[0001] La présente invention est relative à un nouvel extrait peptidique présentant une
activité anti-métalloprotéase, notamment anti-collagénase et anti-gélatinase. Elle
est également relative aux compositions pharmaceutiques, cosmétiques ou nutraceutiques
comprenant un tel extrait, notamment une composition pharmaceutique destinée à traiter
les maladies inflammatoires, telles que l'arthrose, la parodontose, ou les ulcères
ou les compositions cosmétiques destinées à combattre le vieillissement actinique
ou non ou accéléré par les agressions extérieures (tabac, pollution, ...).
[0002] La composition pharmaceutique ou cosmétique ou nutraceutique est également destinée
à traiter la néoangiogénèse (prolifération des vaisseaux) pathologique ou inesthétique
(psoriasis, tumeurs, érythose, couperose, rosacée, traitement local aux irritants
tels que l'acide rétinoïque), les défauts de cicatrisation, les brûlures ou l'attaque
d'émail dentaire (Ch. M. Lapiere, Cours de biologie de la peau - COBIP INSERM U 346,
Lyon 1999).
[0003] Les métalloprotéases sont une famille d'endopeptidases zinc et calcium-dépendantes
qui ont la propriété combinée de dégrader les divers composants des matrices du tissu
conjonctif ( Thèse de S. Charvat - Métalloprotéinases et épiderme, pages 101-113 n°
248-98, 1998, Lyon I).
[0004] Elles sont classées suivant la nature de leur substrat. La collagénase (le collagène
fibrillaire : ex. MMP 1, 13, 8) ; la gélatinase (le collagène dénaturé, gélatine :
ex. MMP2, MMP9) ; les stromélysines (fibronectine, protéoglycane : ex. MMP3, MMP10).
Elles sont mises en jeu dans le remodelage physiologique (faible expression) ou pathologique
de la matrice extracellulaire (forte induction).
[0005] Les métalloprotéases sont notamment impliquées dans le processus de cicatrisation
en éliminant les tissus endommagés.
[0006] Les MMP peuvent agir de façon anarchique et conduire à des lésions importantes si
leur activité n'est pas contrôlée.
[0007] Par ailleurs, on sait que les métalloprotéases sont impliquées dans certains désordres
biologiques tels que les maladies inflammatoires, notamment l'arthrose, la parodontose
(H. BIRKEDAL-HANSEN
et al., Critical Reviews in Oral Biology and Medicine, 4(2) :197 :250 (1993)) ou dans les processus de vieillissement, notamment liés à l'action
du rayonnement solaire (MARTIN RIEGER ; Allured's Cosmetics & Toiletries®, vol. 114,
No. 1/January 1999 ou G. J. FISHER
et al., The New England Journal of Medicine, vol. 337, n° 20 pp. 1419-1428,
« Pathophysiology of premature skin aging induced by ultraviolet light » et G. J. FISHER
et al., the Society for Investigative Dermatology, Inc. 1998, pp. 61-68
« Molecular mechanisms of photoaging and its prevention by retinoic acid : ultraviolet
irradiation induces MAP kinase signal transduction cascades that induce A-1-regulated
matrix metalloproteinases that degrade human skin in vivo. ») ou dans les inflammations aiguës et chroniques (XIE
et al. ; J. Biol. Chem. 273 : pp. 11576-11582 ; 1998) et les maladies bulleuses (nécrolyse épithéliale toxique),
les pathologies à hyper prolifération cellulaire lors d'inflammation ou d'irritation,
les escarres, les brûlures et les ulcères.
[0008] Il en est de même pour la prolifération des cellules endothéliales néoangiogénèses
qui ont besoin dans leur phase proliférative lors de processus inflammatoires ou pathologiques
(psoriasis, tumeurs) des MPP pour détruire le tissu conjonctif, afin de migrer vers
d'autres territoires et de se constituer en microtubules et capillaires
(Controlling the vasculature : angiogenesis, anti-angiogenesis and vascular targeting
of gene therapy - T.P. D. FAN, R. JAGGAR et R. BICKNELL ; TiPS - February 1995, vol. 16 ;
Natural Products as angiogenesis inhibitors, D.H. PAPER,
Planta Medical 64 (1998) pp. 686-695 ;
Membrane-type matrix metalloproteinases in human dermal microvascular endothelial
cells :
expression and morphogenetic correlation - V.T. CHAN
et coll. , J.I.D. 111, pp. 1153-1159, 1998 ;
Matrix metalloproteinases in blood vessel development in human fetal skin and in cutaneous
tumors - T.V. KARELINA
et coll. J.I.D. ;
105, 411-417, 1995 ;
Vascular profiferation and angiogenic factors in psoriasis, J.D. CREAMER et J.N.W.N. BARKER,
Clinical and Experimental Dermatology, 1995,
20, pp. 6-9).
[0009] On connaît également le rôle des inhibiteurs de métalloprotéases, notamment des collagénases,
des gélatinases et des stromélysines, dans certains des traitements des maladies précitées.
[0010] L'objet de la présente invention est de proposer un nouvel inhibiteur à spectre large
des métalloprotéases de type collagénase ou gélatinase permettant le traitement d'humains
ou de mammifères souffrant d'une condition ou d'une maladie liée à une dégradation
excessive ou pathologique du collagène ou d'une autre macroprotéine extracelullaire
de soutien ou tout autre maladie liée à un excès d'expression de ces enzymes protéolytiques.
[0011] L'invention a pour objet un extrait peptidique de lupin (
lupinus) caractérisé en ce qu'il présente une activité d'inhibition des métalloprotéases,
notamment les collagénases ou les gélatinases. Comme variété de lupin, on cite notamment
le genre lupin blanc doux (
lupinus albus) tel que la variété Ares de faible teneur en alcaloïdes.
[0012] Selon une variante, cet extrait peptidique de lupin est appauvri en lipides.
[0013] Il comprend avantageusement au moins 50%, de préférence au moins 70 %, de préférence
au moins 80 % de peptide.
[0014] Ces peptides sont obtenus par hydrolyse de la fraction protéique de lupin.
[0015] L'hydrolyse peut être effectuée par n'importe quel moyen approprié, notamment une
hydrolyse enzymatique.
[0016] Un procédé de préparation d'un tel extrait peptidique de lupin comprend les étapes
suivantes :
- préparation d'un tourteau de lupin délipidé et broyé ou d'une farine de lupin (lipidée)
micronisée,
- extraction des fractions protéiques et osiques solubles ou précipitation à pH acide
(4 ou 5) selon le point isoélectrique,
- éventuellement séparation de la fraction protéique,
- hydrolyse de la fraction protéique et récupération, éventuellement après filtration,
de l'extrait protéique.
[0017] L'invention est également relative à l'extrait protéique susceptible d'être obtenu
par le procédé précité.
[0018] De façon générale, l'invention comprend les farines de lupin lipidées, les extraits
peptidiques comprenant encore les sucres.
[0019] De préférence, l'extrait protéique présente la composition en acides aminés suivante
(pourcentage en poids par rapport au poids total d'acides aminés).
| Amino-acides |
%/AA totaux |
| ASP |
11,3 |
| GLU |
23,2 |
| SER |
5,1 |
| HIS |
1,7 |
| GLY |
3,4 |
| THR |
3,2 |
| ALA |
2,8 |
| ARG |
10,3 |
| TYR |
6,1 |
| CYS-CYS |
2,4 |
| VAL |
3,8 |
| MET |
0,2 |
| PHE |
7,0 |
| ILE |
3,3 |
| LEU |
7,9 |
| LYS |
3,7 |
| PRO |
4,4 |
[0020] L'invention a également pour objet une composition pharmaceutique ou cosmétique ou
nutraceutique comprenant un extrait peptidique tel que décrit précédemment, éventuellement
un véhicule inerte approprié, physiologiquement acceptable.
[0021] Une telle composition pharmaceutique ou dermocosmétique et nutraceutique est destinée
notamment au traitement d'humains ou de mammifères souffrant d'une condition ou d'une
maladie liée à une destruction excessive de collagène et/ou une destruction excessive
des tissus de soutien. Une telle composition peut être utilisée à titre préventif
ou curatif
[0022] Parmi ces conditions ou maladies, on cite par exemple l'arthrose, les maladies parodontales,
les maladies liées aux lésions de la peau, les maladies inflammatoires, la néangiogénèse
tumorale ou pathologique (érythrose, couperose, télangectasie, rosacée, psoriasis
...), le défaut de cicatrisation, les ulcères, les brûlures, les maladies bulbeuses,
et l'attaque de l'émail dentaire.
[0023] L'invention est également relative aux compositions cosmétiques pour le traitement
des lésions de la peau dues au vieillissement telles que les lésions provoquées par
l'action du rayonnement solaire (en anglais
photoaging), les effets délétères intrinsèques de la peau, les effets délétères du tabac.
[0024] Les compositions pharmaceutiques, dermocosmétiques ou cosmétiques se présentent,
selon une variante, sous la forme d'une formulation pour application topique. L'invention
a donc pour objet une méthode de traitement cosmétique comprenant l'application d'une
telle composition sur la surface cutanée d'un individu.
[0025] L'extrait peptidique selon l'invention peut également être incorporé ou formulé dans
un véhicule polymérique ou un système de délivrance pour une utilisation topique ou
locale, comme dans le cas du traitement d'une maladie parodontale, pour être délivré
directement dans la poche parodontale.
[0026] Selon une autre variante, les compositions pharmaceutiques sont sous la forme d'une
formulation pour administration orale.
[0027] Ces compositions peuvent en général être formulées sous la forme de tablettes, de
capsules, de pommade.
[0028] Dans le cas des nutraceutiques ou compositions alimentaires, les formes habituellement
utilisées peuvent être employées.
[0029] L'invention est maintenant illustrée par les exemples de réalisation décrits ci-après
à titre illustratif
I - Préparation des extraits peptidiques de lupin
I.1. - Extrait A
- Extraction et purification des protéines de lupin
[0030] Cette étape comprend une solubilisation aqueuse de la fraction soluble à pH alcalin
suivie d'une séparation des insolubles :
[0031] A partir du tourteau de lupin délipidé et broyé, l'extraction des protéines est réalisée
à pH 9,0 (pH ajusté par ajout de soude) avec un ratio farine/eau égal à 1/10 (p/p).
La solution est incubée sous agitation à température ambiante pendant une heure. La
partie insoluble du tourteau est ensuite séparée de la partie soluble par essorage.
Le gâteau obtenu est lavé. La fraction soluble contenant les protéines et les sucres
solubles est diafiltrée sur un module d'ultrafiltration de seuil de coupure de 10
000 daltons afin de séparer les protéines (rétentat) des sucres solubles (ultrafiltrat).
- Production et purification de peptides par hydrolyse enzymatique :
[0032] Le rétentat d'ultrafiltration contenant les protéines est ajusté à la concentration
de 100 g/l puis hydrolysé à pH 8,0 en présence d'Alcalase® (NOVO NORDISK) à 55°C pendant
3 h environ. Après hydrolyse, l'enzyme est dénaturée par hydrolyse pendant 15 min
à 85°C. Dès que la solution est refroidie, elle est neutralisée par ajout d'acide
chlorhydrique. Les peptides obtenus sont purifiés par diafiltration sur module d'ultrafiltration
de seuil de coupure de 10 000 daltons. La solution obtenue est ensuite nanofiltrée
afin de dessaler (élimination du chlorure de sodium) et de concentrer la fraction
peptidique. La solution de peptides est enfin décolorée à l'aide de charbon actif
3 % (1 heure à 50 °C), le charbon étant éliminé par filtration.
- Stérilisation et conditionnement de la fraction de peptides:
[0033] Avant conditionnement, la solution est microfiltrée (0,2 µm) de façon stérile puis
répartie dans des contenants stériles à la concentration de 10 % en présence de conservateurs.
I.2 - Extrait B
[0034] L'extrait peptidique B est obtenu selon le procédé décrit mis en oeuvre pour obtenir
l'extrait A à la différence que l'étape de décoloration est supprimée
I.3 - Extrait C
[0035] L'extrait peptidique de lupin C est obtenu selon le procédé décrit mis en oeuvre
pour obtenir l'extrait A à la différence que les étapes de purification d'ultrafiltration
et de décoloration sont supprimées.
II - Analyse de l'extrait peptidique A
[0036] L'extrait sec est ensuite analysé.
Présentation :
- Aspect : poudre homogène non hygroscopique
- Couleur : blanc cassé
- Quantité: 5 g
- Composition chimique :
- Teneur en sucres totaux (dosage à l'anthrone) : < 1 %
- Teneur en chlorures (Kit SIGMA réf : 955-30) : 6 %
- Teneur en eau (100 °C, 4 h) : 8 % maximum
- Teneur en peptides : 85 %
- caractérisation
- pH (solution à 20 g/l): 7,06
- Solubilité (eau osmosée) : >100 g/l

III - Activité anti-collagénase et anti-gélatinolytique des peptides de lupin - extrait
A-in vitro
[0037] L'activité anti-collagénase a été mesurée
in vitro dans un modèle biochimique de type screening reposant sur l'utilisation d'une collagènase
purifiée et du substrat de cette dernière, la gélatine conjuguée à la fluorescéine
(kit EnzChek™ Gelatinase/Collagenase, MOLECULAR PROBES). La collagénase purifiée à
partir de
Clostridium histolyticum était fournie dans le kit EnzChek™ Gelatinase/Collagenase (MOLECULAR PROBES). Cette
enzyme a une double fonctionnalité sur le collagène IV (membrane basale épiderme/
derme) et gélatine.
[0038] La DQ-gélatine purifiée à partir de peau porcine et conjuguée à la fluorescéine était
fournie dans le kit EnzChek™ Gelatinase/Collagenase (MOLECULAR PROBES).
[0039] Le tampon de la réaction, constitué de 0,05 M de Tris-HCl, de 0,15 M NaCl, de 5 mM
de CaCl
2, de 0,2 mM d'azide de sodium (pH 7,6), était fourni dans le kit EnzChek™ Gelatinase/Collagenase
(MOLECULAR PROBES).
[0040] L'extrait peptidique a été solubilisé dans le tampon de la réaction. Il a été testé
à 0,004 ; 0,02 ; 0,04 ; 0,2 et 0,4 % (p/v).
[0041] Les dilutions des extraits à l'essai ont été incubées avec la DQ-gélatine à 1 mg/ml
et la collagénase à 0,2 UI/ml pendant 1 heure, 2 heures et 24 heures à température
ambiante.
[0042] Un témoin, correspondant au mélange « collagénase + DQ-gélatine », a été incubé en
parallèle.
[0043] Pour chaque condition expérimentale, des échantillons, appelés par la suite « échantillons
sans enzyme », ont été incubés en présence de DQ-gélatine et en absence de collagénase.
[0044] Chaque condition expérimentale a été réalisée en triplicate.
[0045] Après 1 heure, 2 heures et 24 heures, le signal correspondant à la dégradation de
la DQ-gélatine a été mesurée en fluorimétrie (Excitation : 485 nm et émission : 595
nm). Pour chaque échantillon, la valeur obtenue pour les « échantillons sans enzyme
» a été soustraite.
[0046] Les résultats ont été exprimés en unité de fluorescence par échantillon et en pourcentage
de variation par rapport au groupe témoin.
[0047] Les groupes de données (groupe témoin et groupes traités) ont été comparés par une
analyse de la variance à un facteur (ANOVA 1, p<0,05), suivie par un test de Dunnett.
L'effet des extraits a ainsi été comparé à celui obtenu dans le groupe témoin.
[0048] L'extrait peptidique testé de 0,004 à 0,2% (p/v), présentait une activité anti-collagénase
et anti-gélatinolytique dose-dépendante. L'effet était maximum au temps 24 heures
comme indiqué dans le tableau 2 ci-dessous.
Tableau 2
| Temps d'incubation = 1 heure |
| Témoin |
0,004 |
0,02 |
0,04 |
0,2 |
0,4 |
| 16237 |
14161 |
11890 |
11205 |
11249 |
9434 |
| 14329 |
13561 |
11161 |
10863 |
9840 |
7544 |
| 15636 |
13965 |
11757 |
11344 |
11387 |
8878 |
| 15401 |
13896* |
11603* |
11137* |
10825* |
8619* |
| +/- |
+/- |
+/- |
+/- |
+/- |
+/- |
| 976 |
306 |
388 |
248 |
856 |
971 |
| 100 % |
89 |
75 |
73 |
73 |
57 |
| Temps d'incubation = 2 heures |
| Témoin |
0,004 |
0,02 |
0,04 |
0,2 |
0,4 |
| 24776 |
20526 |
13689 |
11000 |
7617 |
6853 |
| 22516 |
19597 |
6710 |
10406 |
6072 |
4933 |
| 23779 |
20144 |
13148 |
11349 |
7824 |
6467 |
| 23690 |
20089* |
11182* |
10918* |
7171* |
6084* |
| +/- |
+/- |
+/- |
+/- |
+/- |
+/- |
| 1133 |
467 |
3883 |
477 |
957 |
1016 |
| 100 % |
85 |
55 |
48 |
33 |
27 |
| Temps d'incubation = 24 heures |
| Témoin |
0,004 |
0,02 |
0,04 |
0,2 |
0,4 |
| 31653 |
12655 |
2583 |
2378 |
524 |
1154 |
| 29536 |
11531 |
1487 |
1442 |
484 |
467 |
| 29745 |
13008 |
2657 |
2713 |
693 |
927 |
| 30311 |
12398* |
2242* |
2178* |
567* |
849* |
| +/- |
+/- |
+/- |
+/- |
+/- |
+/- |
| 1167 |
771 |
655 |
659 |
111 |
350 |
| 100 % |
41 |
7 |
7 |
2 |
3 |
Les résultats sont exprimés en unité de fluorescence/échantillon.
En gras : moyenne et écart type |
| * : moyenne significativement différente du groupe témoin (p<0,05). |
[0049] En conclusion, dans les conditions expérimentales retenues, l'extrait protéique testé
entre 0,004 et 0,4 % (p/v), présentait une activité anti-gélatinase/collagénase dose-dépendante.
On note notamment un excellent rapport effet/dose/temps des peptides de lupin par
rapport à la collagénase aspécifique : à 24 heures par exemple, 0,04 % inhibe 93 %
de l'activité gélatinolytique de la collagénase de Clostridium, à 2 heures : 52 %.
[0050] D'autres essais avec le même extrait peptidique ont été effectués à des concentrations
de 0,01 ; 0,05 ; 0,1 ; 0,5 et 1 % (p/v) et les résultats sont indiqués au tableau
3 ci-dessous ainsi que sur la figure 1 annexée. Cette figure représente la cinétique
d'inhibition de la collagénase aspécifique - Influence de la concentration en extrait
peptidique. En ordonnée activité de la gélatinolytique (%), en abscisse temps d'incubation
(h).
Tableau 3
| Temps d'incubation (h) |
Concentration en extrait A (% p/v)/Activité gélatinolytique en (%) |
| |
0,01 |
0,05 |
0,1 |
0,5 |
1 |
| 1 |
89 |
75 |
73 |
73 |
57 |
| 2 |
85 |
55 |
48 |
33 |
27 |
| 4 |
79 |
38 |
29 |
14 |
12 |
| 6 |
69 |
27 |
21 |
8 |
9 |
| 24 |
41 |
7 |
7 |
2 |
3 |
[0051] Dans les conditions expérimentales retenues, l'extrait peptidique testé entre 0,01
et 0,5 % (p/v), présente une activité anti-gélatinase et collagénase dose dépendante
et temps dépendante.
[0052] Dans tous les essais, la 1,10-phénanthroline, inhibiteur aspécifique, a été utilisée
comme produit anti MMP de référence. Les résultats obtenus étaient conformes à ceux
qui étaient attendus et validaient les essais.
IV - Activité anti-collagénase spécifique des peptides de lupin - extrait A- sur modèle
organotypique humain
[0053] Le vieillissement cutané se caractérise, entre autre, par une modification des propriétés
mécaniques cutanées de la peau, consécutive à une dégradation des fibres collagéniques
du derme et d'autres macroprotéines. Cette dégradation met en jeu des collagénases
endogènes (Grymes, R.A., Kronberger A. and Bauer E.A. -
Collagenases in disease - In
«Connective Tissue Diseases of the skin » Eds. Lapière C.M. and Krieg T., 1993, 69-85). G. Fischer et J. Voorhees
« Pathiophysiology of premature skin aging induced by ultraviolet light » et
« Molecular mechanisms of photoaging and its prevention by retinoic acid : ultraviolet
irradiation induces MAP kinase signal transduction cascades that induce A-1-regulated
matrix metalloproteinases that degrade human skin in vivo»).
[0054] Pour lutter contre les signes de vieillissement de la peau, des produits présentant
une activité anti-collagénase sont envisageables.
[0055] L'activité anti-collagénase d'un produit à l'essai peut être étudiée
in vitro dans un modèle organotypique de peau humaine. Le principe du test est le suivant
: une application de collagénase purifiée sur la coupe s'accompagne d'une dégradation
des fibres de collagène endogènes. Les fibres de collagène sont ensuite colorées par
le trichrome de Masson. La digestion des fibres de collagène endogènes par la collagénase
purifiée est évaluée qualitativement par observation morphologique et quantitativement
par analyse d'images. Un produit présentant une activité anti-collagénase préservera
partiellement ou totalement l'intégrité des fibres de collagène mises en présence
de l'enzyme.
[0056] Les produits à l'essai ont été conservés à +4 °C jusqu'au moment de leur utilisation.
[0057] Trois dilutions ont été testées : 0,01 ; 0,1 et 1 % (v/v).
[0058] Le phosphoramidon, utilisé comme produit de référence, provenait de chez SIGMA.
[0059] La collagénase purifiée (type III, fraction A) provenait de chez SIGMA.
[0060] Le milieu d'incubation des coupes de peau humaine, appelé par la suite "véhicule",
était le tampon Tris HCI 0,15 M, pH 7,5 contenant 0,01 M de chlorure de calcium.
[0061] Les réactifs, de qualité analytique, provenaient de chez CARLO ERBA, GIBCO ou SIGMA,
sauf indication contraire.
[0062] Les coupes de peau ont été réalisées à partir d'un déchet opératoire recueilli après
une plastie abdominale. Le sujet était une femme de 30 ans. Des explants de peau de
4 cm de diamètre ont été réalisés. Ils ont été déposés sur un support de liège et
congelés à -80°C. Des coupes transverses de 6 µm d'épaisseur ont été réalisées avec
un cryomicrotome. Elles ont été fixées sur des lames de verre et maintenues hydratées
avec le véhicule pendant l'essai.
[0063] Les échantillons à l'essai ont tous été repris dans de l'éthanol avant d'être dilués
dans le tampon d'essai.
■ La concentration finale en éthanol a été maintenue constante et égale à 0,1 % (v/v)
dans les deux plus faibles dilutions de l'extrait peptidique (0,01 et 0,1 % v/v) ;
■ elle a été maintenue constante et égale à 1 % (v/v) dans la dilution la plus forte
(1 %, v/v).
■ Des "témoins éthanol" à 0,1 et 1 % (v/v) ont été réalisés.
■ Le phosphoramidon a été repris directement dans le véhicule.
L'extrait peptidique a été testé à 0,01 ; 0,1 et 1 % (p/v).
Le phosphoramidon a été testé à 10-3 M.
On avait donc les échantillons suivants :
Extrait : tampon ; éthanol (0,1 %, v/v ou 1 %, v/v) ; enzyme extrait (0,01 ; 0,1 et
1 %, p/v) ;
Témoin enzyme : tampon ; éthanol (0,1 %, v/v) ; enzyme ;
Témoin éthanol (sans enzyme) : tampon ; éthanol (0,1 % ou 1 %, v/v) ;
Produit réf: tampon ; éthanol ; enzyme ; phosphoramidon 10-3 M.
[0064] Les dilutions des produits à l'essai, de l'éthanol et du produit de référence ont
été déposées sur les coupes de peau, à raison de 100 µl par coupe, et pré-incubées
pendant dix minutes à 37 °C. Des bandes de papier filtre (0,16 cm
2 de surface) imbibées de véhicule seul (témoin sans enzyme) ou contenant de la collagénase
à 50 unités internationales (UI)/ml (témoin enzyme) ont ensuite été déposées sur les
coupes. Les lames ont été placées en chambre humide à 37°C pendant trois heures.
[0065] Après l'incubation, les coupes ont été rincées avec le milieu d'incubation et colorées
par le trichrome de Masson. L'activité de l'enzyme en absence et en présence de l'extrait,
de l'éthanol ou du produit de référence a été évaluée par observation microscopique
et notée selon le barème suivant :
0 : digestion enzymatique nulle
+ : digestion enzymatique faible
++ : digestion enzymatique moyenne
+++ : digestion enzymatique forte.
[0066] Des photographies des coupes ont été réalisées.
[0067] L'activité de la collagénase en absence et en présence des produits à l'essai, de
l'éthanol ou du produit de référence a été évaluée par analyse d'images. L'image des
coupes colorées a été digitalisée sur un écran vidéo; le logiciel d'analyse d'image
(IMAGENIA 2000, BIOCOM®) a permis de calculer la surface occupée par les fibres de
collagène intactes. Les résultats ont été exprimés en pourcentage de fibres de collagène
intactes par champ optique.
[0068] Le pourcentage d'inhibition de l'activité collagénase des extraits à différentes
concentrations de l'éthanol et du produit de référence a été calculé à l'aide des
formules suivantes :
[0069] Pour le produit de référence (directement repris dans le véhicule), le pourcentage
d'inhibition est calculé par la formule suivante :

[0070] Pour les extraits dilués dans le véhicule contenant 0,1 % (v/v) d'éthanol), le pourcentage
d'inhibition est calculé par la formule suivante :

[0071] Pour les extraits dilués dans le véhicule contenant 1 % (v/v) d'éthanol), le pourcentage
d'inhibition est calculé par la formule suivante :

[0072] L'activité anti-collagénase de l'extrait à différentes concentrations a été étudiée
dans un modèle organotypique de peau humaine.
[0073] En absence de collagénase (témoin véhicule), les fibres de collagène étaient intactes.
En présence de collagénase (témoin enzyme), les fibres de collagène étaient presque
totalement dégradées). Ce résultat était attendu et validait l'essai.
[0074] Le phosphoramidon à 10
-3 M, utilisé comme produit de référence, inhibait de 16% l'activité de la collagénase.
Ce résultat était attendu et finissait de valider l'essai.
[0075] L'éthanol, utilisé comme diluant intermédiaire des produits à l'essai a été testé
à 0,1 et 1 % (v/v). Il n'avait pas d'effet sur la dégradation des fibres de collagène
par la collagénase.
[0076] L'extrait peptidique testé à 0,01; 0,1 et 1 % (p/v) inhibait l'activité de la collagénase
de 2, 24 et 65 % respectivement L'observation morphologique aboutissait au même résultat.
[0077] En conclusion, dans les conditions expérimentales retenues, l'extrait peptidique
A présentait à des concentrations faibles une activité anti-collagénase importante.
[0078] Les résultants d'inhibition de l'extrait peptidique, de l'éthanol et du phosphoramidon
sur la digestion des fibres de collagène dermiques par la collagénase sont réunis
dans le tableau ci-dessous :
Tableau 4
| Condition expérimentale |
Concentration |
Digestion enzymatique (observation morphologique) |
% d'inhibition de l'activité collagénase (analyse d'image) |
| Témoin véhicule |
- |
0 |
- |
| Témoin enzyme |
50 UI/ml |
+++ |
0 |
| Phosphoramidon (M) |
10-3 |
+ |
+ |
| Ethanol |
0,1 |
+++ |
0 |
| (%, v/v) |
1 |
+++ |
0 |
| Extrait peptidique |
0,01 |
+++ |
2 |
| (%, v/v) |
0,1 |
++ |
24 |
| |
1 |
+ |
65 |
| 0 : digestion enzymatique nulle |
| + : digestion enzymatique faible |
| ++ : digestion enzymatique moyenne |
| +++ : digestion enzymatique forte |
V - Activité anti-métalloprotéase MMP-2 et MMP-9 des peptides de lupin - extraits A, B
et C
[0079] La MMP-2 ou gélatinase A et la MMP-9 ou gélatinase B sont des métalloprotéases qui
dégradent des composants spécifiques de la matrice extracellulaire: la MMP-2 dégrade
la gélatine (=collagène dénaturé), les collagènes I, IV, VII et XI, la fibronectine,
la laminine et l'élastine ; la MMP-9 dégrade la gélatine, les collagènes IV, V et
XIV et l'élastine. Elles jouent un rôle important dans le « photo-aging » et dans
la prolifération des cellules endothéliales.
[0080] L'activité anti-MMP-2 et anti-MMP-9 des produits à l'essai a été mesurée in
vitro dans un modèle biochimique de type screening reposant sur l'utilisation d'une MMP-2
humaine purifiée et d'une MMP-9 humaine recombinante et du substrat de ces dernières,
la gélatine conjuguée à la fluorescéine (kit EnzChek™ Gelatinase/Collagenase, MOLECULAR
PROBES).
[0081] La MMP-2 purifiée à partir de fibrosarcome humain provenait de chez BOEHRINGER MANNHEIM.
[0082] La MMP-9 humaine recombinante provenait de chez R&D SYSTEMS.
[0083] La DQ-gélatine purifiée à partir de peau porcine et conjuguée à la fluorescéine était
fournie dans le kit EnzChek™ Gelatinase/Collagenase (MOLECULAR PROBES).
[0084] Le tampon de réaction pour l'étude de l'activité de la MMP-2 (TpR1) était constitué
de 50 mM de Tris-HCI, de 0,05% (p/v) de Triton X100 et de 5 mM de CaCl
2, pH 7,5.
[0085] Le tampon de réaction pour l'étude de l'activité de la MMP-9 (TpR2) était constitué
de 50 mM de Tris-HCI, de 0,05% (p/v) de Brij 35 et de 5 mM de CaCl
2, pH 7,4.
Préparation des produits à l'essai et du produit de référence
[0086] La 1,10-phénanthroline a été solubilisée dans les tampons de réaction TpR1 et TpR2.
Elle a été testée à 8 et 80 µg/ml.
[0087] Les extraits peptidiques A, B et C ont été solubilisés dans les tampons de réaction
TpR1 et TpR2. Ils ont été testés à 0,01; 0,1 et 1% (p/v).
MMP-2
[0088] Avant son utilisation, la MMP-2 a été activée par une incubation de 30 minutes à
37°C en présence de APMA dilué à 2,5 mM dans le tampon TpR1.
[0089] Les dilutions des produits à l'essai ou du produit de référence ont été incubées
avec la DQ-gélatine, diluée à 25 µg/ml, et la MMP-2 activée, diluée à 1,25 µg/ml,
pendant 24 heures à 37°C.
[0090] Un témoin, correspondant au mélange « MMP-2 + DQ-gélatine », a été incubé en parallèle.
[0091] Pour chaque condition expérimentale, des échantillons, appelés par la suite « échantillons
sans enzyme », ont été incubés en présence de DQ-gélatine et en absence de MMP-2 activée.
Ces échantillons permettaient de mesurer l'interférence des produits à l'essai avec
la méthode d'évaluation des effets (fluorimétrie).
[0092] Chaque condition expérimentale a été réalisée en triplicate.
MMP-9
[0093] Les dilutions des produits à l'essai ou du produit de référence ont été incubées
avec la DQ-gélatine, diluée à 25 µ g/ml, et la MMP-9, diluée à 0,25 µg/ml, pendant
24 heures à 37°C.
[0094] Un témoin, correspondant au mélange « MMP-9 + DQ-gélatin », a été incubé en parallèle.
[0095] Pour chaque condition expérimentale, des échantillons, appelés par la suite « échantillons
sans enzyme », ont été incubés en présence de DQ-gélatine et en absence de MMP-9.
Ces échantillons permettaient de mesurer l'interférence des produits à l'essai avec
la méthode d'évaluation des effets (fluorimétrie).
[0096] Chaque condition expérimentale a été réalisée en triplicate.
[0097] Après 24 heures, le signal correspondant à la dégradation de la DQ-gélatine a été
mesurée en fluorimétrie (Excitation : 485 nm et émission : 595 nm). Pour chaque échantillon,
la valeur obtenue pour les échantillons sans enzyme' a été soustraite.
[0098] Les résultats ont été exprimés en unité de fluorescence par échantillon et en pourcentage
de variation par rapport au groupe témoin.
[0099] Les groupes de données (groupe témoin et groupes traités) ont été comparés par une
analyse de la variance à un facteur (ANOVA 1, p<0,05), suivie par un test de Dunnett.
[0100] Les résultats sont indiqués ci-dessous :
V.1 - Activité anti-MMP-2
[0101]
| Extrait peptidique |
Témoin |
Activité MMP-2 (en %) (1) / Concentration (% v/v) en solution d'extrait peptidique
à 10 % en poids |
| |
|
0,01 |
0,1 |
1 |
| C |
100 |
119 |
111 |
43 |
| A |
100 |
152 |
151 |
68 |
| B |
100 |
110 |
98 |
77 |
| (1)Activité exprimée par rapport au groupe témoin en absence d'inhibiteur de la MMP-2 |
Conclusion
[0102]
- La solution à 10 % en poids d'extrait de lupin C, testée à 0,01 et 0,1 % (v/v) ne
présente pas d'activité anti-MMP-2. Testée à 1 % (v/v), elle inhibe la MMP-2 de 57%.
- La solution à 10 % en poids d'extrait de lupin A, testée à 0,01 à 0,1 % (v/v) ne présente
pas d'activité anti-MMP-2. Testée à 1 % (v/v), elle inhibe la MMP-2 de 32 %.
- la solution à 10 % en poids d'extrait B, testée à 1 % inhibe à 23 % MMP-2.
- La phénanthroline, testée à 8 et 80 µg/ml, inhibe de 32 et 73 % respectivement l'activité
de la MMP-2. Ce résultat qui était attendu valide l'essai.
V.2 - Activité anti-MMP-9
[0103]
| Extrait peptidique |
Témoin |
Activité MMP-9 (en %) (1) / Concentration (% v/v) en solution d'extrait peptidique
à 10 % en poids |
| |
|
0,01 |
0,1 |
1 |
| A |
100 |
143 |
143 |
61 |
| B |
100 |
146 |
129 |
27 |
| (1)Activité exprimée par rapport au groupe témoin en absence d'inhibiteur de la MMP-9 |
Conclusion:
[0104]
- La solution à 10 % en poids d'extrait de lupin A, testée à 0.01 et 0.1 % (v/v) ne
présente pas d'activité anti-MMP-9. Testée à 1 % (v/v), elle inhibe la MMP-9 de 39
%.
- La solution à 10 % en poids d'extrait de lupin B, testée à 0.01; 0.1 % (v/v) ne présente
pas d'activité anti-MMP-9. Testée à 1 % (v/v), elle inhibe la MMP-9 de 73%.
La phénanthroline, testée à 8 et 80 µg/ml, inhibe de 80 et 76 % respectivement l'activité
de la MMP-9. Ce résultat qui était attendu valide l'essai.
VI - Evaluation de l'effet des peptides de lupin sur la quantité de MMP-1-9 et -3 dans
des fibroblastes humains irradiés par des rayons UVA.
[0105] L'étude a été réalisée sur des fibroblastes dermiques humains en culture monocouche.
Les cellules ont été pré-incubées pendant 1 heure à 37°C en présence des produits
de référence et du produit à l'essai. Puis, les cellules ont été irradiées par une
dose unique de 10 J/cm
2 en UVA, en présence du produit à tester et des produits de référence.
[0106] Immédiatement après l'irradiation, les cellules ont été incubées pendant 48h à 37°C,
toujours en présence du produit à tester et des produits de référence.
[0107] Le dosage des différentes MMPs est effectué dans les milieux de culture au moyen
de kits ELISA spécifiques (Amersham).
Produits de référence et produit à l'essai.
[0108] La 1,10-phenantroline, testée à 80 µg/ml, inhibiteur non spécifique des MMPs, a été
utilisé comme produit de référence.
[0109] Le mélange acide rétinoïque 10 µM + EGF 10 ng/ml a été utilisé pour ses capacités
d'induction du TIMP1 (TIMP1,
Tissue Inhibitor of MMP, inhibiteur physiologique des MMPs).
[0110] Une solution mère contenant 10% (p/v) de peptides de lupin a été préparée dans de
l'eau désionisée. A partir de cette solution, des dilutions ont été réalisées dans
le milieu de culture des fibroblastes. L'extrait peptidique de lupin a été testé à
0,5 ; 1 et 2% (v/v).
[0111] Des cultures témoins, irradiées et non irradiées, ont été incubées en parallèle,
en l'absence des produits de référence et du produit à l'essai.
Traitement des données.
[0112] Les groupes de données (groupe témoin et groupes traités) ont été comparés par une
analyse de variance à un facteur (ANOVA 1, p<0,05), suivie par un test de Dunnett.
Les effets des produits de référence et du produit à l'essai ont ainsi été comparés
à celui obtenu dans le groupe « cellules irradiées ».
Résultats.
[0113] Ils sont rassemblés dans le tableau ci-dessous et les résultats sont exprimés en
% par rapport au groupe « cellules irradiées ».

Conclusions.
[0114] La 1,10-phenantroline, testée à 80 µg/ml, inhibait de 99% la sécrétion de MMP-1,
de 92% la sécrétion de MMP-9 et de 97% la sécrétion de MMP-3 par les fibroblastes
irradiés.
[0115] Le mélange acide rétinoïque 10 µM + EGF 10 ng/ml inhibait de 58% la sécrétion de
MMP-1, de 67% la sécrétion de MMP-9 et de 44% la sécrétion de MMP-3 par les fibroblastes
irradiés.
[0116] Ces résultats étaient attendus et validaient la réactivité du système d'essai.
[0117] L'irradiation à la dose de 10 J/cm
2 augmentait d'un facteur 4,10; 2,42 et 1 ,13 les quantités respectives de MMP-1, -9
et -3 sécrétées par les fibroblastes. Ces résultats étaient attendus et validaient
le système d'essai en ce qui concerne l'induction des MMP-1, -9 et -3 par les UVA.
[0118] L'extrait peptidique de lupin, testé à 0,5, 1 et 2% (v/v), diminuait respectivement
de 96, 97 et 97% la quantité de MMP-1 sécrétée par les fibroblastes (p<0,05).
[0119] L'extrait peptidique de lupin, testé à 0,5, 1 et 2%, diminuait de 83, 98 et 100%
respectivement la quantité de MMP-9 sécrétée par les fibroblastes (p<0,05).
[0120] L'extrait peptidique de lupin, testé à 0,5, 1 et 2%, diminuait de 97, 100 et 98%
respectivement la quantité de MMP-3 sécrétée par les fibroblastes (p<0,05).
[0121] Ainsi, dans les conditions expérimentales retenues, l'extrait peptidique de lupin
présente des propriétés inhibitrices importantes vis-à-vis de la production des MMP-1,
-9 et -3 par des fibroblastes dermiques humains irradiés aux UVA.
VII - Exemples de formule pour un usage topique:
[0122] Les pourcentages sont exprimés en poids total de la composition. L'extrait peptidique
de lupin est utilisé sous forme d'une solution aqueuse à 10% en poids selon l'invention
ou d'une poudre lyophilisée appelée extrait peptidique forme poudre.
1. Crème anti-rougeurs pour peaux normales
[0123]
| Eau q.s.p. |
100,000 |
| Tétraoctanoate de pentaérythrityle |
15,0 à 5,0 |
| Stéarate de glycéryle |
10,0 à 2,0 |
| Néopentanoate d'isodécyle |
10,0 à 2,0 |
| Propylène glycol |
1,0 à 3,0 |
| Dextrine |
1,0 à 3,0 |
| Cyclométhicone |
1,0 à 3,0 |
| Extrait de soja (glycine de soja) |
0,1 à 10,0 |
| Extrait peptidique de lupin (solution aqueuse à 10%) |
0,1 à 10,0 |
| Dioxyde de titane |
1,0 à 3,0 |
| Cire de Candelilla (Euphorbia Cerifora) |
1,0 à 3,0 |
| Amidon de riz (Oriza Sativa) |
1,0 à 3,0 |
| Huile insaponifiable de soja (Glycine Soja) |
0,01 à 10,0 |
| Triglycérides caprylique/caprique |
0,5 à 5,0 |
| PEG-100 Stéarate |
0,5 à 5,0 |
| Extrait de Sophora Japonica |
0,1 à 10,00 |
| Acide stéarique |
0,5 à 1,0 |
| Tocophéryl Acétate |
0,1 à 1,0 |
| Phénoxyéthanol |
0,1 à 1,0 |
| CI 77891 |
0,1 à 1,0 |
| Gomme de Xanthane |
0,1 à 0,5 |
| Diméthiconol |
0,1 à 0,5 |
| Polyacrylamide |
0,1 à 0,5 |
| Mica |
0,1 à 0,5 |
| Cétéareth-20 |
0,1 à 0,5 |
| Chlorphénésine |
0,1 à 0,5 |
| Carbomère |
0,1 à 0,5 |
| Octyl palmitate |
0,1 à 0,5 |
| Trométhamine |
0,1 à 0,5 |
| Cire d'abeilles (Beeswax) |
0,1 à 0,5 |
| C13-14 Isoparaffine |
0,1 à 0,5 |
| DEA Cétyl Phosphate |
0,1 à 0,5 |
| Cétyl Alcool |
0,1 à 0,5 |
| Glucose |
0,1 à 0,5 |
| Fragrance |
0,1 à 0,5 |
| Dissodium EDTA |
0,1 à 0,5 |
2. Crème préventive anti-âge
[0124]
| |
% |
| Eau q.s.p. |
100,00000 |
| Tétraoctanoate de pentaérythrityle |
3,0 à 15,0 |
| Néopentanoate d'isodécyle |
3,0 à 15,0 |
| Squalane |
1,0 à 10,0 |
| Dextrine |
1,0 à 10,0 |
| Cyclométhicone |
1,0 à 10,0 |
| Alcool cétéaryle |
1,0 à 10,0 |
| Extrait peptidique de lupin (solution aqueuse à 10%) |
0,1 à 10,0 |
| Ascorbyle glucoside |
0,1 à 10,0 |
| Glycérine |
1,0 à 10,0 |
| Laureth-23 |
1,0 à 10,0 |
| Myristyl myristate |
1,0 à 10,0 |
| Cyclopentasiloxane |
1,0 à 10,0 |
| Nylon-6 |
1,0 à 10,0 |
| Avocado Furane |
0,01 à 10,0 |
| Phénoxyéthanol |
0,1 à 1,0 |
| Cétéaryle Glucoside |
0,1 à 1,0 |
| Fragrance |
0,1 à 1,0 |
| Cire d'abeilles (Beeswax) |
0,1 à 1,0 |
| Méthylparabène |
0,1 à 0,5 |
| Citrate de sodium |
0,1 à 0,5 |
| Diméthiconol |
0,1 à 0,5 |
| Stéarate de glycéryle |
0,1 à 0,5 |
| Disodium EDTA |
0,1 à 0,5 |
| Propylparabène |
0,1 à 0,5 |
| Hydroxyde de sodium |
0,1 à 0,5 |
| Acrylates/C10-30 alkyle acrylates crosspolymères |
0,1 à 0,5 |
| Gomme de Xanthane |
0,1 à 0,5 |
| Glucose |
0,1 à 0,5 |
3. Crème anti-âge pour peaux matures
[0125]
| Eau q.s.p |
100,0000 |
| Tétraoctanoate de pentraérythrityle |
1,0 à 10,0 |
| Neopentanoate d'isodécyle |
1,0 à 10,0 |
| Glycérides de coco hydrogénés |
1,0 à 10,0 |
| Huile de graine de Simmondsia Chinensis (Jojoba) |
1,0 à 10,0 |
| Squalane |
1,0 à 10,0 |
| Glycérine |
1,0 à 10,0 |
| Cyclométhicone |
1,0 à 5,0 |
| Cétéaryle Alcool |
1,0 à 5,0 |
| Myristyl Myristate |
1,0 à 5,0 |
| Laureth-23 |
1,0 à 5,0 |
| Silice |
1,0 à 5,0 |
| Extrait peptidique de lupin (solution aqueuse à 10%) |
0,1 à 10,0 |
| Gomme de sclérotium |
0,1 à 1,0 |
| Avocado Furane |
0,01 à 10,0 |
| Acide salicylique |
0,1 à 10,0 |
| Cire d'abeilles (Beeswax) |
0,1 à 10,0 |
| Polyacrylamide |
0,1 à 1,0 |
| Phénoxyéthanol |
0,1 à 1,0 |
| Glycéryl Stéarate |
0,1 à 1,0 |
| Rétinol Palmitate |
0,01 à 5,0 |
| Cétéaryl Glucoside |
0,01 à 5,0 |
| Nylon-6 |
0,01 à 5,0 |
| Dioxyde de titane |
0,01 à 5,0 |
| Fragrance |
0,1 à 5,0 |
| Acétate de tocophéryl |
0,1 à 5,0 |
| Sorbate de potassium |
0,1 à 5,0 |
| Méthylparabène |
0,1 à 5,0 |
| C13-14 Isoparaffine |
0,1 à 5,0 |
| CI 77891 |
0,1 à 5,0 |
| Diméthiconol |
0,1 à 5,0 |
| Propylparabène |
0,1 à 5,0 |
| Hydroxyde de sodium |
0,1 à 5,0 |
| Laureth-7 |
0,1 à 5,0 |
| Cétéaryl Alcool |
0,1 à 5,0 |
| Cétyl Palmitate |
0,1 à 5,0 |
| Cocoglycérides |
0,1 à 5,0 |
| Disodium EDTA |
0,1 à 0,5 |
| CI 77491 |
0,1 à 0,5 |
| Acide citrique |
0,1 à 0,5 |
4. Crème anti-rougeurs pour peaux sèches à très sèches
[0126]
| Eau q.s.p. |
100,00000 |
| Pétrolatum |
1,0 à 10,0 |
| Glycérides de coco hydrogénés |
1,0 à 10,0 |
| Néopentanoate d'isodécyle |
1,0 à 10,0 |
| Huile de Simmondsia Chinensis (Jojoba) |
1,0 à 2,0 |
| Butylène Glycol |
1,0 à 5,0 |
| Cétéaryl Alcool |
1,0 à 5,0 |
| Glycérine |
1,0 à 10,0 |
| Squalane |
1,0 à 10,0 |
| Extrait peptidique de lupin (solution aqueuse à 10%) |
0,1 à 10,0 |
| Laureth-23 |
1,0 à 10,0 |
| Dioxyde de titane |
1,0 à 10,0 |
| Huile insaponifiable de glycine Soja (Soybean) |
0,1 à 10,0 |
| Triglycérides caprylique/caprique |
1,0 à 5,0 |
| Phénoxyéthanol |
0,1 à 1,0 |
| Cétéaryl Glucoside |
0,1 à 1,0 |
| Extrait de graines de soja |
0,1 à 10,0 |
| Fragrance |
0,1 à 1,0 |
| Sophora Japonica |
0,1 à 10,0 |
| Acétate de tocophéryle |
0,1 à 1,0 |
| Cire de Candelilla |
0,1 à 1,0 |
| CI 77891 |
0,1 à 0,5 |
| Méthylparabène |
0,1 à 0,5 |
| Mica |
0,1 à 0,5 |
| Propylparabène |
0,1 à 0,5 |
| Ethylhéxyl palmitate |
0,1 à 0,5 |
| Chlorphénésine |
0,1 à 0,3 |
| Acrylates/C10-30 alkyl acrylates crosspolymères |
0,1 à 0,3 |
| Gomme de xanthane |
0,1 à 0,3 |
| Disodium EDTA |
0,1 à 0,3 |
| Hydroxyde de sodium |
0,1 à 0,3 |
VIII - Exemples de solutions de lavage buccal
[0127] Les pourcentages sont exprimés en poids total de la composition. L'extrait peptidique
de lupin est utilisé sous forme d'une solution aqueuse à 10% en poids selon l'invention
ou d'une poudre lyophilisée appelée extrait peptidique forme poudre.
1. Extrait peptidique de lupin solution aqueuse à 10% + antiseptique (Triclosan) +
antiplaque (Gantrez S97BF®)
[0128]
| Extrait Peptidique de Lupin |
2 |
| Alcool éthylique |
10 |
| Glycérine |
10 |
| Huile de ricin hydrogénée, Ethoxylée à 40 moles EO (Crémophor co410) |
0,5 |
| Poly(Méthyle vinyle éther/Acide Maléïque (Gantrez S97BF®) |
0,2 |
| Soude |
0,15 |
| Fluorure de sodium |
0,05 |
| Arôme Cannelle-Menthe |
0,1 |
| Triclosan |
0,03 |
| Chlorure de zinc |
0,01 |
| Saccharine sodique |
0,01 |
| Colorant C.I. 16255 (E 124) |
0,0025 |
| Eau purifiée QSP |
100 |
2. Extrait peptidique de lupin solution aqueuse à 10% + antiseptique
[0129]
| Extrait Peptidique de Lupin |
2 |
| Alcool éthylique |
10 |
| Glycérine |
10 |
| Huile de ricin hydrogénée, Ethoxylée à 40 moles EO (Crémophor co410) |
0,3 |
| Fluorure de sodium |
0,05 |
| Arôme Cannelle-Menthe |
0,1 |
| Triclosan |
0,03 |
| Chlorure de zinc |
0,01 |
| Saccharine sodique |
0,01 |
| Colorant C.I. 16255 (E 124) |
0,0025 |
| Eau purifiée QSP |
100 |
3. Extrait peptidique de lupin forme poudre + antiseptique (Chlorure de cétylpiridinium)
[0130]
| Extrait Peptidique de Lupin |
1 |
| Alcool éthylique |
10 |
| Glycérine |
8 |
| Huile de ricin hydrogénée, Ethoxylée à 40 moles EO (Crémophor co410) |
0,1 |
| Fluorure de sodium |
0,05 |
| Arôme Cannelle-Menthe |
0,1 |
| Chlorure de cetylpyridinium |
0,05 |
| Chlorure de zinc |
0,01 |
| Saccharine sodique |
0,01 |
| Colorant C.I. 16255 (E 124) |
0,0025 |
| Eau purifiée QSP |
100 |
IX - Exemples de pâtes dentifrice
[0131] Les pourcentages sont exprimés en poids total de la composition. L'extrait peptidique
de lupin est utilisé sous forme d'une solution aqueuse à 10% en poids selon l'invention
ou d'une poudre lyophilisée appelée extrait peptidique forme poudre.
1. Extrait peptidique de lupin forme poudre + fluorures
[0132]
| Extrait peptidique de Lupin |
1 |
| Monofuorophosphate de sodium |
0,75 |
| Fluorure de Sodium |
0,10 |
| Sorbitol à 70% |
35 |
| Silice synthétique à fort pouvoir abrasif |
13 |
| Silice synthétique à faible pouvoir abrasif |
5 |
| Carboxyméthylcellulose sodique |
1,6 |
| Lauryl sulfate de sodium |
1 |
| Arôme mentholé |
0,85 |
| Oxyde de titane |
0,5 |
| Lessive de soude |
0,5 |
| Cyclamate de sodium |
0,3 |
| Menthol |
0,15 |
| Saccharine sodique |
0,07 |
| Eau purifiée QSP |
100 |
2. Extrait peptidique de Lupin solution aqueuse à 10% + fluorures
[0133]
| Extrait peptidique de Lupin |
2 |
| Monofuorophosphate de sodium |
0,75 |
| Fluorure de Sodium |
0,10 |
| Sorbitol à 70% |
35 |
| Silice synthétique à fort pouvoir abrasif |
13 |
| Silice synthétique à faible pouvoir abrasif |
5 |
| Carboxyméthylcellulose sodique |
1,6 |
| Lauryl sulfate de sodium |
1 |
| Arôme mentholé |
0,85 |
| Oxyde de titane |
0,5 |
| Lessive de soude |
0,5 |
| Cyclamate de sodium |
0,3 |
| Menthol |
0,15 |
| Saccharine sodique |
0,07 |
| Eau purifiée QSP |
100 |
1. Zusammensetzung, umfassend einen peptidischen Extrakt von Lupine (Lupinus) und gegebenenfalls einen inerten Träger, für deren Verwendung als Arzneimittel.
2. Zusammensetzung nach Anspruch 1 für die Behandlung von Menschen oder von Säugetieren,
die unter einer Erkrankung leiden, die mit einer übermäßigen Zerstörung von Kollagen
oder mit einer übermäßigen Zerstörung der Stütz-Makroproteine durch Metalloproteasen
verbunden ist.
3. Zusammensetzung nach Anspruch 2 für die Behandlung von Arthrose, von parodontalen
Erkrankungen, von Schädigungen der Haut, von Entzündungskrankheiten, von Erkrankungen,
die mit einer fehlerhaften Narbenbildung verbunden sind, von Erkrankungen, die mit
einem Angriff des Zahnschmelzes verbunden sind, oder von Erkrankungen, die mit einer
tumoralen oder pathologischen Angiogenese verbunden sind.
4. Zusammensetzung nach einem der Ansprüche 1 bis 3 für eine topische äußerliche Anwendung
oder für eine orale Verabreichung.
5. Zusammensetzung nach einem der vorangegangenen Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass der peptidische Extrakt von Lupine wenigstens 50%, vorzugsweise wenigstens 70%, vorzugsweise
wenigstens 80% Peptide umfasst.
6. Zusammensetzung nach einem der vorangegangenen Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass die Peptide ein Molekulargewicht unter 10000 Dalton haben.
7. Zusammensetzung nach einem der vorangegangenen Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet, dass der peptidische Extrakt von Lupine die folgende Aminosäurezusammensetzung aufweist
(als Gewichtsprozentsatz bezogen auf das Gesamtgewicht der Aminosäuren) :
| Aminosäuren |
%/AS gesamt |
| ASP |
11,3 |
| GLU |
23,2 |
| SER |
5,1 |
| HIS |
1,7 |
| GLY |
3,4 |
| THR |
3,2 |
| ALA |
2,8 |
| ARG |
10,3 |
| TYR |
6,1 |
| CYS-CYS |
2,4 |
| VAL |
3,8 |
| MET |
0,2 |
| PHE |
7,0 |
| ILE |
3,3 |
| LEU |
7,9 |
| LYS |
3,7 |
| PRO |
4,4 |
8. Zusammensetzung nach einem der vorangegangenen Ansprüche,
dadurch gekennzeichnet, dass der peptidische Extrakt von Lupine erhalten werden kann durch ein Verfahren, welches
die folgenden Schritte umfasst:
- Herstellung eines Presskuchens von den Lipiden befreiter und zerkleinerter Lupine
oder eines (lipidhaltigen) mikronisierten Lupinenmehls;
- Extraktion der löslichen Protein- und Ose-Fraktionen oder Ausfällung der Proteine
am isoelektrischen Punkt,
- gegebenenfalls Abtrennung der Proteinfraktion,
- Hydrolyse der Proteinfraktion und gegebenenfalls Rückgewinnung, nach Filtration,
des Proteinextrakts.
9. Zusammensetzung nach einem der vorangegangenen Ansprüche, dadurch gekennzeichnet, dass der peptidische Extrakt von Lupine durch Hydrolyse der Proteinfraktion der Lupine
erhalten wird.
10. Zusammensetzung nach Anspruch 9, dadurch gekennzeichnet, dass die Hydrolyse der Proteinfraktion der Lupine eine enzymatische Hydrolyse ist.
11. Peptidischer Extrakt von Lupine, dadurch gekennzeichnet, dass er durch Hydrolyse der Proteinfraktion der Lupine erhalten wird.
12. Extrakt nach Anspruch 11, dadurch gekennzeichnet, dass die Hydrolyse der Proteinfraktion der Lupine eine enzymatische Hydrolyse ist.
13. Pharmazeutische, kosmetische oder nutrazeutische Zusammensetzung, umfassend einen
Extrakt, wie in einem der Ansprüche 11 und 12 definiert.
14. Verwendung eines peptidischen Extrakts von Lupine für die Herstellung einer pharmazeutischen,
kosmetischen oder nutrazeutischen Zusammensetzung, welche für die Behandlung von Menschen
oder von Säugetieren, welche unter einer Erkrankung oder einem Zustand leiden, die
bzw. der mit einer übermäßigen Zerstörung von Kollagen oder mit einer übermäßigen
Zerstörung der Stütz-Makroproteine durch Metalloproteasen verbunden ist, bestimmt
ist.
15. Verwendung nach Anspruch 14 für die Behandlung von Schädigungen der Haut, insbesondere
von Schädigungen, die auf die intrinsische Alterung der Haut, auf die Alterung unter
der Einwirkung der Sonnenstrahlung oder auf die schädlichen Wirkungen des Tabaks,
der Verschmutzung oder von Stress zurückzuführen sind.