[0001] Die Erfindung betrifft ein Verfahren zur Herstellung substituierter o-Methoxyphenole
aus Eugenol oder Eugenol enthaltenden Gemischen mit Hilfe von Mikroorganismen und
für dieses Verfahren geeignete Bakterien.
[0002] Substituierte Methoxyphenole, wie z.B. Coniferylalkohol und Coniferylaldehyd, sind
als Aromastoffe verwendbar. Allerdings sind Coniferylalkohol und insbesondere Coniferylaldehyd
in größeren Mengen gar nicht verfügbar. Es bestand daher das Bedürfnis nach einem
in technischem Umfang wirtschaftlich nutzbaren Verfahren.
[0003] Andere Methoxyphenole eignen sich als günstige Zwischenprodukte für die Herstellung
verschiedener natürlicher Aromastoffe. So wird beispielsweise die Herstellung von
Vanillin u.a. aus Ferulasäure beschrieben (EP-A-453 368). Ferulasäure ist schon als
synthetisches Produkt relativ teuer. Die Herstellung natürlicher Aromastoffe erfordert
aber den Einsatz natürlicher Ausgangsmaterialien. Natürliche Ferulasäure ist aber
bislang nicht erhältlich. Sie kommt lediglich in geringen Konzentrationen in verschiedenen
pflanzlichen Materialien vor - meist in gebundener Form (Ester). Eine natürliche Isolierung
daraus ist wirtschaftlich nicht sinnvoll. Auch für Vanillinsäure ist keine günstige
natürliche Bezugsquelle bekannt.
[0004] In der Literatur (K. Tadasa and H. Kayahara, Agric. Biol. Chem, 47, 2629-2640, 1983)
wurde schon einmal der Abbau von Eugenol über Coniferylalkohol und Ferulasäure mit
einer Pseudomonas sp. beschrieben. Aufgrund der Beschreibung muß es sich um eine andere
Art handeln; entscheidend ist aber, daß der Stamm nicht hinterlegt worden ist und
damit für eine Nacharbeitung nicht zur Verfügung steht.
[0005] Es wurde nun aus einer Bodenprobe aus Ost java/Indonesien eine neue Pseudomonaden
sp. isoliert, die überraschenderweise in der Lage ist, Eugenol zu Ferulasäure, Vanillinsäure,
Coniferylalkohol und Coniferylaldehyd umzusetzen. Eugenol ist ein relativ preiswerter
Bestandteil von natürlichem Nelkenöl.
[0006] Gegenstand der Erfindung ist also die neue Art Pseudomonas sp. nov. mit den bei der
Deutschen Sammlung für Mikroorganismen und Zellkulturen GmbH in Braunschweig unter
den Nummern DSM 7062 und DSM 7063 hinterlegten Stämmen.
Taxonomische Beschreibung der Art
[0008] Einzelne geringfügige Abweichungen, insbesondere im Substratverwertungsspektrum,
sind innerhalb einer Art üblich und nicht auszuschließen.
[0009] Weiterer Gegenstand der Erfindung ist ein Verfahren zur Herstellung von Verbindungen
der Formel
worin
- R
- -COOH, -CH=CH-COOH, -CH=CH-CH₂OH oder -CH=CH-CHO bedeutet,
aus Eugenol
in Gegenwart von Pseudomonas sp. nov. oder deren Enzymen oder von Mikrorganismen mit
genetischem Material aus Pseudomonas sp. nov., das die Struktur- und Regulatorgene
für die Enzyme kodiert, die in dieser Reaktion wirksam sind.
[0010] Eugenol kann auch in Mischung mit anderen Komponenten eingesetzt werden, beispielsweise
in Form von Nelkenöl.
[0011] Die erfindungsgemäß zu verwendende Art Pseudomonas sp. nov. kann in üblichen Kulturmedien
kultiviert werden. Diese Kulturmedien können synthetisch, halbsynthetisch oder komplex
sein und können Kohlenstoffquellen, Stickstoffquellen, anorganische Salze und gegebenenfalls
Spurenelemente und Vitamine enthalten.
[0012] Als Kohlenstoffquellen können z.B. Zucker wie Glucose, Zuckeralkohole wie Glycerin,
organische Säuren wie Zitronensäure oder komplexe Gemische wie Malzextrakt, Hefeextrakt,
Casein oder Caseinhydrolysat dienen.
[0013] Beispiele für geeignete Stickstoffquellen sind anorganische Stickstoffquellen wie
Nitrate und Ammoniumsalze und organische Stickstoffquellen wie Hefeextrakt, Sojamehl,
Baumwollsaatmehl, Casein, Caseinhydrolysat, Weizengluten und Maisquellwasser.
[0014] Als organische Salze können beispielsweise unter anderem Sulfate, Nitrate, Chloride,
Carbonate und Phosphate von Natrium, Kalium, Magnesium, Calcium, Zink und Eisen verwendet
werden.
[0015] Das Substrat kann zu Beginn der Inkubation, während oder nach Abschluß des Wachstums
auf einmal oder über einen längeren Zeitraum verteilt zugegeben werden. Die Menge
an Eugenol wird dabei vorteilhaft so bemessen, daß die Konzentration der Verbindung
in der Kulturbrühe 30 g/l, vorzugsweise 5 g/l nicht überschreitet. Der Verlauf der
Oxidation kann durch Bestimmung des Ausgangsmaterials und der Produkte in der Kulturbrühe
mittels Hochdruckflüssigkeitschromatographie verfolgt werden. Nachdem die optimale
Menge der gewünschten Substanzen entstanden ist, können diese durch bekannte physikalische
Verfahren wie Extraktion, Destillation oder Chromatographie aus der Kulturbrühe isoliert
und durch weitere Schritte gereinigt werden.
[0016] Die Kultivierungstemperatur liegt vorzugsweise im Bereich von 10 bis 48°C, besonders
bevorzugt im Bereich von 16 bis 37°C. Der pH-Wert des Mediums beträgt bevorzugt 3
bis 9, insbesondere 4 bis 8. Die Kultivierung kann beispielsweise in geeigneten Schüttelapparaturen
oder in Fermentern mit Mischeinrichtung erfolgen, Bei der Kultivierung ist für eine
ausreichende Belüftung Sorge zu tragen. Die Kultivierung kann batchweise, halbkontinuierlich
oder kontinuierlich durchgeführt werden. Die Kulturdauer bis zum Erreichen einer maximalen
Produktmenge liegt zwischen 4 und 240 Stunden Um die Mikroorganismen vor der toxischen
Wirkung des Eugenols zu schützen, kann es vorteilhaft sein, den Kulturmedien Adsorptionsmittel
für das Substrat zuzusetzen, z.B. Aktivkohle oder Adsorberharze.
[0017] Durch Wahl der geeigneten Prozeßparameter ist es möglich, einzelne der oben erwähnten
Stoffe als Hauptkomponenten der Umsetzung zu erhalten.
Beispiele
Herstellung der Vorkultur
[0018] Ein 500 ml Erlenmeyerkolben wurde mit 100 ml Nutrient Broth gefüllt und anschließend
20 min bei 121°C sterilisiert. Nach dem Abkühlen wurde der Kolben mit einer Impföse
mit einer Kultur Pseudomonas sp. nov. DSM 7062 oder DSM 7063 von einer Agarplatte
beimpft. Die Kultur wurde auf einer rotierenden Schüttelmaschine bei 27°C und 120
Upm inkubiert. Nach 17 Stunden wurde diese Kultur zur Beimpfung des Produktionsmediums
verwendet.
Beispiel 1
Produktion im Schüttelkolben
[0019] Neun 500 ml Erlenmeyerkolben wurden mit je 100 ml Medium (4 g K₂HPO₄, 1 g NaH₂PO₄,
0,5 g Hefeextrakt, 0,2 g NaCl, 0,2 g MgSO₄ x 7 H₂O, 0,05 g CaCl₂, 1000 ml Wasser,
pH 7,25) gefüllt und anschließend 20 min bei 121°C dampfsterilisiert. Nach dem Abkühlen
wurden die Kolben mit je 5 ml einer Kultur von DSM 7063 angeimpft. Die Kulturen wurden
auf einer rotierenden Schüttelmaschine bei 27°C und 120 Upm inkubiert. Gleich nach
dem Animpfen wurden 500 ppm Eugenol zugegeben, sowie nach 4,5 Stunden nochmals 500
ppm, nach 9, 24 und 32,75 Stunden jeweils weitere 1000 ppm. Nach 54 Stunden wurde
die Fermentation abgebrochen, die Kolben autoklaviert, die Kulturbrühe der Kolben
vereinigt und die Zellmasse abgetrennt. Der Gehalt an Ferulasäure in der Kulturbrühe
lag gemäß HPLC-Analysen bei 1280 ppm entsprechend einer Umsetzung von 32 % der Theorie.
Der Gehalt von Coniferylalkohol lag bei 225 ppm und der Gehalt an Vanillinsäure bei
131 ppm.
Isolierung der Ferulasäure
[0020] 810 ml des in Beispiel 1 gewonnenen Kulturfiltrats wurden mit 1 N HCl auf pH 4,0
eingestellt und mit dem gleichen Volumen Ethylacetat einmal extrahiert. Die organische
Phase wurde getrennt und das Lösungsmittel bis zur Trockene am Rotationsverdampfer
abgezogen. Es wurde ein Niederschlag von 1,31 g erhalten, der zu 71 % Ferulasäure
enthielt. Dies entspricht einer Wiedergewinnung von 90 %.
Beispiel 2
Produktion im 10 l Fermenter
[0021] 10 l Kulturmedium (100 g Malzextrakt, 40 g Glucose, 20 g Hefeextrakt, 10 000 ml Wasser,
pH 7,3) wurden in einem Fermenter sterilisiert und nach Abkühlen mit 0,5 l einer Vorkultur
DSM 7063 angeimpft. Die Kulturbedingungen waren: 32°C, 200 Upm, 8 l Luft/min. Gleich
nach dem Animpfen wurden 1000 ppm Eugenol zugegeben, nach 7 Stunden 500 ppm, sowie
nach 10,5, 16, 22, 25 und 28 Stunden nochmals je 1000 ppm. Zusätzlich wurde die Luft
nach 25 Stunden auf 4 l Luft/min reduziert.
[0022] Nach 32,5 Stunden wurde die Fermentation abgebrochen. Die Konzentration der einzelnen
Komponenten lag bei:
Ferulasäure |
2365 ppm (31 % der Theorie) |
Coniferylalkohol |
1458 ppm (20 % der Theorie) |
Vanillinsäure |
1314 ppm (20 % der Theorie) |
Coniferylaldehyd |
11 ppm |
[0023] Am Ende des Verfahrens lagen noch 270 ppm (4 %) nicht umgesetztes Eugenol vor.
Beispiel 3
Produktion von Vanillinsäure im 10 l Fermenter
[0024] 10 l Kulturmedium (KH₂PO₄ 16 g; Na₂HPO₄ 30 g; NH₄Cl 5,3 g; MgSO₄ x 7 H₂O 1 g; CaCl₂
x 2 H₂O 0,7 g; Hefeextrakt 10 g ad 10 L deion. H₂O; pH 7,0) wurden in einem Fermenter
sterilisiert und nach Abkühlen wie in Beispiel 2 angeimpft. Die Kulturbedingungen
waren: 27°C, 200 Upm, 4 l Luft/min. Gleich nach dem Animpfen wurden 1000 ppm Eugenol
zugegeben, sowie nach 12, 20, 23,5, 28,5 und 36 Stunden nochmals je 1000 ppm.
[0025] Nach 99 Stunden wurde die Fermentation abgebrochen. Die Konzentration an Vanillinsäure
lag bei 3,25 g/l, entsprechend einer Umsetzung von 52,9 % der Theorie.
Beispiel 4
Produktion von Coniferylalkohol
[0026] 10 l Nutrient Broth wurden in einem Fermenter sterilisiert und nach dem Abkühlen
mit einer 24 Stunden alten Vorkultur von DSM 7063 angeimpft. Die Kulturbedingungen
waren 27°C, 400 Upm, 4 l Luft/min. Nach 15 Stunden wurde diese Kultur steril in einem
Fermenter mit 190 l Medium entsprechend Beispiel 1 übergeführt und bei 27°C, 200 Upm
und 40 l Luft/min. kultiviert. Zu Beginn der Fermentation wurden 1000 ppm Eugenol
zugegeben, sowie nach 7,5 Stunden 250 ppm, nach 14 Stunden 1000 ppm, nach 14,5 Stunden
und nach 23,5 Stunden 250 ppm, sowie ab der 25. Stunde während der nächsten 6 Stunden
1405 ppm und ab der 32. Stunde während der nächsten 15,5 Stunden 2590 ppm. Insgesamt
wurden 6745 ppm Eugenol über einen Zeitraum von 47,5 Stunden zugegeben.
[0027] Die Ausbeute an Coniferylalkohol lag bei 3226 ppm. Dies sind 43,5 % der Theorie.
Daneben wurden noch 1738 ppm (25 % der Theorie) Ferulasäure, sowie 12 ppm Coniferylaldehyd
und 8 ppm Vanillinsäure erhalten Am Ende des Verfahrens lagen noch 496 ppm (7,3 %)
nicht umgesetztes Eugenol vor.
Beispiel 5
Produktion von Ferulasäure
[0028] 10 l Kulturmedium (40 g K₂HPO₄, 10 g NaH₂PO₄, 5 g Caseinhydrolysat, 2 g NaCl, 2 g
MgSO₄ x 7 H₂O, ad 10 l Wasser, pH 7,25) wurden in einem Fermenter sterilisiert und
nach Abkühlen mit 0,5 l der Vorkultur DSM 7063 angeimpft. Die Kulturbedingungen waren:
27°C, 300 Upm, 4 l Luft/min. Gleich nach dem Animpfen wurden 1000 ppm Eugenol zugegeben,
sowie nach 6,5 Stunden 500 ppm und nach 8,5; 13,5; 19; 23,5; 26,5; 30,5; 37,5; und
45,5 Stunden nochmals je 1000 ppm. Nach 30,5 und 50 Stunden wurden zusätzlich je 2
g Caseinhydrolysat zugegeben.
[0029] Nach 75 Stunden wurde die Fermentation abgebrochen. Die Konzentration an Ferulasäure
lag bei 5,8 g/l entsprechend einer Umsetzung von 51,6 % der Theorie.
[0030] Bei Fermentation von DSM 7062 bei 32°C lag die Konzentration an Ferulasäure nach
78 Stunden bei 6,7 g/l; dies sind bei Einsatz von 13,9 g/l Eugenol 41 % der Theorie.