit un anticorps qui réagit avec un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant des résidus d'acides aminés 15-42, mais ne réagit pas avec l'un ou l'autre parmi les fragments peptidiques de la chaîne Bβ de fibrinogène ou de fibrine I contenant les résidus d'acides aminés 1-14 ou 1-42 ;

(g) récupérer l'anticorps à partir du surnageant desdits clones.


 
17. Procédé de préparation d'un hybridome pour la production de l'anticorps monoclonal tel que défini à l'une quelconque des revendications 1 à 7, ledit procédé comprenant la fusion d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de fibrinogène humain ou de fibrine I, dans lequel ledit animal est de préférence une souris, dans lequel ladite lignée de myélome comprend, de préférence, des cellules de myélome p3X63Ag8.653, et dans lequel lesdites cellules de rate sont, de préférence, obtenues à partir d'une souris BALB/cJ.
 
18. Procédé selon la revendication 17, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine est formé par clivage par CNBr dudit fibrinogène humain ou de ladite fibrine I humaine, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est, de préférence, le N-DSK et dans lequel ledit fragment de fibrine I est, de préférence, le (B)N-DSK.
 
19. Procédé selon l'une des revendications 17 et 18, dans lequel ledit fragment de fibrinogène humain est choisi dans le groupe constitué par Bβ 1-118 et Bβ 1-42.
 
20. Procédé selon l'une quelconque des revendications 17 à 19, dans lequel ledit fragment NH₂-terminal est une solution comprenant du N-DSK, et ladite fusion est conduite en présence d'un promoteur de fusion.
 
21. Procédé de préparation d'un hybridome pour la fabrication d'un anticorps monoclonal tel que défini à l'une quelconque des revendications 9 à 16, comprenant la fusion d'une lignée de myélome animal et de cellules de rate provenant d'un animal préalablement immunisé par un fragment NH₂-terminal de la fibrine II humaine, dans lequel ledit animal est de préférence une souris, dans lequel ladite lignée de myélome comprend, de préférence, des cellules de myélome p3X63Ag8.653, et dans lequel lesdites cellules de rate sont, de préférence, obtenues à partir d'une souris BALB/cJ.
 
22. Procédé selon la revendication 21, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est formé par clivage par CNBr de ladite fibrine II humaine, et dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est, de préférence, le (T)N-DSK.
 
23. Procédé selon la revendication 21, dans lequel ledit fragment de fibrine II humaine est choisi dans le groupe constitué par Bβ 15-118 et Bβ 15-42.
 
24. Procédé selon la revendication 21, dans lequel ledit fragment NH₂-terminal est une solution comprenant du (T)N-DSK, et ladite fusion est conduite en présence d'un promoteur de fusion.
 
25. Dans un procédé pour la détection de la présence d'un fragment de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 dans un échantillon de plasma par un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou par un essai radio-immunologique par mise en contact dudit échantillon avec un anticorps dirigé contre ledit fragment de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, le perfectionnement suivant lequel ledit anticorps est l'anticorps préparé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7.
 
26. Procédé selon la revendication 25, dans lequel ledit anticorps est mélangé avec ledit échantillon en présence d'un fragment radioactivement marqué de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42, et le fragment radioactivement marqué, lié audit anticorps, est séparé à l'aide d'un anticorps spécifique dudit anticorps.
 
27. Procédé selon la revendication 25, dans lequel ledit anticorps est mélangé avec ledit échantillon, le mélange est mis en contact avec un fragment polypeptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 et un anticorps spécifique dudit anticorps est une enzyme.
 
28. Procédé selon la revendication 25, dans lequel un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou un essai radio-immunologique est effectué, et dans lequel les résultats dudit essai par immunosorbant lié à une enzyme ou dudit essai radio-immunologique sont, de préférence, comparés à un standard connu pour déterminer la concentration relative de l'antigène dans l'échantillon d'essai par comparaison avec un échantillon normal.
 
29. Procédé pour la détermination de la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment contenant les résidus d'acides aminés 1-42, qui comprend les étapes consistant à :

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de MAb/1-8C6, un antigène compétitif sur un support solide, lequel antigène compétitif comprend un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(b) détecter la quantité de MAb/1-8C6 liée à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(c) comparer les résultats des étapes (a) et (b) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42.


 
30. Procédé pour la détermination de la quantité de fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, comprenant les étapes consistant à

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/1-8C6 et un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif puisse se lier avec le MAb/1-8C6 ;

(b) mettre en contact ledit échantillon, le MAb/1-8C6 et l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (a) avec un anticorps spécifique des immunoglobulines de souris ;

(c) séparer l'antigène radio-marqué lié à l'anticorps, de l'étape (b) à l'aide de l'anticorps de l'étape (b) ;

(d) compter la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (c) ; et

(e) comparer les résultats des étapes (a), (b), (c) et (d) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42.


 
31. Dans un procédé pour la détection de la présence d'un fragment de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 dans un échantillon de plasma par un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou par un essai radio-immunologique par mise en contact dudit échantillon avec un anticorps dirigé contre ledit fragment de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, le perfectionnement suivant lequel ledit anticorps est l'anticorps préparé selon l'une quelconque des revendications 8 à 16.
 
32. Procédé selon la revendication 31, dans lequel ledit anticorps est mis en contact avec ledit échantillon en présence d'un fragment radioactivement marqué de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 et le fragment radioactivement marqué, lié audit anticorps, est séparé à l'aide d'un anticorps spécifique dudit anticorps.
 
33. Procédé selon la revendication 31, dans lequel ledit anticorps est mélangé avec ledit échantillon, le mélange est mis en contact avec un fragment polypeptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 et un anticorps spécifique dudit anticorps est lié à une enzyme.
 
34. Procédé selon la revendication 31, dans lequel un essai par immunosorbant lié à une enzyme ou un essai radio-immunologique est effectué, et dans lequel les résultats dudit essai par immunosorbant lié à une enzyme ou dudit essai radio-immunologique sont, de préférence, comparés avec un standard connu pour déterminer la concentration relative de l'antigène dans l'échantillon d'essai par comparaison avec un échantillon normal.
 
35. Procédé pour la détermination de la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment contenant les résidus d'acides aminés 15-42, comprenant les étapes consistant à :

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/T2G1s, un antigène compétitif sur un support solide, comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(b) détecter la quantité de MAb/T2G1s liée à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(c) comparer les résultats des étapes (a) et (b) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42.


 
36. Procédé pour la détermination de la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, présent dans un échantillon de plasma, ledit fragment contenant les résidus d'acides aminés 15-42, comprenant les étapes consistant à :

(a) mettre en contact ledit échantillon avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/T2G1s, un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif peut se lier avec le MAb/T2G1s ;

(b) mettre en contact ledit échantillon, le MAb/T2G1s et l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (a) avec un anticorps spécifique des immunoglobulines de souris ;

(c) séparer l'antigène radio-marqué lié à l'anticorps, de l'étape (b), à l'aide de l'anticorps de l'étape (b) ;

(d) compter la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (c) ; et

(e) comparer les résultats des étapes (a), (b), (c) et (d) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42.


 
37. Procédé pour la détection du potentiel de survenue d'une thrombose occlusive chez un patient, comprenant la division d'un échantillon de plasma provenant dudit patient en une première fraction et une deuxième fraction, et les opérations consistant à :

(a) traiter la première fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/1-8C6, un antigène compétitif sur un support solide, lequel antigène compétitif comprend un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(ii) détection de la quantité de MAb/1-8C6 liée à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(iii) comparaison des résultats des étapes (i) et (ii) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, dans la première fraction ;

(b) traiter la seconde fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/T2G1s, un antigène compétitif sur un support solide, lequel antigène compétitif comprend un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine, comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, et un anticorps lié à une enzyme, lequel anticorps se lie à l'immunoglobuline de souris ;

(ii) détection de la quantité de MAb/T2G1s lié à l'antigène compétitif sur le support solide par détermination de la quantité d'anticorps lié à une enzyme, qui est lié ;

(iii) comparaison des résultats des étapes (i) et (ii) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, dans la seconde fraction ;

(c) comparer la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 provenant de l'étape (a) (iii) avec la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42 provenant de l'étape (b) (iii), ce qui permet de déterminer si le Bβ 15-42 prédomine par rapport au Bβ 1-42, une telle prédominance indiquant ledit potentiel de survenue de la thrombose occlusive chez ledit patient.


 
38. Procédé de détection du potentiel de survenue d'une thrombose occlusive chez un patient, comprenant la division d'un échantillon de plasma provenant dudit patient en une première fraction et en une seconde fraction, et les opérations consistant à :

(a) traiter la première fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues de chacun parmi le MAb/1-8C6 et un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine, comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif puisse se lier avec le MAb/1-8C6 ;

(ii) mise en contact de ladite fraction, du MAb/1-8C6 et de l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (i) avec un anticorps spécifique de l'immunoglobuline de souris ;

(iii) séparation de l'antigène radio-marqué lié à un anticorps, de l'étape (il) à l'aide de l'anticorps de l'étape (ii) ;

(iv) comptage de la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (iii) ; et

(v) comparaison des résultats des étapes (i), (ii), (iii) et (iv) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 dans la première fraction ;

(b) traiter la seconde fraction par :

(i) mise en contact de ladite fraction avec des quantités connues du MAb/T2G1s, d'un antigène radio-marqué compétitif comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, de telle sorte que l'antigène radio-marqué compétitif puisse se lier avec le MAb/T2G1s ;

(ii) mise en contact de ladite fraction, du MAb/T2G1s et de l'antigène radio-marqué compétitif de l'étape (i) avec un anticorps spécifique de l'immunoglobuline de souris ;

(iii) séparation de l'antigène radio-marqué lié à un anticorps, de l'étape (ii), à l'aide de l'anticorps de l'étape (ii) ;

(iv) comptage de la radioactivité de l'antigène radio-marqué lié de l'étape (iii) ; et

(v) comparaison des résultats des étapes (i), (ii), (iii) et (iv) avec celui obtenu à l'aide d'une quantité standard d'antigène connu comprenant un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, pour déterminer la quantité d'un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42, dans la seconde fraction ; et

(c) comparer la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de fibrine I humaine comprenant les résidus d'acides aminés 1-42 provenant de l'étape (a) (v) avec la quantité du fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine comprenant les résidus d'acides aminés 15-42 provenant de l'étape (b) (v), ce qui permet de déterminer si le Bβ 15-42 prédomine par rapport au Bβ 1-42, une telle prédominance indiquant ledit potentiel de survenue d'une thrombose occlusive chez ledit patient.


 
39. Kit pour déterminer si le plasma contenu dans un échantillon d'essai comprend des séquences particulières d'acides aminés, comprenant :

(i) l'anticorps monoclonal préparé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 ;

(ii) un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrinogène humain ou de la fibrine I humaine contenant les résidus d'acides aminés 1-42 ;

(iii) du fibrinogène humain ; et

(iv) une immunoglobuline liée à une enzyme, spécifique d'une immunoglobuline animale.


 
40. Kit selon la revendication 39, dans lequel ledit anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal préparé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, dans lequel ledit animal est une souris, et dans lequel l'immunoglobuline animale est l'immunoglobuline de souris.
 
41. Kit pour déterminer si le plasma contenu dans un échantillon d'essai comprend une séquence particulière d'acides aminés, comprenant :

(i) l'anticorps monoclonal préparé selon l'une quelconque des revendications 8 à 16 ;

(ii) un fragment peptidique de la chaîne Bβ de fibrine II humaine contenant les résidus d'acides aminés 15-42 ;

(iii) la fibrine II humaine ; et

(iv) une immunoglobuline liée à une enzyme, spécifique d'une immunoglobuline animale.


 
42. Kit selon la revendication 41, dans lequel ledit anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal préparé selon l'une quelconque des revendications 8 à 16, dans lequel ledit animal est une souris, et dans lequel l'immunoglobuline animale est l'immunoglobuline de souris.
 
43. Kit pour déterminer si le plasma contenu dans un échantillon d'essai comprend des séquences particulières d'acides aminés, comprenant :

(i) un premier anticorps monoclonal, ledit premier anticorps monoclonal étant préparé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7 ;

(ii) un second anticorps monoclonal, ledit second anticorps monoclonal étant préparé selon l'une quelconque des revendications 8 à 16 ;

(iii) du fibrinogène humain ;

(iv) de la fibrine II humaine ; et

(v) des immunoglobulines liées à une enzyme, spécifiques de l'immunoglobuline animale.


 
44. Kit selon la revendication 43, dans lequel ledit premier anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal préparé selon l'une quelconque des revendications 1 à 7, ledit second anticorps monoclonal est l'anticorps monoclonal préparé selon l'une quelconque des revendications 8 à 16 et l'immunoglobuline animale est l'immunoglobuline de souris.
 




Drawing