La présente invention a pour objet de nouveaux amino-acides gras insaturés, ainsi que leur utilisation dermocosmétologique.

De tels amino-acides gras insaturés sont notamment décrits dans les documents suivants :

• WO 2005/068643 qui concerne la synthèse biochimique de l'acide 6-aminocaproïque utile comme intermédiaire de synthèse de l'acide 6-aminohex-2-énoïque, de l'acide 6-aminohexanoïque, du caprolactame et du nylon-6 ;
• l'article de Davies et al. (Tetrahedron : Asymmetry 2006, 17, 1793-1811) qui concerne la synthèse de β-amino-acides et qui décrit notamment le (E)-6-(N,N-di-tert-butoxy-carbonylamino)hex-2-énoate de tert-butyle comme intermédiaire de synthèse ;
• l'article de Mentink et al. (Org. Lett. 2002, 4(20), 3497-1500) qui concerne l'utilisation d'allénylméthylsilanes comme nucléophiles dans la chimie des ions N-acyliminium, ces nucléophiles ayant notamment été additionnés sur les amino-acides insaturés suivants: l'ester méthylique de l'acide 6-(2-éthoxy-5-oxo-pyrrolidin-1-yl)hex-2-énoïque et l'ester méthylique de l'acide 7-(2-éthoxy-5-oxo-pyrrolidin-1-yl)hept-2-énoïque ;
• l'article de Stammer et Webb (J. Org. Chem. 1969, 34(8), 2306-2311) qui concerne la synthèse de β-hydroxylysines utilisant notamment le chlorhydrate de l'acide 6-amino-trans-2-hexénoïque ;
• l'article de Marszak et Olomucki (Bull. Soc. Chim. Fr. 1959, 182-185) qui concerne la synthèse d'aminoacides à partir d'amines tertiaires à fonction acétylénique vrai, dont l'acide diméthylamino-8-octène-2-oïque et l'acide diméthylamino-12-dodécène-2-oïque ;
• l'article de Guindon et al. (Org. Lett. 2001, 3(15), 2293-2296) qui concerne l'addition intramoléculaire de radicaux aminyles et iminyles sur des esters α,β-insaturés, les esters éthyliques des acides 6-isopropylamino-2-méthyl-hex-2-énoïque et 6-tert-butylamino-2-méthyl-hex-2-énoïque étant notamment utilisés comme intermédiaires de synthèse des produits de départs utilisés pour réaliser cette réaction radicalaire ;
• l'article de Knouzi et al. (Tetrahedron Lett. 1987, 28(16), 1757-1760) qui concerne la synthèse de pyrrolidines et pipéridines fonctionnalisées, les esters méthyliques des acides 6-amino-2-méthyl-hex-2-énoïque, 7-amino-hept-2-énoïque, 7-amino-2-méthyl-hept-2-énoïque et 7-amino-4-méthyl-hept-2-énoïque ayant notamment été utilisés comme intermédiaires dans cette synthèse ;
• WO 91/04746 qui concerne des peptides et pseudopeptides anti-thrombotiques, l'acide 8-N-tert-butoxycarbonyl-amino-2-octénoïque et le trifluoroacétate de l'acide 8-amino-2-octénoïque ayant été utilisés comme intermédiaires de synthèse ;
• l'article de Perron et al. (Tetrahedron Lett. 2003, 44, 6553-6556) qui concerne la synthèse de dérivés de pyrrolo[1,2:1',2']azépino[5,6-b]indole, l'ester éthylique de l'acide 6-N-tert-butoxycarbonyl-amino-hex-2-énoïque ; et

Plus particulièrement, la présente invention a pour objet, à titre de médicaments, des dérivés d'amino-acides gras insaturés répondant à la formule générale (I) : ainsi que leurs sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables, dans laquelle :

• Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor ;
• R₁ représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement -CF₃ ou -CHF₂ ou bien un groupement alkyle, alkényle ou alkynyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor;
• R représente un atome d'hydrogène ou un groupement R' représentant un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, ou cycloalkyle comprenant 3 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ;
• Ra et Rb représentent indépendamment l'un de l'autre un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle ou acyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, Ra et Rb pouvant former ensemble un cycle hydrocarboné comportant de 4 à 6 atomes de carbone ; et
• n est un entier compris entre 2 et 14.

Par groupement « alkyle », on entend une chaîne hydrocarbonée saturée, linéaire ou ramifiée, comportant de préférence de 1 à 6 atomes de carbone, comme par exemple un groupement, méthyle, éthyle, isopropyle, tertio-butyle, pentyle, etc.

Par groupement « alkényle », on entend une chaîne hydrocarbonée, linéaire ou ramifiée, comportant au moins une double liaison et comportant de préférence de 2 à 6 atomes de carbone, comme par exemple un groupement éthényle, propényle, 2,4-hexadiényle, etc.

Par groupement « alkynyle », on entend une chaîne hydrocarbonée, linéaire ou ramifiée, comportant au moins une triple liaison et comportant de préférence de 2 à 6 atomes de carbone, comme par exemple un groupement éthynyle, propynyle, 2,4-hexadiynyle, etc.

Par groupement « cycloalkyle », on entend un groupement hydrocarboné cyclique saturé, comportant de préférence de 3 à 6 atomes de carbone, comme par exemple un groupement cyclopropyle, cyclohexyle, cyclopentyle, etc.

Par groupement « acyle », on entend un groupement alkyl-carbonyle, c'est-à-dire un groupe alkyle tel que défini ci-dessus lié par l'intermédiaire d'un groupe carbonyle, comme par exemple un acétyle.

Par « halogène », on entend un fluor, un brome, un iode ou un chlore.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• Rn représentent un atome d'hydrogène sur tous les carbones de la chaîne carbonée sauf sur un où Rn représente un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor ;
• R représente un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, ou cycloalkyle comprenant 3 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; R représente de préférence un atome d'hydrogène ;
• n, Ra, Rb et R₁ sont tels que définis précédemment.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• Ra et Rb représentent un atome d'hydrogène.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (1) répondent aux critères suivants :

• R représentent un atome d'hydrogène.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• Rn représentent un atome d'hydrogène.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• R₁ représente un atome d'hydrogène ou de fluor.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• n est compris entre 3 et 5.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• n est compris entre 9 et 14.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• n est égal à 3.

Les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I), tels que définis précédemment, peuvent se présenter sous forme d'isomères Z ou E, ou d'un mélange d'isomères Z et d'isomères E, en toutes quantités.

Au sens de la présente invention, les "sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables" signifie les sels formés par addition d'un acide sur le composé, qui sont non toxiques et qui possèdent l'activité pharmacologique du composé parent.

Les sels d'addition d'acides peuvent être formés, à partir d'acides inorganiques tels que l'acide chlorhydrique, l'acide bromhydrique, l'acide sulfurique, l'acide nitrique ou l'acide phosphorique, ou bien à partir d'acides organiques tels que l'acide acétique, l'acide benzènesulfonique, l'acide benzoïque, l'acide camphresulfonique, l'acide citrique, l'acide ethane-sulfonique, l'acide fumarique, l'acide glucoheptonique, l'acide gluconique, l'acide glutamique, l'acide glycolique, l'acide hydroxynaphtoïque, l'acide 2-hydroxyéthanesulfonique, l'acide lactique, l'acide maléique, l'acide malique, l'acide mandélique, l'acide méthanesulfonique, l'acide muconique, l'acide 2-naphtalènesulfonique, l'acide propionique, l'acide salicylique, l'acide succinique, l'acide dibenzol-L-tartrique, l'acide tartrique, l'acide p-toluènesulfonique, l'acide triméthylacétique ou l'acide trifluoroacétique.

Les sels pharmaceutiquement acceptables préférés sont les sels formés à partir d'acide chlorhydrique.

Les composés, objet de la présente invention, se présentent de préférence sous forme de sels de chlorhydrate.

De manière avantageuse, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de l'invention sont choisis parmi :

• le chlorhydrate de l'acide (E)-6-amino-hex-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-7-amino-hept-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-8-amino-oct-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-9-amino-non-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-10-amino-déc-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-14-amino-tétradéc-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 6-amino-2-fluoro-hex-2-énoïque sous forme d'un mélange d'isomères Z et E,
• le chlorhydrate de l'acide (Z)-6-amino-2-fluoro-hex-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-6-amino-2-fluoro-hex-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 7-amino-2-fluoro-hept-2-énoïque sous forme d'un mélange d'isomères Z et E,
• le chlorhydrate de l'acide (Z)-7-amino-2-fluoro-hept-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 9-amino-2-fluoro-non-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 10-amino-2-fluoro-déc-2-énoïque, et
• le chlorhydrate de l'acide 14-amino-2-fluoro-tétradéc-2-énoïque.

La présente invention a également pour objet les dérivés d'amino-acides gras insaturés de l'invention, à titre de composés chimiques nouveaux, répondant à la formule générale (I) suivante : ainsi que leurs sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables, dans laquelle :

• Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor ;
• R₁ représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement -CF₃ ou -CHF₂ ou bien un groupement alkyle, alkényle ou alkynyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ;
• R représente un atome d'hydrogène ou un groupement R' représentant un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, ou cycloalkyle comprenant 3 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ;
• Ra et Rb représentent indépendamment l'un de l'autre un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle ou acyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, Ra et Rb pouvant former ensemble un cycle hydrocarboné comportant de 4 à 6 atomes de carbone ; et
• n est un entier compris entre 2 et 14 ;

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• Rn représentent un atome d'hydrogène sur tous les carbones de la chaîne carbonée sauf sur un où Rn représente un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor ;
• R représente un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, ou cycloalkyle comprenant 3 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; R représente de préférence un atome d'hydrogène ;
• n, Ra, Rb et R₁ sont tels que définis précédemment.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• Ra et Rb représentent un atome d'hydrogène.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• R représentent un atome d'hydrogène.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• Rn représentent un atome d'hydrogène.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (1) répondent aux critères suivants :

• R₁ représente un atome d'hydrogène ou de fluor.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (1) répondent aux critères suivants :

• n est compris entre 3 et 5.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (1) répondent aux critères suivants :

• n est compris entre 9 et 14.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) répondent aux critères suivants :

• n est égal à 3.

Les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I), tels que définis précédemment, peuvent se présenter sous forme d'isomères Z ou E, ou d'un mélange d'isomères Z et d'isomères E, en toutes quantités.

Au sens de la présente invention, les "sels d'addition d'acides pharmaceutiquement acceptables" signifie les sels formés par addition d'un acide sur le composé, qui sont non toxiques et qui possèdent l'activité pharmacologique du composé parent.

Les sels d'addition d'acides peuvent être formés, à partir d'acides inorganiques tels que l'acide chlorhydrique, l'acide bromhydrique, l'acide sulfurique, l'acide nitrique ou l'acide phosphorique, ou bien à partir d'acides organiques tels que l'acide acétique, l'acide benzènesulfonique, l'acide benzoïque, l'acide camphresulfonique, l'acide citrique, l'acide ethane-sulfonique, l'acide fumarique, l'acide glucoheptonique, l'acide gluconique, l'acide glutamique, l'acide glycolique, l'acide hydroxynaphtoïque, l'acide 2-hydroxyéthanesulfonique, l'acide lactique, l'acide maléique, l'acide malique, l'acide mandélique, l'acide méthanesulfonique, l'acide muconique, l'acide 2-naphtalènesulfonique, l'acide propionique, l'acide salicylique, l'acide succinique, l'acide dibenzol-L-tartrique, l'acide tartrique, l'acide p-toluènesulfonique, l'acide triméthylacétique ou l'acide trifluoroacétique.

Les sels pharmaceutiquement acceptables préférés sont les sels formés à partir d'acide chlorhydrique.

Les composés, objet de la présente invention, se présentent de préférence sous forme de sels de chlorhydrate.

De manière avantageuse, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de l'invention sont choisis parmi :

• le chlorhydrate de l'acide (E)-6-amino-hex-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-7-amino-hept-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-8-amino-oct-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-9-amino-non-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-10-amino-déc-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-14-amino-tétradéc-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 6-amino-2-fluoro-hex-2-énoïque sous forme d'un mélange d'isomères Z et E,
• le chlorhydrate de l'acide (Z)-6-amino-2-fluoro-hex-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide (E)-6-amino-2-fluoro-hex-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 7-amino-2-fluoro-hept-2-énoïque sous forme d'un mélange d'isomères Z et E,
• le chlorhydrate de l'acide (Z)-7-amino-2-fluoro-hept-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 9-amino-2-fluoro-non-2-énoïque,
• le chlorhydrate de l'acide 10-amino-2-fluoro-déc-2-énoïque, et
• le chlorhydrate de l'acide 14-amino-2-fluoro-tétradéc-2-énoïque.

La présente invention a également pour objet les compositions dermatologiques comprenant à titre de principe actif au moins un dérivé d'amino-acides gras de formule générale (I), tel que défini précédemment pour les dérivés à titre de médicament, en association avec un excipient dermocosmétologiquement acceptable.

La présente invention a également pour objet l'utilisation des dérivés amino-acides gras insaturés de formule générale (I), tels que définis précédemment pour les dérivés à titre de médicament, pour la préparation d'une composition dermatologique antiradicalaire, anti-inflammatoire, anti-purigineuse, anti-collagénase, et/ou destinée au traitement du vieillissement cutané, et/ou destinée à traiter des troubles de la kératinisation et de la pigmentation et/ou destinée à améliorer la cicatrisation.

Les dérivés amino-acides gras insaturés de formule générale (I) sont plus particulièrement destinés à des compositions destinées au traitement du psoriasis, du prurit et/ou de la dermite atopique, ainsi qu'à la repigmentation des cheveux ou de la peau, notamment des taches de vieillesse blanches.

Selon la présente invention, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) sont plus particulièrement destinés à des compositions destinées à provoquer un éclaircissement de la peau ou à traiter les taches de vieillesse brunes.

En raison de leur activité anti-radicalaire, les dérivés d'amino-acides gras insaturés de formule générale (I) sont également utiles pour éviter ou limiter la photocarcinogénèse cutanée à des stades précoces et donc peuvent être utilisés dans la prévention et le traitement de diverses maladies tumorales de la peau.

La présente invention a également pour objet un procédé de préparation d'un dérivé d'aminoacide gras insaturé de formule générale (I) suivante : dans laquelle :

• Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor ;
• R₁ représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement -CF₃ ou -CHF₂ ou bien un groupement alkyle, alkényle ou alkynyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 10 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ;
• R représente un atome d'hydrogène ou un groupement R' représentant un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, ou cycloalkyle comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ;
• Ra et Rb représentent indépendamment l'un de l'autre un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle ou acyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, Ra et Rb pouvant former ensemble un cycle hydrocarbonée comportant de 4 à 6 atomes de carbone ; et
• n est un entier compris entre 2 et 14 ;

• la mise en oeuvre de la réaction de Wittig-Horner par la réaction d'un phosphonate de formule (II) suivante :

• R₁ est tel que défini ci-dessus,
• R' représente un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant de 1 à 6 atomes de carbone, et est de préférence un groupement éthyle, et
• R" et R"' représentent, indépendamment l'un de l'autre, un groupe alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant de 1 à 6 atomes de carbone, et de préférence un groupe éthyle ou méthyle, lesdits groupes R" et R"' pouvant former un cycle hydrocarboné comprenant de 2 à 4 atomes de carbone,

• n est tel que défini ci-dessus, et
• GP représente un groupe protecteur, N-GP représentant avantageusement un groupe de type carbamate et de préférence un carbamate de tert-butyle ou de benzyle,

• une éventuelle réaction de saponification du composé de formule générale (IV) susmentionnée, pour obtenir un composé de formule générale (V) suivante :

• une réaction de déprotection de l'azote du composé de formule (IV) ou (V) susmentionnée, pour obtenir un composé de formule (I) dans laquelle Ra et Rb représentent un hydrogène,
• et une éventuelle réaction de N-alkylation ou N-acylation du composé de formule (I) précédent dans laquelle Ra et Rb représentent un hydrogène, pour obtenir un composé de formule (I) dans laquelle au moins l'un des groupes Ra et Rb ne représente pas un hydrogène.

La réaction de Doebner-Knoevenagel, utilisée pour préparer certains composés de la présente invention, est décrite notamment dans l'article de List et al. (Adv. Synth. Catal. 2005, 347, 1558-1560) pour la synthèse d'esters (E)-α,β-insaturés à partir d'aldéhydes.

Le procédé de la présente invention permet la préparation d'amino-acides gras insaturés, dans d'excellentes conditions à la fois en termes de rendement mais aussi de qualité sans trace de contamination, ledit procédé pouvant être transposé au niveau industriel.

Les dérivés d'amino-acides gras insaturés obtenus par le procédé de l'invention peuvent se trouver sous la forme de stéréoisomères Z ou E, ou sous la forme d'un mélange de ces différentes formes.

De manière avantageuse, le composé de formule générale (III) précédent : pourra être synthétisé à partir d'un composé de formule générale (VI) : dans laquelle n et Rn sont tels que définis précédemment,
selon les étapes suivantes :

• protection de l'azote de la fonction amide du composé de formule (VI) par un groupement GP pour obtenir un composé de formule générale (VII) suivante :

Lorsque Ra et/ou Rb est différent d'un atome d'hydrogène, on effectue des réactions de N-alkylation ou N-acylation ou une combinaison de ces réactions selon les procédés connus de l'homme de l'art (« March's Advanced Organic Chemistry », Fifth edition, ISBN 0-471-58589-0, Michael.B. Smith and Jerry March, pages 501-552 et 511).

Les dérivés d'aminoacide gras insaturés de formule (I) dans laquelle R est différent d'un atome d'hydrogène sont obtenus de façon classique par couplage à partir de la fonction acide.

Si les composés de structure (VI) ne sont pas disponibles commercialement, il est toujours possible de les préparer à partir des cétones cycliques correspondantes selon les méthodes bien connues de l'homme de l'art, à savoir par transformation de cétones cycliques en oximes par action d'hydroxylamine, puis le traitement en milieu acide fort de ces oximes en lactame suivant une réaction très classique de Beckman (« March's Advanced Organic Chemistry », Fifth édition, ISBN 0-471-58589-0, Michael.B. Smith and Jerry March, pages 1349, 1381, 1384, 1415 - 1416) :

De même, lorsque Rn est différent d'un hydrogène, il est possible de synthétiser le composé (III) à partir de l'hydroxycétone suivante : par l'enchaînement de réaction suivante : protection de la fonction alcool, réaction de Wittig-Hörner pour obtenir un ester α,β-insaturé, hydrogénation de la double liaison, réduction de l'ester en aldéhyde, déprotection de la fonction alcool et réaction de Mitsunobu ou de Gabriel.

Selon un mode de réalisation particulier du procédé de l'invention, Ra et Rb représentent des hydrogènes.

Selon un autre mode de réalisation particulier du procédé de l'invention, R représente un hydrogène.

Selon encore un autre mode de réalisation particulier du procédé de l'invention, Rn représentent un hydrogène.

Selon encore un autre mode de réalisation particulier du procédé de l'invention, R₁ représentent un hydrogène ou un fluor.

La présente invention concerne également un procédé de préparation d'un dérivé d'aminoacide gras insaturés de formule (I-1) suivante : correspondant à un composé de formule générale (I) dans laquelle :

• Ra, Rb, Rn et R représentent un hydrogène ; et
• R₁ est tel que défini précédemment, c'est-à-dire qu'il représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement -CF₃ ou - CHF₂ ou bien un groupement alkyle, alkényle ou alkynyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un atome d'halogène, en particulier de fluor ; et
• n représente un entier compris entre 2 et 14.

• une étape de protection de la fonction amide d'un composé de formule (VI-1) suivante, qui correspond à un composé de formule (VI) pour lequel Rn = H :

• n est tel que défini ci-dessus dans la formule (I-1), et
• GP représente un groupe protecteur, N-GP représentant avantageusement un groupe de type carbamate et de préférence un carbamate de t-butyle ou de benzyle, GP correspondant à un groupe protecteur tel que défini dans « Protective Groups in Organic Synthesis » Third edition Theodora GREEN & Peter WUTS Wiley Interscience ISBN 0-471-16019-9 Chapitre 7 pages 494 à 654,

• une étape de réduction de la fonction carbonyle du composé de formule (VII-1) telle que définie ci-dessus pour obtenir un composé de formule (III-1) suivante, correspondant à un composé de formule (III) pour lequel Rn = H : n et GP étant tels que définis ci-dessus dans la formule (VII-1),
  cette étape étant notamment effectuée à l'aide de réducteurs classiques tels que les hydrures encombrés de l'aluminium comme le diisobutyle aluminium hydrure à basse température,
• la mise en oeuvre de la réaction de Wittig-Horner par la réaction d'un phosphonate de formule (II) suivante : dans laquelle :
  • R₁ est tel que défini ci-dessus,
  • R' représente un groupe alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant de 1 à 6 atomes de carbone, et est de préférence un groupe éthyle, et
  • R" et R"' représentent, indépendamment l'un de l'autre, un groupe alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant de 1 à 6 atomes de carbone, et de préférence un groupe éthyle ou méthyle, lesdits groupes R" et R"' pouvant former ensemble un cycle hydrocarboné comprenant de 2 à 4 atomes de carbone,
  ou, lorsque R₁ = H, la mise en oeuvre de la réaction de Doebner-Knoevenagel par la réaction d'un dérivé d'acide malonique de formule R'OOC-CH₂-COOR', R' étant tel que défini ci-dessus,
  sur le composé protégé de formule (III-1) susmentionné,
  afin d'obtenir un composé de formule (IV-1) suivante, correspondant à un composé de formule (IV) pour lequel Rn = H : dans laquelle n, GP, R₁ et R' sont tels que définis ci-dessus,
• une réaction de saponification du composé de formule (IV-1) susmentionnée, pour obtenir un composé de formule (V-1) suivante, correspondant à un composé de formule générale (V) pour lequel Rn = H : dans laquelle n, GP et R₁ sont tels que définis ci-dessus,
• et une réaction de déprotection de l'azote du composé de formule (V-1) susmentionnée, pour obtenir un composé de formule (I-1).

Les amino-acides gras insaturés objets de la présente invention peuvent ainsi être préparés grâce à la mise en oeuvre de réactions de type Wittig-Hörner à partir d'un phosphonate (fluoré ou non) ou de type Wittig à partir d'un triphényl phosphonium sur l'alpha hydroxy amine cyclisée provenant du lactame correspondant dont la fonction amine sera préalablement protégée (voir schéma de synthèse développé ci-après).

S'en suit éventuellement une réaction de saponification de l'amino-ester protégé pour obtenir un amino-acide qui sera déprotégé par une hydrolyse acide pour donner l'amino acide gras insaturé de formule générale : n' = n - 2 et R₁ = H, halogène, ou alkyle

La réaction de Wittig-Hörner est une réaction décrite dans le document Modern Synthetic Reaction, Second edition, Herbet O.House, Wittig Hörner reaction p.682-709, et toute condition expérimentale décrite dans l'état de la technique peut être utilisée dans le cadre de la présente invention. A titre d'exemple, la réaction de Wittig-Hörner peut être effectuée en présence de triéthylphosphonoacétate et de carbonate de potassium en milieu éthanolique.

La méthode de protection de la fonction amine est une méthode classique utilisée communément pour son avantage de ne pas être hydrolysable dans les conditions basiques (conditions de déprotection de la fonction ester) et inerte vis à vis d'autres réactifs nucléophiles. (Références : T.Kunieda, T.Higuchi, Y.Abe, and M. Hirobe, Chem. Pharm. Bull., 32, 2174, 1984 ; I. Grapsas, Y.J.Cho, and S.Mobashery, J. Org. Chem., 59, 1918; 1994).

L'étape de réduction partielle du lactame est effectuée en présence d'un agent réducteur tel que le diisobutyl aluminium hydrure. En fin de réaction, les sels d'aluminium sont éliminés par formation d'un complexe soluble dans l'eau en présence de sels de Rozen (Reagents for organic synthesis, vol.I, Louis Fieser and Mary Fieser, p. 36).

Un exemple de synthèse de dérivé où Rn=Méthyle peut être illustré par un enchaînement de réactions de protection, déprotection, Wittig-Hörner et Gabriel à partir d'une hydroxy cétone. Après protection de la fonction alcool, est réalisée une succession de réactions de Wittig Hörner. La déprotection de la fonction alcool en milieu acide, suivie d'une réaction de Gabriel génèrera la fonction amine.

La présente invention a également pour objet, à titre d'intermédiaires de synthèse, des composés de formule générale (VIII) suivante : pour laquelle :

• Rc représente un hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comportant de 1 à 6 atomes de carbone ;
• R₁ représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement -CF₃ ou -CHF₂ ou bien un groupement alkyle, alkényle ou alkynyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor ;
• Rn représentent indépendamment les uns des autres un atome d'hydrogène ou un groupement alkyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor ;
• n est un entier compris entre 2 et 14 ;
• GP représente un groupe protecteur, N-GP représentant avantageusement un groupe de type carbamate et de préférence un carbamate de tert-butyle ou de benzyle,
  GP correspond notamment à un groupe protecteur tel que défini dans « Protective Groups in Organic Synthesis » Third édition Theodora GREEN & Peter WUTS Wiley Interscience ISBN 0-471-16019-9 Chapitre 2 pages 17 à 246 ; et
• Rd représente un hydrogène ;
  à l'exclusion des composés suivants: le (E)-6-(N,N-di-tert-butoxy-carbonylamino)-hex-2-énoate de tert-butyle, le (E)-6-(N-tert-butoxy-carbonylamino)-hex-2-énoate de tert-butyle, le (E)-6-(N-tert-butoxy-carbonylamino)-hex-2-énoate d'éthyle, le (E)-7-(N-tert-butoxy-carbonylamino)-hept-2-énoate de méthyle et l'acide (E)-7-(N-tert-butoxy-carbonylamino)-hept-2-énoïque.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les composés de formule (VIII) répondent au critère suivant : R₁ représente un atome d'hydrogène, de fluor, de chlore, ou de brome, ou bien un groupement -CF₃ ou -CHF₂ ou bien un groupement alkyle, alkényle ou alkynyle, linéaire ou ramifié, comprenant 1 à 6 atomes de carbone, et étant éventuellement substitué par un ou plusieurs atomes d'halogène, en particulier de fluor.

Selon une caractéristique particulière de l'invention, les composés de formule (VIII) répondent au critère suivant : Rn représentent un hydrogène.

Selon une autre caractéristique particulière de l'invention, les composés de formule (VIII) répondent au critère suivant : R₁ représente un hydrogène ou un fluor.

La présente invention sera illustrée dans le cadre des exemples de synthèse donnés ci-après :

Dans un tricol sous flux d'azote, 10.0g de Caprylolactame (70.8mmol) sont solubilisés dans 150ml de Tétrahydrofurane. 10.06ml (1.01 eq) de Triéthylamine sont additionnés ainsi que 8.74g (1.01 eq) de 4-Diméthylaminopyridine, et enfin 30.91g (2 eq) de di-terButyl di-carbonate. Le milieu réactionnel est agité toute la nuit à température ambiante. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu réactionnel est concentré, repris par de l'eau et de l'acétate d'éthyle. Le mélange est extrait par trois fois avec de l'acétate d'éthyle, les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution d'acide chlorhydrique 5%, puis par une solution saturée de NaCl. Les phases organiques sont séchées sur Na₂SO₄, filtrées et concentrées sous vide, pour conduire à une huile rouge.
Caractérisations :
m= 24.0g 100% rdt
R_f= 0.8 (DCM / MeOH 99/1)
RMN (¹H, CDCl₃): 1.50 (s, 9H); 1.53 (m, 6H); 1.67 (m, 2H); 1.82 (m, 2H); 2.87 (m, 2H), 2.78 (t, 2H).

Dans un tricol sous flux d'azote, 17.1g de Caprylolactame protégé par un groupement Boc (70.8mmol) sont solubilisés dans 170ml de toluène. Le milieu est refroidi à -78°C et 59.2 ml d'une solution de Dibal-H à 20% dans le toluène (1.01 eq) sont coulés goutte à goutte, sur 1 heure, en maintenant la température du milieu entre -80°C et -75°C. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. A -78°C, 480ml d'une solution saturée de tartrate double sont coulés lentement et le milieu est agité vigoureusement pendant une nuit. La phase organique est extraite. La phase aqueuse est extraite à l'acétate d'éthyle par trois fois. Les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur MgSO₄, filtrées et concentrées sous vide, pour conduire à un solide orange.
Caractérisations :
m= 20.0g 99% rdt
R_f= 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3)
RMN (¹H, CDCl₃) : 1.40-1.80 (m, 20H) ; 2.85-2.89 (m, 2H) ; 3.75-3.79 (m, 2H).

Dans un tricol sous flux d'azote, 2.0g (8.22mmol) de composé du stade 2 sont solubilisés dans 20ml d'éthanol. 1.70g (1.5eq) de carbonate de potassium sont ajoutés au milieu et 1.96ml (1.2eq) de Triéthylphosphonoacétate sont coulés lentement. Le mélange est alors chauffé à 45°C pour une nuit. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu réactionnel est concentré puis le résidu est repris par de l'acétate d'éthyle et de l'eau. La phase aqueuse est extraite par de l'acétate d'éthyle par trois fois. Les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur MgSO₄ filtrées et concentrées sous vide. Le produit brut obtenu est purifié par chromatographie sur gel de silice (gradient heptane/ AcOEt), pour conduire à une huile jaune.
Caractérisations :
m= 1.60g 62% rdt
R_f= 0.4 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3)
RMN (¹H, CDCl₃, 300 MHz) : δ 1.28-1.46 (m, 22H) ; 2.16-2.19 (m, 2H) ; 3.10 (m, 2H) ; 4.20 (q, 2H) ; 5.82 (dt, 1H, J=15.6Hz) ; 6.97 (dt, 1H, J=15.6Hz).

Dans un ballon, 1.60g (5.10mmol) de composé du stade 3 sont mis en solution dans 16ml de THF. 6.40ml (2.5eq) d'une solution de NaOH 2M sont ajoutés et le milieu réactionnel est chauffé à 65°C pendant une nuit. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le pH du mélange est alors ajusté à 4 par ajout d'acide chlorhydrique. Le milieu est concentré, repris par AcOEt / eau. La phase aqueuse est extraite par de l'acétate d'éthyle (trois fois) ; les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur Na₂SO₄, filtrées et concentrées sous vide, pour conduire à un solide beige.
Caractérisations :
m=1.2g 82% rdt
R_f = 0.2 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3)
RMN H, CDCl₃, 300 MHz) : δ 1.30-1.46 (m, 19H) ; 2.20-2.27 (m, 2H) ; 3.13 (m, 2H) ; 5.80-5.86 (dt, 1H, J=15.6Hz) ; 7.0 (dt, 1H, J=15.6Hz).

Dans un ballon sous baudruche d'azote, 1.2g (4.28mmol) de composé du stade 4 sont solubilisés dans 7.5ml (3.5eq) d'une solution de HCl dans l'éther 2M. Le milieu est agité toute une nuit à 35°C. Le suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu est concentré sous vide, repris dans du dichlorométhane, filtré et lavé par du dichlorométhane, séché sous vide, pour conduire à un solide blanc. Ce solide est plusieurs fois recristallisé dans l'éthanol.
Caractérisations
m= 0.59g 82% rdt
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD, 300 MHz) : δ 1.50-1.69 (m, 10H) ; 2.21-2.28 (q, 2H) ; 2.93 (t, 2H) ; 5.80 (d, 1H, J = 15.6Hz) ; 6.95 (dt, 1H, J = 15.6Hz)
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 186 (calculé 185)

Les stades 1 et 2 sont conduits de la même façon que précédemment, sur le Caprylolactame.

Dans un tricol sous flux d'azote, 2.0g (8.22mmol) de composé du stade 2 sont solubilisés dans 20ml d'éthanol. 1.70g (1.5eq) de carbonate de potassium sont ajoutés au milieu et 2.06g (1.1eq) de Triéthylphosphonofluoroacétate sont coulés lentement. Le mélange est alors chauffé à 45°C pour une nuit. Un suivi CCM permet de contrôler la fin de la réaction. Le milieu réactionnel est concentré puis le résidu est repris par de l'acétate d'éthyle et de l'eau. La phase aqueuse est extraite par de l'acétate d'éthyle par trois fois. Les phases organiques rassemblées sont lavées par une solution saturée de NaCl, séchées sur MgSO₄ filtrées et concentrées sous vide. Le produit brut obtenu est purifié par chromatographie sur gel de silice (gradient heptane/ AcOEt), pour conduire à une huile jaune pâle.
Caractérisations :
m= 1.70g 65% rdt
R_f = 0.5 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3)
RMN (¹H, CDCl₃, 300MHz): δ 1.32-1.39 (m, 22H) ; 2.21 (m, 2H) ; 3.11 (m, 2H) ; 4.30 (q, 2H) ; 5.89-5.96 (dt, 0.5H, J=21.9Hz, forme E) ; 6.06-6.18 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z).

Les stades 4 et 5 sont conduits comme précédemment et conduisent aux caractérisations suivantes :
Caractérisations stade 4 :
m=1.4g 87% rdt
R_f = 0.2 (Heptane / Acétate d'éthyle 7/3)
RMN (¹H, CDCl₃) : δ□ 1.23-1.46 (m, 19H) ; 2.26-2.55 (m, 2H) ; 3.12 (m, 2H), 5.98-6.32 (ddt, 1H, forme E et Z).
Caractérisations stade 5 :
m= 0.9g 95% rdt
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (1H, MeOD) : δ □1.41-1.53 (m, 8H) ; 1.65-1.70 (m, 2H), 2.24-2.29 (m, 1H forme Z) ; 2.53-2.56 (m, 1H, forme E) ; 2.91-2.96 (t, 2H), 5.90-6.03 (dt, 0.5H, J=21.6Hz, forme E) ; 6.08-6.25 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 204 (calculé 203)

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 12 est appliqué à 1'ε-caprolactame, pour conduire à l'acide (E)-8-amino-oct-2-ènoïque.
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ1.41-1.57 (m, 4H) ; 1.67-1.75 (m, 2H) ; 2.24-2.31 (m, 2H) ; 2.93-2.98 (m, 2H) ; 5.86 (dd, 1H) ; 6.98 (dt, 1H).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 158 (calculé 157)

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 12 est appliqué à l'oenantholactame pour conduire à l'acide (E)-9-amino-non-2-ènoïque.
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, DMSO-d6) : δ □1.29-1.54 (m, 8H) ; 2.16-2.23 (m, 2H) ; 2.71-2.76 (m, 2H) ; 5.77 (dd, 1H, J=18Hz) ; 6.81 (dt, 1H, J=18Hz).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 172 (calculé 171)
Point de fusion: 104°C

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 13 est appliqué à l'oenantholactame pour conduire à l'acide 9-amino-2-fluoro-non-2-ènoïque.
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ□1.40-1.71 (m, 8H) ; 2.30-2.35 (m, 2H) ; 2.91-2.96 (m, 2H) ; 5.92-6.05 (dt, 0.5H, J=21.9Hz, forme E) ; 6.09-6.26 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z).
Spectrométrie de masse : [M-H]^- = 188 (calculé 189)
Point de fusion: 120°C

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 12 est appliqué à l'azacyclodécanone pour conduire à l'acide (E)-14-amino-tétradéc-2-ènoïque.
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : ε□1.31-1.69 (m, 18H) ; 2.20-2.27 (m, 2H) ; 2.90-2.95 (m, 2H) ; 5.80 (dd, 1H, J=15.6Hz) ; 6.96 (dt, 1H, J=15.6Hz).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 242 (calculé 241)
Point de fusion: 153°C

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 13 est appliqué à l'azacyclodécanone pour conduire à l'acide 14-amino-2-fluoro-tétradéc-2-ènoïque.
R_f=0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ□1.34-1.67 (m, 18H) ; 2.21-2.26 (m, 1H forme Z) ; 2.48-2.54 (m, 1H, forme E) ; 2.92 (t, 2H), 5.91-6.04 (dt, 0.5H, J=21.9Hz, forme E) ; 6.09-6.25 (dt, 0.5H, J=33.3Hz, forme Z).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 260 (calculé 259)
Point de fusion : 148.5°C

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 12 est appliqué à la 2-pyrrolidone pour conduire à l'acide (E)-6-amino-hex-2-ènoïque.
R_f=0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ□ 1.81-1.91 (m, 2H) ; 2.32-2.40 (m, 2H) ; 2.95-3.00 (m, 2H) ; 5.90 (dd, 1H, J=15.6Hz) ; 6.96 (dt, 1H, J=15.6Hz).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 130 (calculé 129)

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 13 est appliqué à la 2-pyrrolidone pour conduire à l'acide (Z)-6-amino-2-fluoro-hex-2-ènoïque (n° 3) et à l'acide (E)-6-amino-2-fluoro-hex-2-ènoïque (n° 2), qui ont été dans ce cas séparés.
Forme Z
R_f=0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ□ 1.80-1.90 (m, 2H) ; 2.33-2.42 (m, 2H) ; 2.95-3.00 (m, 2H) ; 6.12-6.28 (dt, 1H, J=32.7Hz, forme Z).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 148 (calculé 147)
Forme E
R_f=0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ 1.77-1.89 (m, 2H); 2.60-2.68 (m, 2H); 2.94-2.99 (m, 2H) ; 5.96-6.08 (dt, 1H, J=21.0Hz, forme E).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 148 (calculé 147)

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 12 est appliqué au δ-valérolactame pour conduire à l'acide (E)-7-amino-hept-2-ènoïque.
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ □1.56-1.74 (m, 4H) ; 2.28-2.34 (m, 2H) ; 2.94-2.99 (m, 2H) ; 5.84 (dd. 1H, J=15.6Hz) ; 6.97 (dt, 1H, J=15.6Hz).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 144 (calculé 143)

Le protocole général utilisé pour la préparation du composé 13 est appliqué au δ-valérolactame pour conduire à l'acide (Z)-7-amino-2-fluoro-hept-2-ènoïque (n° 6) et au mélange d'acide (Z+E)-7-amino-2-fluoro-hept-2-ènoïque (n° 5).
Forme Z
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ □1.55-1.71 (m, 4H) ; 2.32-2.35 (m, 2H) ; 2.93-2.98 (m, 2H) ; 6.11-6.28 (dt, 1H, J=33.3Hz, forme Z).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 162 (calculé 161)
Forme E +Z
R_f = 0.1 (Heptane / Acétate d'éthyle 5/5)
RMN (¹H, MeOD) : δ□ 1.54-1.75 (m, 4H) ; 2.30-2.41 (m, 0.6H) ; 2.56-2.64 (m, 1.4H, forme E) ; 2.94-2.99 (m, 2H) ; 5.95-6.08 (dt, 0.7H, J=21.6Hz, forme E) ; 6.12-6.28 (dt, 0.3H, J=33.3Hz, forme Z).
Spectrométrie de masse : [M+H]⁺ = 162 (calculé 161).

Le kératinocyte, cellule la plus représentée au niveau de l'épiderme, libère, en réponse à de nombreux facteurs extra-cellulaires présents dans son environnement, des médiateurs biologiquement actifs, notamment des prostaglandines et les leucotrienes qui jouent un rôle important dans l'initiation et la modulation des réactions inflammatoires cutanées et qui interviennent également dans la régulation de la réponse immune. La prostaglandine PG6KFlalpha, est un des métabolites majeurs produits par le kératinocyte stimulé, et représentatif de la modulation de la production des métabolites du métabolisme de l'acide arachidonique issus de la voie de la cyclo-oxygénase.

La suspension de kératinocytes dans le DMEM 10% SVF est distribuée dans des plaques 6 puits (1,2 106 cellules/puits), et incubée pendant 16 heures à 37°C dans une atmosphère à 5% CO2. Les kératinocytes sont alors rincés avec du PBS pour éliminer les cellules non-adhérentes puis exposés aux produits à tester inclus dans du DMEM sans SVF (qui pourrait interférer dans le dosage).

La concentration testée en culture est de 3 µg/ml. Elle a été retenue après un test préliminaire d'évaluation de la cytotoxicité (rouge neutre) et n'est pas cytotoxique.

Pour chaque traitement, 3 puits sont réalisés. Les cellules sont pré-incubées pendant 60 mn avec les produits à tester puis un agent stimulant de la cascade de l'acide arachidonique, le ionophore calcique, est ajouté pendant 5 heures: le ionophore calcique A23187 est utilisé à la concentration 1 µM.

Après ces 5 heures de culture, les milieux de culture de chacun des puits sont récupérés, centrifugés à 3000 tr/mn et conservés à -80°C.

La production de prostaglandine 6KFlα pour chacun des essais est mesurée par Kit Elisa EUROMEDEX.

Les résultats sont rassemblés dans le tableau 1 et sont exprimés en pourcentage d'activité / contrôle stimulé. Composés de formule I % d'activité inhibitrice des molécules évaluées sur la production de PG6KF 1 α N° n R R_n R₁ Sel 1 2 H H H HCl + 2 2 H H F HCl ~ 3 2 H H F HCl 22 4 3 H H H HCl 18 5 3 H H F HCl 41 6 3 H H F HCl 25 7 4 H H H HCl 36 8 5 H H H HCl 8 9 5 H H F HCl 17 10 10 H H F HCl 38 11 10 H H H HCl 40

La synthèse des données obtenues permet de mettre en évidence les potentialités anti-inflammatoires en particulier des composés n° 11, 5, 7 et 10, avec une dose efficace 45 (DE45) pour le composé n°11 de 10µg/ml et 25µg/ml pour le composé n° 5.

La fonction barrière de la peau permet d'assurer une protection vis à vis de l'environnement extérieur, et les kératinocytes de l'épiderme peuvent directement répondre à une large variété d'agents irritants ou allergènes et participer activement aux processus inflammatoires et immunitaires cutanés, en particulier à travers la génération de cytokines pro-inflammatoires, médiateurs d'origine protéique. Parmi ces molécules biologiquement actives, l'IL1α (Interleukine 1 α) et le TNFα (Tumor Necrosis Factor α) sont considérées comme des cytokines primaires, leur libération étant suffisante pour induire l'inflammation en vertu de leur induction de molécules d'adhésion au niveau des cellules endothéliales et de leur induction de facteurs chimiotactiques tels que les chemokines. Le système des chemokines contrôle le trafic leucocytaire pendant la réponse inflammatoire et est nécessaire aux interactions des réponses immunes innées et adaptatives.

Dans l'étude présente nous nous sommes plus spécifiquement intéressés à la chemokine - Interleukine 8 - qui est fortement impliquée dans l'amplification de la réponse inflammatoire et dont la fonction principale est de recruter et activer les polynucléaires neutrophiles notamment en stimulant leur libération de molécules pro-inflammatoires.

Dans cette étude, réalisée sur des plaques 96 puits, nous avons évalué l'activité des acides amino alcènes, sur la production d'interleukine 8 induite au niveau du kératinocyte par le phorbol ester PMA et le ionophore calcique A23187.

La suspension de kératinocytes dans le KSFM complémenté est distribuée dans des plaques 96 puits (3.10⁴ cellules/puits), et incubée pendant 16 heures à 37°C dans une atmosphère à 5% CO₂. Les kératinocytes sont alors rincés avec du PBS pour éliminer les cellules non-adhérentes puis exposés aux produits à tester inclus dans du KSFM non complémenté (qui pourrait interférer dans le dosage).

La concentration testée en culture est de 3µg/ml. Elle a été retenue après un test préliminaire d'évaluation de la cytotoxicité (rouge neutre) et n'est pas cytotoxique.

Pour chaque traitement, 3 puits sont réalisés. Les cellules sont pré-incubées pendant 60 mn avec les produits à tester puis stimulées, parallèlement à des contrôles négatifs sans stimulant : Phorbol Myristate Acétate (PMA) 1 µM + Ionophore calcique (A23187) 0,1 µM.

Incubation pendant 6 heures à 37°C en atmosphère humide d'air contenant 5% de CO₂.

Les milieux de culture de chacun des puits sont récupérés, centrifugés à 3000 tr/mn et conservés à -80°C.

Dosage des cytokines : l'IL8 est dosée par une méthode immunoenzymatique en kit ELISA (Immunotech).

Les résultats sont rassemblés dans le tableau 2 et sont exprimés en pourcentage d'activité / contrôle stimulé. Composés de formule I % d'activité inhibitrice des molécules évaluées sur la production d'IL8 N° n R R_n R₁ Sel 1 2 H H H HCl ~ 2 2 H H F HCl ~ 3 2 H H F HCl ~ 4 3 H H H HCl ~ 5 3 H H F HCl + 6 3 H H F HCl + 7 4 H H H HCl ~ 8 5 H H H HCl 14 9 5 H H F HCl 20 10 10 H H F HCl 8 11 10 H H H HCl 22

La synthèse des données obtenues permet de mettre en évidence les potentialités anti-inflammatoires en particulier du composé n° 11 et 9, avec une dose efficace 50 (DE 50) de 11 µg/ml pour le composé n° 11.

Durant le métabolisme cellulaire normal, lors d'exposition occasionnelle de la peau à des agents stressants ou au cours de pathologies dermatologiques, des espèces oxygénées réactives encore appelées Espèces Activées de l'Oxygène (EAO) sont générées (Y. M. W. Janssen et al, 1993). Ces EAO, décrites comme des métabolites très réactifs, jouent un rôle important dans bon nombre de processus tels que l'inflammation, le vieillissement et la promotion tumorale.

Les EAO sont considérées comme les « seconds messagers » dans la signalisation cellulaire du stress oxydatif et donc comme les médiateurs précoces de l'inflammation (A. Van Der Vliet and A. Bast, 1992).

Leur surproduction induit d'importants dommages au sein de la cellule. Certains constituants cellulaires sont alors les cibles majeures d'un tel stress oxydatif : les composants lipidiques de la membrane plasmique (lipoperoxydation), les protéines (dénaturation et dégradation) et le matériel génétique ou ADN (mutations) peuvent être altérés. Les cellules sont capables de limiter ces dommages oxydatifs grâce à différents systèmes de défense antiradicalaire (antioxydants enzymatiques et non enzymatiques) (B. P. Yu, 1994 ; H. Steiling et al, 1999).

Cependant, dans certaines conditions, les EAO sont produites en quantité telle que l'activité antioxydante cellulaire est insuffisante ; ces EAO deviennent alors des facteurs inducteurs de pathologies inflammatoires et du vieillissement tissulaire (Y. Miyachi et al, 1986 ; M. Kress et al, 1995).

Il existe différents agents chimiques (ex : H₂O₂) ou physiques (ex : UVA) capables de générer in vitro un stress oxydatif. Ainsi les EAO produites vont altérer diverses cibles cellulaires (Membranes, ADN ou Protéines) dont l'altération peut-être analysée par des méthodologies biochimiques largement utilisées comme le dosage des TBARS pour la lipoperoxydation lipidique, ou le dosage in vitro des EAO intracellulaires à l'aide de la sonde H₂DCF-DA.

Nous avons mis en place un modèle d'étude in vitro du stress oxydatif induit par H₂O₂ / Fer, H₂O₂ qui génère massivement des EAO intracellulaires par une réaction en chaîne déclenchée par l'oxydation des lipides membranaires.

Cette technique est basée sur l'utilisation d'une sonde fluorescente, la 6-carboxy-2',7'-dichlorodihydro fluorescéine diacétate, di (acétoxyméthyle ester) (H₂DCF-DA), qui, une fois qu'elle a pénétré dans la cellule, est désacétylée par les estérases intracellulaires formant alors du H₂DCF. Ce produit est oxydé par les EAO intracellulaires en un composé hautement fluorescent: la 2',7'-dichlorofluorescein (DCF) (Suematsu M et al., 1996, Free Radicals Pratical Approach, Punchard ed. p83-99).

Les matériel et méthodes utilisés pour le dosage in vitro des EAO intracellulaires sont indiqués ci-après.

Lignée cellulaire de fibroblastes murins cutanés L929.

• Microplaque 96 puits à fond plat
• Cytofluorimètre Cytofluor II : Réf. PERSEPTIVE BIOSYSTEMS

• Milieu de culture Dulbecco's Modified Eagle Medium (DMEM)
• Sérum de veau foetal (SVF)
• Tampon phosphate PBS pH 7,4
• Trypsine EDTA (1X)

• 6-carboxy-2',7'-dichlorodihydrofluorescein diacétate, di(acétoxyméthyle ester) (PM. 675,43)

• - Peroxyde d'Hydrogène (H₂O₂) 3% : Réf. GIFRER (Laboratoire Gifrer Barbezat)
• - Ferrous Ammonium Sulfate (Fe²⁺)
• - Ferric Ammonium Sulfate (Fe³⁺)

Les concentrations testées sont des concentrations non cytotoxiques. La cytotoxicité a été réalisée par la méthode du rouge neutre, après incubation du produit durant 3 heures.

Le produit anti-radicalaire de référence est la vitamine E ou α-tocophérol (PM : 430.7) (SIGMA, réf: T-1539).

La solution mère est préparée à 400mg/ml dans du DMSO et conservée à -20°C. La solution de pré-traitement est préparée extemporanément à 400µg/ml dans du milieu de culture sans SVF.

Pour l'évaluation des dérivés d'amino-acides gras insaturés, les dilutions sont préparées dans du milieu de culture extemporanément, pour une gamme de concentrations de 0.02, 0.2, 2 et 20 ng/ml.

Les cellules de la lignée de fibroblastes L929 sont ensemencées dans des microplaques de 96 puits à fond plat dans 100 µl de DMEM supplémenté de 10% de SVF, puis elles sont incubées une nuit à 37°C en atmosphère humide à 5% de CO₂.

Le blanc de plaque sans cellules est évalué sur 6 puits.

Les dilutions des produits à tester et molécule de référence sont réalisées dans le milieux de culture sans SVF, puis déposées dans 7 puits à raison de 100 µl par puits.

Les cellules sont alors incubées pendant 3 heures à 37°C en atmosphère humide à 5% de CO₂.

Les cellules « Témoin » (fluorescence naturelle des cellules), « Contrôle » (production basale de EAO) et « Stimulées » (production de EAO après traitement oxydatif) sont recouvertes avec 100µl de DMEM.

Les cellules « Contrôle » sont incubées avec la sonde mais ne sont ni prétraitées ni traitées.

Les cellules « Stimulées » sont incubées avec la sonde et sont traitées mais pas prétraitées.

Les cellules « Témoin » ne sont ni pré-traitées, ni incubées avec la sonde, ni traitées.

Les cellules sont rincées au PBS 1X à raison de 100µl par puits. Puis elles sont mises à incuber 30 minutes à 37°C en atmosphère humide à 5% de CO₂ avec 50µl de sonde H₂DCF-DA à 5 µM.

Après 30 minutes au contact de la sonde seule, les cellules sont mises à incuber 30 minutes à 37°C en atmosphère humide à 5% de CO₂ avec un ajout de 25µl d'H₂O₂ à 800µM et 25µl de solution de fer ferreux et ferrique à 8mM, pour avoir des concentrations finales de 200µM d'H₂O₂ et 2mM de fer ferreux et ferrique.

Les cellules sont ensuite rincées au PBS 1X à raison de 100µl par puits, puis incubées 30 minutes à 37°C en atmosphère humide à 5% de CO₂ avec 100µl de PBS 1X.

Ces 1 h 30 minutes d'incubation à 37°C permettent aux estérases intracellulaires de désacétyler la sonde en H₂DCF, oxydable par les EAO intracellulaire en DCF : composé fluorescent dont la formation est proportionnelle à la quantité d'EAO intracellulaires.

L'intensité de fluorescence est lue au cytofluorimètre à λ_excitation= 485nm et λ_émission= 530nm. Elle reflète la quantité d'EAO intracellulaires produite.

Le rapport ci-dessous permet de calculer pour chaque concentration de produit testé le % de protection contre la production d'EAO intracellulaires (puisque l'Intensité de Fluorescence ou IF exprime la libération intracellulaire d'EAO). $$\frac{\left[\mathrm{IF\; Oxydant}\left({\mathrm{H}}_{\mathrm{2}}{\mathrm{O}}_{\mathrm{2}}\mathrm{/}\mathrm{Fer}\right)\mathrm{-}\mathrm{IF}\left(\mathrm{Oxydant}\mathrm{+}\mathrm{Produit}\right)\right]\mathrm{x}\mathrm{100}}{\mathrm{IF\; Oxydant}\left({\mathrm{H}}_{\mathrm{2}}{\mathrm{O}}_{\mathrm{2}}\mathrm{/}\mathrm{Fer}\right)\mathrm{-}\mathrm{IF}\mathrm{Contrôle}}$$

Les valeurs indiquées dans le tableau 3 sont les pourcentages d'inhibition de production d'EAO intracellulaire suite à un stress oxydatif exogène, par rapport aux cellules « témoin » (100%) et aux cellules « stimulé » (0%).

Les pourcentages moyens de protection, pour les 13 molécules testées à 4 concentrations sur la lignée L929 sont présentés dans le tableau 3 ci-dessous. Composés de formule (I) Doses N° n R Rn R1 Sel 0,02 ng/ml 0,2 ng/ml 2 ng/ml 20 ng/ml 1 2 H H H HCl 12 13 5 1 2 2 H H F HCl 14 19 14 -13 3 2 H H F HCl 15 11 5 1 4 3 H H H HCl 13 12 8 -14 5 3 H H F HCl 18 23 26 23 6 3 H H F HCl 31 30 21 26 7 4 H H H HCl 31 33 26 32 8 5 H H H HCl 22 25 20 19 9 5 H H F HCl 18 20 23 18 10 10 H H F HCl 20 25 18 15 11 10 H H H HCl 20 19 22 19 Produit antiradicalaire de référence Dose = 400 µg/ml Vitamine E 31

In vitro, à l'échelle cellulaire, un stress exogène par le H₂O₂ / Fe²⁺ -Fe³⁺ est capable d'induire une production d'EAO intracellulaires détectés à l'aide de la sonde fluorescente.

• ➢ La vitamine E (molécule anti-radicalaire de référence) présente une protection moyenne de 31 % à 400 µg/ml.
• ➢ Les dérivés amino-acides gras insaturés selon l'invention à courte chaîne (C7 à C9), en particulier, les composés n° 8, 7 et 6, présentent des propriétés anti-radicalaires (activité > à 25 %).

Par ailleurs, durant le métabolisme cellulaire normal, lors d'exposition occasionnelle de la peau à des agents stressants ou au cours de pathologies dermatologiques, des espèces oxygénées réactives encore appelées Radicaux Libres Oxygénés (RLO) sont générées (Y. M. W. Janssen et al, 1993). Ces RLO, décrits comme des métabolites très réactifs, jouent un rôle important dans bon nombre de processus tels que l'inflammation, le vieillissement et la promotion tumorale.

Les RLO sont considérés comme les « seconds messagers » dans la signalisation cellulaire du stress oxydatif et donc comme les médiateurs précoces de l'inflammation (A. Van Der Vliet and A. Bast, 1992).

Leur surproduction induit d'importants dommages au sein de la cellule. Certains constituants cellulaires sont alors les cibles majeures d'un tel stress oxydatif : les composants lipidiques de la membrane plasmique (lipoperoxydation), les protéines (dénaturation et dégradation) et le matériel génétique ou ADN (mutations) peuvent être altérés. Les cellules sont capables de limiter ces dommages oxydatifs grâce à différents systèmes de défense antiradicalaire (antioxydants enzymatiques et non enzymatiques) (B. P. Yu, 1994 ; H. Steiling et al, 1999).

Cependant, dans certaines conditions, les RLO sont produits en quantité telle que l'activité antioxydante cellulaire est insuffisante ; ces RLO deviennent alors des facteurs inducteurs de pathologies inflammatoires et du vieillissement tissulaire (Y. Miyachi et al, 1986 ; M. Kress et al, 1995).

Afin de valoriser l'activité anti-radicalaire des différents dérivés selon l'invention, nous avons analysé leur pouvoir protecteur vis à vis de l'altération des membranes cellulaires induite par un stress oxydatif (chimique), en comparaison avec un antioxydant de référence, la vitamine E.

La membrane plasmique constitue la principale et la première cible des RLO et, étant riche en lipides, elle est le site d'une peroxydation accrue (A. W. Girotti, 1985). Les peroxydes générés au cours de cette oxydation lipidique sont aussi très réactifs et capables de dégrader le matériel protéique et génomique.

Pour évaluer l'altération membranaire, nous avons mesuré la peroxydation lipidique par un dosage in vitro des complexes entre les produits d'oxydation lipidique et l'acide thiobarbiturique. Ces complexes sont appelés TBARS (pour Thiobarbituric Acid Reactive Substances) et donnent le nom au test : Test des TBARS.

Afin de mimer un stress oxydatif chimique, nous avons traité la lignée de fibroblastes, L929, par un complexe composé de peroxyde d'hydrogène (H₂O₂) et de fer (Fe²⁺/Fe³⁺) reconstituant ainsi la réaction de Fenton, source de RLO et plus particulièrement de radical hydroxyle (OH°) (D.A Vessey et al, 1992) : H₂O₂ + Fe²⁺ → OH° + OH^- + Fe³⁺.

Les produits ont été évalués sur la lignée de fibroblastes murins L929. Les cellules sont prétraitées avec les différentes concentrations de produits pendant 16 heures et sont ensuite stimulées avec le complexe H₂O₂-Fe²⁺/Fe³⁺ (200µM-1mM) pendant 1 heure.
Solutions mères : 100 mg/ml, éthanol, 4°C.
Solutions finales : 0,02 ng/ml.

La peroxydation des lipides membranaires est analysée en mesurant les TBARS (Protocole Réf. PLN°2, selon Morlière et al, 1991).

En milieu acide, à 95°C, se forment des complexes, notés TBARS pour Thio Barbituric Acid Reactive Substance, entre les produits d'oxydation lipidiques (malondialdéhyde ou MDA) et l'acide thiobarbiturique (TBA) qui peuvent être dosés en fluorescence par rapport à une gamme étalon avec le MDA. Le dosage des TBARS est alors exprimé en pmole/µg de protéines. Les protéines et TBARS sont dosés dans le milieu intracellulaire.

A partir du calcul des TBARS en pmole/µg protéines, nous avons calculé l'efficacité protectrice des différents produits contre l'oxydation des lipides membranaires. $$\%\mathrm{de\; protection}:\frac{\left[\mathrm{TBARS\; Contrôle}\right]-\left[\mathrm{TBARS}\left(+\mathrm{produits}\right)\right]}{\mathrm{TBARS\; Contrôle}}x100$$

Sept expériences indépendantes ont été réalisées. Durant ces expériences, divers composés ont été évalués (le test ne permet pas d'évaluer plus de 10 molécules en même temps). Les composés évalués plusieurs fois ont été choisis en fonction des résultats obtenus dans l'autre test mesurant également une activité anti-radicalaire (test de dosage des espèces actives de l'oxygène, EAO).

Le modèle utilisé dans cette expérience (réaction de Fenton) induit une peroxydation lipidique importante dans les fibroblastes L929. Cette décharge massive de radical hydroxyle OH- génère donc un stress oxydatif au niveau cellulaire et notamment au niveau des membranes. Cependant, dans ce type de réaction oxydative, les produits issus de la peroxydation lipidique sont internalisés dans les cellules et les TBARS sont alors dosés dans le milieu intracellulaire.

La vitamine E à 400µg/ml, diminue la peroxydation lipidique induite par le complexe H₂O₂-Fe²⁺/Fe³⁺, et protège très efficacement les membranes cellulaires.

Dans le tableau 4 suivant, sont présentés les résultats des 7 expériences. Composés selon l'invention % de protection des lipides membranaires N° n R R_n R₁ Sel Dose = 0,02 ng / ml Nbre Expériences Moyenne 1 2 H H H HCl 3 13,41 2 2 H H F HCl 3 7,63 3 2 H H F HCl 3 - 4,00 4 3 H H H HCl 3 8,75 5 3 H H F HCl 3 36,27 6 3 H H F HCl 5 49,82 7 4 H H H HCl 4 48,30 8 5 H H H HCl 5 56,61 9 5 H H F HCl 3 27,49 10 10 H H F HCl 3 23,91 11 10 H H H HCl 2 -26,31

Le module in vitro présenté dans cette étude reflète les conséquences dues à un stress oxydatif majeur sur la principale cible cellulaire qui est la membrane plasmique. Ainsi, le dosage de la peroxydation lipidique constitue un bon marqueur du stress oxydatif et permet l'évaluation de l'action antioxydante, vis-à-vis du radical hydroxyle, de principes actifs au niveau de la membrane cellulaire.

Dans nos conditions expérimentales, nous observons que les composés n° 8, 9, 10, 7, 5 et 6 présentent une activité antiradicalaire importante et protègent très efficacement les membranes des cellules.

Les composés n° 8, 7 et 6 présentent l'activité antiradicalaire et la protection des membranes les plus importantes.

Les mélanocytes sont des cellules d'aspect étoilé, présentes en minorité dans la couche basale de l'épiderme. Leur fonction principale est d'assurer la mélanogenèse, processus par lequel la mélanine est synthétisée dans des organites spécialisés, les mélanosomes, puis transportée et distribuée aux kératinocytes voisins via leurs prolongements dendritiques. Ce contact avec les kératinocytes permet la pigmentation cutanée, mécanisme de protection de l'épiderme contre les effets mutagènes des rayons ultraviolets. Chaque mélanocyte est en relation avec environ trente six kératinocytes, formant ainsi une « unité épidermique de mélanisation ».

La mélanogenèse consiste en une série de réactions enzymatiques et spontanées, dont le précurseur est la tyrosine. Trois enzymes principales participent à ce processus : la tyrosinase, et les tyrosinase-related protein 1 et 2 (TRP 1 et 2) (Jimbow et al., 2000). La tyrosinase catalyse la transformation de la tyrosine en dopaquinone. A partir de là, deux voies de synthèse sont alors possibles : l'eumélanogenèse et la phéomélanogenèse. La conversion de dopaquinone en eumélanine se fait par une série de réactions successives d'oxydations faisant intervenir TRP-1 et TRP-2. L'eumélanine correspond au pigment brun noir, à faible teneur en soufre, et assure le pouvoir photoprotecteur. Dans la phéomélanogenèse, des molécules à forte teneur en soufre s'incorporent à la dopaquinone pour donner la phéomélanine, de couleur jaune-orangé, présente dans les peaux des sujets roux.

Le stimulus physiologique de la synthèse de mélanine est le soleil, ce qui entraîne une augmentation du nombre des mélanocytes, une néosynthèse de mélanine, et des modifications morphologiques des mélanocytes, associant un accroissement de leur dendricité à une augmentation du transfert des mélanosomes aux kératinocytes. Au niveau moléculaire, l'exposition au soleil stimule la synthèse et la sécrétion d'alpha mélanocyte stimulating hormone. L'α-MSH augmente la concentration intramélanocytaire en AMPc, activant le facteur de transcription, Mitf, qui stimule à son tour l'activité transcriptionnelle des gènes codant pour la tyrosinase, TRP-1 et TRP-2 .

Certaines molécules exogènes sont également connues pour réguler négativement la mélanogenèse. L'hydroquinone inhibe la synthèse de mélanine en se présentant comme substrat de la tyrosinase afin de détourner son activité (Curto et al., 1999). La vitamine C inhibe la tyrosinase mais se comporte également comme un réducteur puissant en empêchant la coloration de la mélanine par oxydation.

L'effet des produits est investigué en situation basale et après stimulation de la mélanogénèse par α MSH pour déterminer le pouvoir dépigmentant.

Le taux de mélanine extracellulaire et intracellulaire est alors mesuré par spectrophotométrie à une longueur d'onde de 405 nm selon le protocole (Meun, Y. J. et al.). La quantité de pigment est déterminée grâce à une gamme étalon de mélanine et l'analyse sur le logiciel Microwin (Berthold Biotechnologies). Un dosage de protéines totales est effectué pour les échantillons de mélanine intracellulaire par la méthode BCA-Copper à 540nm. La gamme étalon est réalisée avec une protéine standard, la BSA (Serum Albumine Bovine).

En situation basale l'alpha MSH à 1 µM augmente de plus de 100% la production de mélanine par rapport aux cellules témoins.

Cette augmentation de mélanine est contrée par les agents dépigmentants, tels l'hydroquinone à 1 µg/ml ou la vitamine C à 40 µg/ml, qui inhibent près de 60% la mélanogénèse.

• Molécule dépigmentante:
  A 30 µg/ml, la molécule n° 11 inhibe faiblement la quantité de mélanine intra et extracellulaire respectivement à hauteur environ de 45 % et de 30 %. Toutefois, la molécule n° 11 reste sans effet sur la synthèse de la mélanine à 10 µg/ml.
• Molécules pigmentantes :
  A 3, 10 et 30 µg/ml, la molécule n° 6 augmente la quantité de mélanine intracellulaire à hauteur d'environ 100 %. La molécule n° 5 semble également avoir un effet pigmentant, mais il est plus faible que celui de la molécule n° 6.

Pour mesurer l'activité anti-collagénase, on peut notamment se référer à la demande de brevet français n° 2 829 491 publiée le 14 mars 2003.

Cette étude est réalisée sur différentes solutions à la concentration de 1 % et 2% de principes actifs en comparaison avec l'excipient seul, les témoins tampon et collagénase. Les principes actifs utilisés sont le DHA, le 2-diméthylamino éthyl ester de l'acide hydroxy-10-décène-2(trans)oïque (ML40) et le glycérol ester de l'acide hydroxy-10-décène-2(trans)oïque (GM).

Des coupes congelées de 5 µm, provenant d'une plastie mammaire d'une femme de 54 ans, sont placées sur des lames histologiques (4 coupes par lame). Chaque solution est testée sur une lame.

Les coupes sont recouvertes des solutions à tester puis mises à incuber pendant 2 heures à 37°C en chambre humide. Les solutions sont éliminées par rinçages répétitifs et les coupes sont colorées au picrosirius. Un examen microscopique est réalisé.

Les produits de la présente invention ont une activité supérieure à l'activité précédemment connue DHA.

L'étude est faite sur un produit à 5% de GM en comparaison avec de l'excipient

(hydrocérine), un contrôle positif et un témoin en présence de la collagénase à 100 U/ml. L'hydrocérine est utilisé comme excipient pour la préparation du produit à appliquer.

Cette étude a été réalisée deux fois. Dans la première étude, il a été constaté que l'action de la collagénase à J+2 reste très limitée et non significative. Dans la deuxième étude, le temps d'application est prolongé et le prélèvement des explants est effectué à J+2 et à J+4.

Des explants de peau humaine préparés et repartis en 16 lots de trois explants chacun sont mis en survie selon le tableau 5 : J+2 J+4 Témoin 3 explants 3 explants Excipient 3 explants 3 explants Produit & 5% GM 3 explants 3 explants Contrôle positif 3 explants 3 explants Témoin + collagénase 3 explants 3 explants Excipient + collagénase 3 explants 3 explants Produit 2 5% GM + collagénase 3 explants 3 explants Contrôle positif + collagénase 3 explants 3 explants

Le produit est appliqué à J0 et à J+2 à raison de 20 mg par explant et la collagénase est incorporée dans les milieux de culture des 24 derniers lots.

Trois explants de chaque lot sont prélevés à J+2 et J+5 J+4 fixés au Bouin ordinaire et traités en histologie. L'étude histologique comprend :

• imprégnation en paraffine,
• coupes, coloration au rouge sirius F3B
• Mesures colorimétriques du collagène par analyse d'images
• Rapport avec photos.

Les prélèvements réalisés à J+2 ne montrent aucune activité significative de la collagénase quelque soit le lot examiné. Pour cette raison, la survie, le contact et l'application sont prolongés jusqu'à J+4. L'action de la collagénase est notée de 2 manières : intensité de la coloration du réseau de collagène et épaisseur de la structure dermique. Avec cette étude, sont corrélées à la pénétration du principe actif et à son activité inhibitrice vis-à-vis de la collagénase. Les résultats obtenus sont les suivants :

• pour les témoins sans collagénase le derme présente une structure normale, avec des faisceaux de collagène réguliers dans tous les compartiments,
• pour les témoins avec collagénase, les faisceaux de collagène sont très fortement dégrades et l'épaisseur du derme a diminue de moitié,
• pour les explants avec excipient et collagénase, les faisceaux de collagène sont fortement dégradés, l'altération étant inférieure à celle observée sur les témoins avec collagénase, et l'épaisseur du derme a diminué de presque moitié.

Par comparaison avec le produit GM, les produits issus de l'invention montrent une activité anti-collagénase supérieure et plus rapide que les esters du DHA (GM).

• Janssen Y, M, W, et al (1993) Lab, Invest, 69:261-74
• Van Der Vliet A, and Bast A, (1992) Chem, Biol, Interactions 85 : 95-116
• Yu B, P, (1994) Physiol, Rev, 74: 139-62
• Steiling H, et al (1999) Exp. Cell, Res, 247 :484-94
• Miyachi Y, et al (1986) J, Clin, Lab, Immunol, 19: 11-4
• Kress M, et al (1995) Pain 62 : 87-94
• Girotti A, W, (1985) J, Free Radic, Biol, Med, 1 : 87-95
• Vessey D, A et al (1992) J, Invest, Dermatol, 99 : 859-63
• Morlière P, et al, (1991) Biochim, Biophys, Acta, 1084 : 261-268
• Emonet E et al (1997) J. Photochem. Photobiol 40 : 84-90
• Meun, Y. J. et al. (2004) Biol. Pharm. Bull. June, 27 (n° 6) : 806 - 809
• Curto EV., Kwong C., Hermersdörfer H., Glatt H., Santis C., Virador V., Hearing VJ., Dooley TP. Inhibitors of mammalian melanocyte tyrosinase: in vitro comparisons of alkyl esters of gentisic acid with others putative inhibitors (1999) Biochemical Pharmacology 57: 663-672
• Jimbow K., Hua C., Gomez P., Hirosaki K., Shinoda K., Salopek T., Matsusaka H., Jin H., Yamashita T. Intracellular vesicular trafficking of tyrosinase gene family protein in eu- and pheomelanosome biogenesis (2000) Pigment cell res. 13: 110-117